
- •Галактаны Классификация галактанов
- •Общие представления о строении галактанов
- •Химические методы структурного анализа галактанов
- •Физико-химические методы структурного анализа галактанов
- •Анализ биомассы, используемой для получения галактанов
- •Сульфатированные галактаны как таксономические маркеры красных водорослей
- •Зависимость полисахаридного состава от таксономического положения водоросли на примере подкласса Florideophyceae
- •Практическое применение галактанов
- •Представители каррагинаны Распространение в природе
- •Получение
- •Химическое строение и молекулярная структура
- •Физические свойства
- •Растворимость, стабильность и гелеобразование ,икаррагинана
- •Химические свойства
- •Биологическая активность
- •Применение каррагинана
- •Агар Распространение в природе
- •Наименование агарсодержащих водорослей и их графического местонахождения
- •Получение
- •Химическое строение и молекулярная структура
- •Физические свойства
- •Химические свойства
- •Применение агара
- •Литература
Галактаны Классификация галактанов
Галактаны – сложные гетерополисахариды, представляют собой уникальный класс природных полисахаридов. Распространены в растениях (красные морские водоросли, семена люпина, кожура цитрусовых и др.), найдены также в животных и микроорганизмах. Классификация галактанов приведена на рис.1.
|
Рис.1. Классификация галактанов. |
Общие представления о строении галактанов
В основе молекул большинства галактанов лежит углеводная цепь, построенная из чередующихся остатков -D-галактопиранозы и -галактопиранозы, связанных -(1 → 3)- и -(1 → 4)-гликозидными связями. Остатки -галактопиранозы могут частично или полностью находиться в форме 3,6-ангидропроизводного и принадлежать либо к L-ряду (в полисахаридах группы агара), либо к D-ряду (в полисахаридах группы каррагинана). Таким образом, в основе молекул галактанов лежат четыре типа дисахаридных повторяющихся звеньев (рис.2).
|
Рис.2. Повторяющиеся дисахаридные звенья четырех базовых структур галактанов. |
Гидроксильные группы линейных цепей галактанов могут быть замещены на разнообразные заместители. Для полисахаридов группы агара наиболее характерно наличие О-метильных и сульфатных групп, единичных остатков моносахаридов, таких как 4-О-метил--L-галактопираноза или -D-ксилопираноза, и ацеталей пировиноградной кислоты в положении С4 и С6 остатков -D-галактозы (рис.3).
|
Рис.3. Структурные особенности полисахаридов группы агара. |
При этом только в сравнительно редких случаях молекула галактана представляет собой строго регулярный полимер, построенный из одинаковых повторяющихся звеньев (примером является агароза). Гораздо чаще в составе галактана можно обнаружить несколько повторяющихся звеньев, различающихся наличием или отсутствием 3,6-ангидрогалактозы и природой заместителей, как в случае порфирана (рис.3).
В полисахаридах группы каррагинана главными заместителями являются сульфатные группы, и отдельные представители этих полисахаридов, обладающие регулярной структурой и различающиеся числом и расположением сульфатных групп в повторяющихся звеньях, принято обозначать буквами греческого алфавита (рис.4).
|
Рис.4. Повторяющиеся звенья некоторых распространенных каррагинанов. |
Химические методы структурного анализа галактанов
Классическая последовательность операций при установлении строения галактанов состоит в выделении полисахарида из исходного сырья, расщеплении его на моно- и олигомеры, идентификации и количественном определении продуктов расщепления и использовании полученных данных для воссоздания структуры исходного полимера (рис.5 a, b, c). Процедура выделения индивидуальных полисахаридов довольно трудоемкая и весьма нестандартная, поскольку свойства выделяемого вещества определяются его строением, которое в момент выделения может быть неизвестно и его еще только предстоит установить. Химические методы структурного анализа также требуют больших затрат труда и времени. Тем не менее, именно таким путем было установлено строение первых представителей рассматриваемого класса полисахаридов. По сравнению с другими природными полисахаридами использование химических методов в галактанах имеет ряд особенностей, связанных с наличием 3,6-ангидрогалактозы и сульфатных групп.
|
Рис.5. Последовательность операций при установлении строения галактана. |
Важный компонент галактанов, 3,6-ангидрогалактоза, – это единственная 3,6-ангидрогексоза, найденная в природе (она не встречается нигде, кроме красных водорослей). Этот моносахарид отличается большой склонностью к деградации в кислой среде, так что в условиях кислотного гидролиза гликозидных связей, применяемого для определения моносахаридного состава полисахаридов, 3,6-ангидрогалактоза разрушается полностью. Такая легкая деструкция позволяет избирательно определять 3,6-ангидрогалактозу в присутствии других сахаров по цветной реакции с резорцином. Необходимо иметь в виду, что одновременно в эту реакцию вступает и 2-О-метил-3,6-ангидрогалактоза, остатки которой часто присутствуют в агароподобных полисахаридах. Естественно, колориметрическая методика не дает информации об абсолютной конфигурации ангидросахара.
Необходимость определять абсолютную конфигурацию 3,6-ангидрогалактозы заставила разработать несколько новых приемов химического расщепления галактанов, при которых удавалось избежать разрушения этого моносахарида и выделять соответствующие защищенные производные 3,6-ангидрогалактозы в препаративных количествах. К таким приемам относятся кислотный меркаптолиз, кислотный метанолиз и окислительный гидролиз (рис.6). Они в свое время сыграли важную роль при изучении как агаров, так и каррагинанов, но сейчас заменены более удобным в практическом отношении восстановительным гидролизом (рис.5 е).
Этот последний вариант расщепления галактанов удалось разработать после того, как был найден достаточно эффективный и относительно устойчивый в кислой среде восстановитель – 4-метил-морфолин-боран. Несмотря на то, что 4-метил-морфолин-боран разрушается при нагревании с кислотой, гидролиз в его среде гликозидных связей остатков 3,6-ангидрогалактозы происходит быстрее, и освобождающиеся альдегидные группы успевают восстановиться, давая вполне устойчивый к кислотам 3,6-ангидродульцит. Остатки 2-О-метил-3,6-ангидрогалактозы превращаются в этих условиях в остатки 2-О-метил-3,6-ангидродульцита.
|
Рис.6. Различные варианты расщепления каппа-каррагинана, предохраняющие остатки 3,6-ангидрогалактозы от кислотной деградации. |
Гидролиз прочих гликозидных связей происходит много медленнее и приводит к образованию альдоз, которые можно либо дополнительно восстановить (для анализа методом ГЖХ в виде ацетатов полиолов), действуя на гидролизат новой порцией 4-метилморфолин-борана или более привычным боргидридом натрия, а можно превратить в ацетаты альдононитрилов и также проанализировать методом ГЖХ. В обоих случаях 3,6-ангидродульцит и 2-О-метил-3,6-ангидродульцит превращаются в ацетаты, которые в условиях ГЖХ легко отделяются друг от друга и от производных других сахаров. Таким образом, восстановительный гидролиз позволяет в одной пробе и одним методом количественно определить полный моносахаридный состав образца полисахарида (рис.7).
|
Рис.7. Полный восстановительный гидролиз агароподобного полисахарида. |
Гликозидные связи остатков 3,6-ангидрогалактозы расщепляются в кислой среде на 2-3 порядка быстрее галактозидных связей, и это явление удобно использовать для частичного расщепления молекул галактанов. В частности, кислотный метанолиз, приводящий к диметилацеталям диастереомерных дисахаридов (агаробиозы – из агаров или каррабиозы – из каррагинанов, рис.6), применялся как для определения абсолютной конфигурации остатков 3,6-ангидрогалактозы, так и для оценки распределения остатков 3,6-ангидрогалактозы вдоль цепи галактана (по выходу дисахарида) в тех случаях, когда моносахаридные остатки -галактопиранозы лишь частично представлены 3,6-ангидрогалактозой. После введения в практику 4-метил-морфолин-борана было показано, что для частичного расщепления галактанов, содержащих остатки 3,6-ангидрогалактозы, удобнее всего использовать восстановительное расщепление. При этом могут образоваться диастереомерные восстановленные дисахариды – агаробиит или каррабиит (рис.8). Ацетаты этих дисахаридов хорошо разделяются методом ГЖХ, что позволяет определять абсолютную конфигурацию 3,6-ангидрогалактозы, а следовательно, относить неизвестный полисахарид к группе агара или каррагинана, на хроматографическом уровне с минимальными затратами времени и вещества.
|
Рис.8. Частичный восстановительный гидролиз агаров и каррагинанов. |
При невысоком содержании 3,6-ангидрогалактозы в полисахариде результатом частичного восстановительного гидролиза будут высшие олигосахариды, содержащие остаток 3,6-ангидродульцита на восстановленном конце. В мягких условиях частичного гидролиза в таких олигосахаридах удается сохранить сульфатные группы и ответвления от главной цепи. Этим способом удалось, например, выделить сульфатированный пентасахаридный фрагмент агарановой цепи с боковым остатком ксилозы и впервые непосредственно определить положение этого ответвления.
Частичный восстановительный гидролиз полезен и при изучении галактанов методом метилирования, поскольку позволяет получать восстановленные и частично метилированные дисахаридные фрагменты. В этом случае также удается разделять методом ГЖХ диастереомеры, различающиеся только абсолютной конфигурацией остатка 3,6-ангидродульцита.
Помимо 3,6-ангидрогалактозы, не менее важным структурным элементом галактанов, определяющим их свойства и химическое поведение, являются сульфатные группы. Эти группы отщепляются в кислой среде со скоростями, сравнимыми со скоростью гидролиза галактозидных связей, так что при полном кислотном гидролизе полисахарида происходит и полное десульфатирование. В щелочной среде, включая условия метилирования полисахаридов, сульфатные группы обычно устойчивы, за одним исключением: сульфогруппа в положении С6 остатка галактозы, связанного -(1 → 4)-гликозидными связями, легко претерпевает внутримолекулярное замещение свободным гидроксилом при С3 с образованием 3,6-ангидрогалактозы. Считается, что именно такая последовательность реакций (ферментативное сульфатирование по С6 с последующим ферментативным элиминированием серной кислоты, приводящим к образованию 3,6-ангидроцикла) лежит в основе биосинтеза остатков 3,6-ангидрогалактозы в составе галактанов красных водорослей, а в промышленности щелочная обработка водорослей часто применяется для увеличения содержания 3,6-ангидрогалактозы (т.е. для улучшения гелеобразующих свойств выделяемых полисахаридов). В структурном анализе обычным приемом для локализации устойчивых к щелочи сульфатных групп служит сравнение результатов метилирования нативного полисахарида и его десульфатированного производного, однако для этого нужны эффективные методы десульфатирования.
Варианты кислотной обработки (чаще всего кислотный метанолиз) иногда удается использовать для полисахаридов, не содержащих 3,6-ангидрогалактозы, но в общем случае такая обработка приводит к слишком сильной деградации полимера. Более мягким способом является так называемое сольволитическое десульфатирование, при котором прямое действие кислоты на полисахарид исключено: сульфатированный галактан, обычно в виде пиридиниевой соли, нагревают в растворителе, способном образовать комплекс с серным ангидридом, чаще всего в диметилсульфоксиде. Недавно предложена важная модификация этого метода, согласно которой в реакционную смесь дополнительно вводят реагент (например, As2O3), образующий прочные комплексы с серным ангидридом.
В остальном, для структурного анализа галактанов используют весь арсенал химических методов установления строения, применяемый при изучении других классов природных полисахаридов.