- •Товарное рыбоводство
- •Оглавление
- •Введение
- •Глава I. Биологические особенности рыб, разводимых и выращиваемых в товарных хозяйствах
- •Тема 1. Биологическая и хозяйственная характеристика рыб
- •Тема 2. Эмбриональный, личиночный и мальковый периоды развития карпа
- •Тема 3. Эмбриональный, личиночный и мальковый периоды развития растительноядных рыб
- •Тема 4. Эмбриональное развитие форели
- •Тема 5. Эмбриональное развитие сиговых рыб (на примере омуля)
- •Глава II. Заводской способ получения потомства рыб
- •Тема 6. Гормональная стимуляция созревания производителей карпа, растительноядных рыб (белого амура, белого и пестрого толстолобиков), буффало и канального сомика
- •Тема 7. Обесклеивание икры при заводском способе получения личинок (на примере карпа)
- •Глава III. Естественная кормовая база
- •Тема 9. Методы определения величины первичной продукции
- •Тема 10. Макрофиты прудов и их хозяйственное использование
- •Тема 11. Определение естественной кормовой базы прудов
- •Глава IV. Производственные процессы в рыбоводстве
- •Тема 12. Контроль за выращиванием рыбопосадочного материала и товарной рыбы
- •Тема 13. Оценка качества и прогноз зимовки сеголетков карпа
- •Глава V. Интенсификация прудового рыбоводства
- •Тема 14. Племенная работа: породные группы карпа, определение экстерьерных показателей
- •Тема 16. Питание белого амура как биологического мелиоратора водоемов
- •Тема 17. Искусственные корма и их характеристика
- •Тема 18. Комбикорма, применяемые в товарном рыбоводстве
- •Тема 19. Методы определения пищевых потребностей рыб
- •Глава VI. Холодноводное форелевое хозяйство
- •Тема 20. Оценка качества производителей форели и их половых продуктов
- •Глава VII. Рыбоводно-биологические расчеты
- •Тема 21. Рыбопродукция и рыбопродуктивность прудов
- •Тема 22. Расчет плотности посадки рыб в пруды
- •Тема 23. Расчет площадей прудов основных категорий в хозяйствах различных систем и оборотов
- •Тема 24. Расчет количества рыб в маточном стаде карпа и площадей летних и зимних маточных прудов
- •Тема 25. Известкование рыбоводных прудов
- •Тема 26. Расчет необходимого количества минеральных удобрений и порядок их внесения
- •Тема 27. Расчет необходимого количества кормов для карпового и форелевого прудовых хозяйств
- •Тема 28. Составление календарного графика эксплуатации прудов полносистемного карпового хозяйства
- •Тема 29. Расчет количества воды, кислорода и тары
- •Список рекомендуемой литературы
каждый слой фосфоритной мукой из расчета 3-5 кг муки на 1т массы. Каждый слой обливают водой так, чтобы влажность в буртах была около 70 %. Вместо навоза можно использовать известь и золу в количестве 3 % массы компостируемого сырья. Сверху бурт укрывают слоем земли толщиной 10 см.
Некоторые водные растения служат сырьем для получения лекарственных препаратов, используются в парфюмерии (см. рис. 34). В медицине применяют листья и стебли с цветами водяного перца, корни от двухлетних растений алтея, листья трифолия, кору молодых стеблей и толстых веток крушины ломкой, корневища аира, корни и корневища валерианы. Листья трифолия используют в пивоварении, корневища черемицы - в ветеринарии, корневища ириса - в парфюмерии.
Широкое применение водная растительность традиционно имела в народных промыслах: из растений вязали корзины, изготовляли дорожки, маты, использовали для покрытия крыш домов и др.
Контрольные вопросы: 1. Какова положительная и отрицательная роль макрофитов в биоценозе пруда? 2. Расскажите об эффективности использования компостов в качестве удобрения на прудах различных категорий? 3. Расскажите об эффективности использования зеленых удобрений мальковых и выросших прудов.
4.Расскажите об эффективности использования водных растений как корма для рыб.
5.Какова последовательность процесса приготовления компоста из водной растительности?
ТЕМА 11. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЕСТЕСТВЕННОЙ КОРМОВОЙ БАЗЫ ПРУДОВ
Материал и оборудование. Коробочный дночерпатель Экмана-Берджа или цилиндрический дночерпатель Ланга, планктонная сетка, мерная посуда емкостью 1л (лучше ковшик на 1л с ручкой), ведро, кюветы белые эмалированные или пластмассовые, мешок-промывалка для бентоса из газа, мерные цилиндры емкостью 0,5 л, мерные стаканы, пинцеты, чашки Петри, склянки емкостью 50-100 и 100-200 мл, препаровальные иглы, штемпель-пипетки, счетные пластинки, камеры Богорова,
117
бумага пергаментная для этикеток, простые карандаши, микроскопы, лупы, торсионные весы.
Задание. 1. С помощью экспресс-метода ориентировочно определить биомассу фитопланктона и доминирующие группы водорослей в пруду 2. Определить биомассу организмов и состав зоопланктона в пруду. 3. Определить биомассу и доминирующие группы организмов бентоса в пруду. 4. Дать оценку полученным результатам.
Общая характеристика. Естественная пища должна быть неотъемлемой частью пищевого рациона рыб, что обязывает специалистов вести постоянные наблюдения за развитием естественной кормовой базы, так как от ее величины зависит усвоение искусственных кормов. При снижении количественного развития гидробионтов необходимо принимать экстренные меры по его увеличению. Интенсивное кормление карпа искусственными кормами, которые в большинстве случаев являются неполноценными по аминокислотному состав), содержанию витаминов, приводит к нарушению обмена веществ и замедлению темпа роста рыбы.
Различные виды водных организмов имеют различную пищевую ценность, однако содержат необходимые питательные вещества белки, жиры, углеводы, витамины и минеральные соли. Белки кормовых беспозвоночных, животных являются полноценными по составу аминокислот, что является важным для развития и роста рыб. Наиболее полноценными пищевыми организмами являются ветвистоусые рачки (Cladocera) и, прежде всего, дафнии (Daphnidae). Они богаты минеральными солями, витаминами, незаменимыми аминокислотами. Аминокислотный состав белков тела олигохет (Oligochaeta) также полноценный, однако эти животные содержат меньше витаминов по сравнению с дафниями и очень бедны минеральными соединениями. Личинки хирономид (Chironomidae) по содержанию витаминов и минеральных солей занимают промежуточное положение между дафниями и олигохетами, аминокислотный состав их белков полноценный. По пищевой ценности кормовые беспозвоночные являются незаменимыми в питании рыб.
При выращивании разновозрастных рыб важно знать, какие организмы являются преобладающими в том или ином пруду. Для личинок в первые дни жизни предпочтительнее массовое развитие босмин (Bosmindae), коловраток (Rotatoria), личинок веслоногих рачков (науплиусов Copepoda). Их количество более 1000 экз./л
118
свидетельствует о хорошей обеспеченности пищевых потребностей личинок. Если в первые дни развития личинок в планктоне прудов в значительном количестве представлены циклопы (Ciclops), лептестерии (Leptestheria), стрептоцефалюсы
(Streptochephalus), щитни (Apus, Lepidarus), то возможны значительные потери личинок в результате выедания их перечисленными хищниками. Молодь карпа более 1 г способна потреблять не только планктонные, но и бентосные организмы. Зная потребности молоди в корме и состояние естественной кормовой базы, важно не опоздать с началом кормления искусственными кормовыми смесями, чтобы избежать снижения роста рыб.
Установлено, что для рыб массой более 10-20г количество естественной пищи в пищевом комке должно быть не менее 25-30 %. Для этого среднесезонная биомасса фитопланктона должна быть не менее 30 мг/л, зоопланктона - не менее 8-12 г/м3, зообентоса - 3-5 г/м2. При этом пруды считаются более продуктивными, если в фитопланктоне преобладают зеленые (протококковые) водоросли, в зоопланктоне - ветвистоусые или веслоногие ракообразные, а в зообентосе - личинки хирономид.
Гидробиологические пробы (фитопланктон, зоопланктон и зообентос) отбирают одновременно через каждые 10 дней (в период выращивания молоди до массы 5 г пробы зоопланктона отбирают через 5 дней) в разных точках пруда на протяжении всего периода выращивания рыбы. Фиксацию проб проводят 40 %-ным формалином из расчета 50-100 мл 40 %-ного формалина на 1 л воды. Пробу снабжают этикеткой, в которой указывают хозяйство, название и номер пруда, его глубину, время и дату взятия пробы, количество профильтрованных литров коды (для зоопланктона) или количество отобранных дночерпателей с указанием площади их захватв (для зообентоса). При использовании экспресс-методов определения количественного развития фито- и зоопланктона необходимо иметь в виду, что они свободны от погрешностей и, как правило, дают несколько завышенные данные, так как вода включает разного рода примеси, попадающие при отборе проб, однако для контроля непосредственно в прудах вполне применимы.
Экспресс-метод сбора и обработки проб фитопланктона. Воду отбирают из разных мест пруда на глубине 15-20 см и сливают в ведро. После перемешивании берут пробу в 0,5 л, фиксируют формалином, закрывают пробкой, этикетируют и
ставят в темное место на 10-14 сут. для отстаивания. По осадку в мерном цилиндре
119
можно ориентировочно вычислить биомассу фитопланктона. Если часть водорослей оказалась в верхнем слое, их отсчитывают по верхним делениям цилиндра и прибавляют к осадку. Плотность организмов в осадке принимают равной плотности воды. Таким образом, можно определить массовое развитие водорослей. Например, если осадок планктона в цилиндре занимает 0,1 см3 объема, это значит, что в 0,5 л пробы воды содержится 0,1 см3 или 0,1 г фитопланктона, или в пересчете на 1 л 0,2 г биомассы водорослей, что указывает на их массовое и нежелательное развитие. Под микроскопом определяют доминирующие группы водорослей (в прудовых условиях это в основном синезеленые или зеленые водоросли), что важно для выяснения характера цветения воды (если оно наблюдается).
Сбор и обработка проб зоопланктона. Пробы зоопланктона отбирают мерной посудой (лучше ковшиком на 1 л с ручкой). Для этого зачерпывают воду с глубины 4050 см и с поверхности попеременно. Станции, на которых проводят забор воды, должны быть распределены равномерно по всей площади пруда. 100 или 50л воды (при очень интенсивном развитии организмов зоопланктона) процеживают через планктонную сежу из густого капронового сита № 64-68. Отфильтрованный через планктонную сеть осадок с содержащимся в нем зоопланктоном, собранный в отстойном стакане сетки, с помощью краника сливают в склянки емкостью 100-200 мл. Для более полного сбора всего планктона сеть тщательно обмывают с наружной стороны водой или погружают ее в воду, не переливая через край. Пробу фиксируют и снабжают этикеткой. Дальнейшую обработку проводят в лаборатории следующим образом: для упрощения расчетов пробу доводят до определенного объема (100 мл), затем ее хорошо перемешивают, берут штемпель-пипеткой 0,5 мл содержимою и помещают на счетное стекло для просмотра под микроскопом. Определяют видовой состав, пользуясь определителем, и количество организмов каждого вида. Как правило, для более точного учета просматривают 3 пробы, отобранных штемпель-пипеткой из одной склянки. Количество организмов в 1 м3 воды определяют по формуле
Х = КхVх1000 / Zхn,
где X - количество организмов данного вида в 1 м3 воды; К - среднее количество организмов из трех просмотров содержимого штемпель-пипетки; V - объем просмоленной пробы, мл; n - количество литров профильтрованной воды; Z - объем штемпель-пипетки, мл; 1000 - пересчетный коэффициент на 1 м3.
120
Пример. В объеме штемпель-пипетки 0,5 мл среднее из трех просчетов количество дафний лонгиспина равно 150 экз.; объем просмотренной пробы - 100 мл; количество профильтрованной воды - 100 л. Тогда количество организмов в 1 м3 составит
300000 экз.:
X = 150x100x1000 / 0,5x100 = 300000 экз.
Результаты обработки проб записывают в таблицу, пример которой приведен
ниже. |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Дата |
Номер |
Объем |
Вид организмов |
Число |
|
пруда |
профильтрованной воды |
|
организмов, экз. |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
1 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
пластинка 0,5 |
|
|
|
|
мл |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Продолжение таблицы |
|
|
|
|
|
Число организмов, экз. |
|
Биомасса |
|
|
|
|
|
организмов, г/м3 |
2 |
3 |
среднее |
в 1 м3 |
|
пластинка 0,5 мл |
пластинка 0,5 мл |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Биомассу определяют отдельно по видам и группам организмов (ветвистоусые ракообразные, веслоногие ракообразные, коловратки и др.). Общую биомассу зоопланктона в 1 м3 воды пруда определяют как сумму биомасс отдельных видов. Для ускорения арифметических расчетов удобно пользоваться специальными программами, разработанными на ЭВМ.
Для расчета биомассы организмов зоопланктона пользуются таблицами средних масс организмов, установленных Ф.Д. Мордухай - Болтовским и другими авторами (табл. 9).
121
Таблица 9. Средние массы организмов зоопланктона |
|
|
|
|
Масса, мг |
Вид |
||
|
|
2 |
1 |
|
|
|
(Rotatoria) |
|
Коловратки |
|
|
|
|
0,005-0,02 |
Asplanchna priodonta Gosse |
||
|
|
0,00031-0,00044 |
Brachionus angularis Gosse |
|
|
|
|
0,00007 |
B. bakeri Műll. |
|
|
|
|
0,004-0,0065 |
B. calyciflorus Pall |
|
|
|
|
0,00053 |
B. urceolarus Műll. |
|
|
|
|
0,00025-0,0009 |
Lecana luna Műll. |
|
|
|
|
0,018 |
Synchaeta sp. |
|
|
|
|
0,002-0,003 |
Euchlanis dilatata Ehr. |
|
|
|
|
0,0002-0,00058 |
Filinia sp. |
|
|
|
|
0,00025-0,00095 |
Polyarthra trigla Ehrbg |
|
|
|
|
0,0002-0,00033 |
Keratella cochlearis (Gosse) |
|
|
|
|
0,00034-0,00081 |
K. quadrata (Műll.) |
|
|
|
|
0,0025 |
Notholca sp. |
|
|
|
|
0,0003 |
Platias quadricornis (Ehr.) |
|
|
|
|
0,0004 |
Мелкие коловратки |
|
|
|
|
|
Ветвистоусые ракообразные (Cladocera) |
||
|
|
0,06 |
Daphnia longispina Műller |
||
|
|
|
D. cucullata (Sars.) |
|
|
|
|
0,2 |
D. pulex (De Geer.) |
|
|
|
|
1,54 |
D. magna Straus. |
|
|
|
|
0,019-0,026 |
Ceriodaphnia pulchella Sars. |
|
|
|
|
0,113 |
Moina rectirostris Leydig. |
|
|
|
|
0,0078 |
Bosmina longirostris Műller |
|
|
|
|
0,0125 |
Chydorus sphaericus Műller |
|
|
|
|
0,3 |
Leptodora kindti Focke |
|
|
|
|
0,002 |
Alona quadrangularis (Műller) |
|
|
|
|
0,425 |
Simocephalus vetulus (Műller) |
|
|
|
|
|
122 |
|
|
Продолжение табл. 9 |
|
|
|
|
|
1 |
|
2 |
|
|
|
Diaphanosoma brachyurum Lievin. |
|
0,03 |
|
|
|
Sida crystalina (Műll.) |
|
0,5 |
|
|
|
Молодь ветвистоусых |
|
0,001 |
|
|
|
Веслоногие ракообразные (Copepoda) |
||
|
|
|
Cyclops sp. |
|
0,008-0,129 |
|
|
|
Diaptomus sp. |
|
0,007-0,110 |
|
|
|
Nauplii |
|
0,0008 |
|
|
|
Copepoditi |
|
0,004 |
|
|
|
|
Прочие |
организмы |
|
|
|
Ostracoda |
|
0,018 |
|
|
|
Oligochaeta |
|
0,025 |
|
|
|
Larvae Chironomidae |
|
0,03 |
|
|
|
Экспресс-методы обработки проб зоопланктона. 1. Полученный после фик-
сации осадок зоопланктона переливают из склянки и мерный цилиндр и замеряют его объем по шкале цилиндра. Чтобы определить, сколько планктона содержится в 1 м3, полученный объем осадка умножают на 10, если процеживали 100 л воды, или на 20, если процеживали 50 л. 2. Осадок зоопланктона процеживают через кусочек сита № 70-80, затем подсушивают на фильтровальной бумаге до исчезновения мокрых пятен, переносят вместе с кусочком влажного сита в чашку Петри и взвешивают. Массу чашки Петри вместе с кусочком влажного сита определяют заранее. По разнице масс получают массу зоопланктона. Зная объем профильтрованной через планктонную сеть воды и массу осадка, можно определить биомассу зоопланктона в 1 м3.
Сбор и обработка проб зообентоса. Пробы зообентоса отбирают в те же сроки, что и пробы зоопланктона, при этом учитывают характер грунтов, зарослей, глубины пруда. Число станций устанавливают в зависимости от количества выделенных биотопов и площади водоема. В нагульных и выростных прудах рекомендуется делать по 10 - 15 станций в продуктивной зоне с глубинами 0,5 - 1,5 м. Для отбора проб удобнее пользоваться дночерпателем Экмана-Берджа, площадь
123
захвата которого обычно составляет 0,025 м2. Это коробочный дночерпатель, закрывающийся при помощи посыльного груза. Перед отбором пробы лопасти дночерпателя поднимаются вверх и при помощи тросиков надеваются на рычаги спускового аппарата. В открытом виде на тонком металлическом тросе дночерпателя опускается на дно водоема, после чего по тросу опускается посыльный груз, который ударяет по втулке спускового аппарата и дночерпатель закрывается, вырезая монолит грунта или ила с 0,025 м2.
Взятые дночерпателем пробы грунта переносят в мешок-промывалку, сшитый из капронового сита № 24 -27. Пробы отмывают в воде пруда до избавления от мелких частиц. Оставшийся комочек грунта помещают в кювету и пинцетом выбирают из него гидробионтов, помещая их в склянку с формалином. Пробу этикетируют, затем в лабораторных условиях тщательно изучают с помощью лупы и микроскопа. Фиксированные организмы обсушивают на фильтровальной бумаге, разбивают по группам, просчитывают и взвешивают на весах (лучше на торсионных). Раковины живых моллюсков раскрывают для удаления находящейся внутри жидкости. Предварительную обработку можно провести непосредственно в момент отбора организмов из промытого грунта, распределяя их по группам (личинки хирономид и других насекомых, олигохеты, моллюски и др.).
Определяют биомассу каждого вида организмов в пробе, биомассу организмов, приходящихся на один дночерпатель, затем рассчитывают биомассу отдельных групп организмов и суммарную биомассу на 1 м2. Результаты обработки проб сводят в таблицу, пример которой приведен ниже.
Дата |
Номер |
Площадь захвата |
Количество отобранных |
|
|
Виды |
||||
|
|
пруда |
дночерпателя |
дночерпателей |
|
организмов |
||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Продолжение таблицы |
|
|
|
|
|
|
|
|||
Количество экземпляров |
|
|
Биомасса, г |
|
|
|||||
по всей |
|
средняя на один |
на 1 м2 |
по всей |
средняя на один |
|
на 1 м2 |
|||
длине |
|
дночерпатель |
|
длине |
|
дночерпатель |
|
|
||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Контрольные вопросы. 1. Какова роль фитопланктона в пруду? 2. Назовите основные группы фитопланктона, развитие которых нежелательно в пруду. 3. Какова роль организмов зоопланктона и зообентоса в питании карпа? 4. Какие меры необходимо принять для повышения биомассы фитопланктона и зоопланктона в пруду? 5. Назовите организмы гидробионтов, предпочитаемые личинками, мальками, молодью карпа, рыбами старшего возраста.
124
