Микробиология. Лекции / Zanyatie_28_KlinichMikrobiologia_ISMP_2023
.pdf
Для взятия проб раневого отделяемого существуют транспортные среды
Взятие материала производит лечащий врач.
Предварительно стерильным ватным тампоном со спиртом или другим антисептиком обрабатывают кожу вокруг раны, удаляют стерильной салфеткой некротические массы и гной.
Взятие материала производят круговыми вращательными движениями тампона от центра к периферии поверхности раны. Тампон помещают в транспортную среду (↑).
NB! В транспортных средах флора жизнеспособна до 3 дней при комнатной to
Технические моменты бактериологического исследования раневого материала
Надо помнить, что клинический материал засевают также на жидкие среды обогащения на случай низкой концент-ции/жизнеспос-сти *- СКС: среда для выращивания анаэробов
Производят посев по Голду (!) на плотные питательные среды:
1.кровяной агар,
2.ЖСА,
3.среда Эндо.
Приказ№535: посев на СКС*
При (+) результате: оценивают количество колоний, микроскопируют и отсевают на скошенный агар для изоляции чистых культур и последующей их идентификации.
«Напоминалочка»: посев по Голду проводят на сектора чашек штрихами:
Описания других методик, основанных на приготовлении разведений материала и их посеве – из мира, далекого от
•На чашки с питательными средами наносят материал и делают 30-40 штрихов петлей в секторе А.
•Прожигают петлю и выводят 4 штриха из сектора А в сектор I.
•Вновь прожигают петлю и проводят 4 штриха из сектора I в сектор II.
•То же – в сектор III.
практической бактериологии!
Для расчета концентрации микробов после посевов по Голду существует таблица:
Критерий значимости микроба для воспалительного процесса – присутствие в концентрации ≥ 105 КОЕ / мл
По таблице в зависимости от количества выросших на секторах колоний находят концентрацию микроорганизмов в засеянном материале.
Основные возбудители:
-S.aureus и КОС;
-Энтеробактерии (E.coli, Klebsiella, Proteus и др.);
-Pseudomonas aeruginosa;
-Acinetobacter lwoffii;
-ассоциации вышеуказанных видов с грибами и др.
Правила взятия и посева мочи
Бактериологическому исследованию подлежит средняя порция свободно выпущенной мочи, взятой в количестве 3-5 мл в стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов.
Катетеризация мочевого пузыря для рутинного исследования не применяется, так как она может привести к инфицированию.
NB! Пробы мочи можно хранить не более 1-2 часов при комнатной температуре до начала ее исследования
Посев мочи проводят на 1. Кровяной агар по Голду;
2. МПА (по приказу № 535).
Оптимален посев утренней мочи!
Оценка результатов исследования мочи
Степень бактериурии трактуют так:
1.≤ 103 КОЕ* / мл мочи – отсутствие воспалительного процесса (контаминации мочи).
2.104 КОЕ / мл мочи – сомнительный результат. Исследование следует повторить!
3.≥ 105 КОЕ / мл мочи – указывает на наличие воспалительного процесса (еще раз – запомните эту цифру!).
*КОЕ – КолониеОбразующая Единица (минимальное количество микробных клеток, способное образовать колонию).
Из мочи больных уроинфекцией чаще выделяют: Эшерихии, Протей, Клебсиеллы → то есть, Энтеробактерии!
Синегнойную палочку (+ у стационарных больных: Энтерококки) NB! Повторное выделение из мочи культуры одного вида, типа, варианта подтверждает наличие инфекционного процесса.
Правила взятия отделяемого дыхательных путей
Материалом могут служить:
-отделяемое зева и носа;
-мокрота;
-экссудаты;
-содержимое бронхов, полученное при бронхоскопии или при отсасывании через трахеостому (у больных, находящихся на аппаратном дыхании);
-резецированные ткани и др.
Материал собирают с соблюдением правил асептики в широкогорлые контейнеры и доставляют в лабораторию.
Интервал между взятием материала и его посевом не должен превышать 1-2 часа.
Хранение материала способствует размножению микрофлоры, что искажает результаты анализа.
Правила взятия отделяемого дыхательных путей
Особенность – мокрота, проходя через верхние дыхательные пути и полость рта, может загрязняться присутствующей там микрофлорой, поэтому:
Перед откашливанием больной должен почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры полости рта.
Утреннюю мокроту, выделяющуюся во время приступа кашля, собирают в стерильный контейнер.
Общие моменты по бактериологическому исследованию отделяемого дыхательных путей
Производят посев на плотные среды:
1. кровяной агар,
2. ЖСА,
3. среда Эндо,
4. агар Сабуро – для выделения грибков. Параллельно остатки материала засевают на сахарный бульон – среду обогащения.
При росте колоний оценивают их количество, выделяют чистые культуры и идентифицируют их. Критерий клинической значимости культуры – ..... .....?!
Определяют чувствительность к антибиотикам → еще раз вспомните методы!
Основные возбудители пневмоний:
• Внебольничных : |
• Внутрибольничных : |
- пневмококки |
- Энтеробактерии (E.coli, |
- гемофильная палочка |
Klebsiella, Enterobacter…); |
- микоплазмы |
- Pseudomonas aeruginosa; |
|
- Acinetobacter lwoffii; |
+ хламидии |
- S.aureus |
|
+ грибки рода Candida |
+ микробы- «невидимки», готовые вредить всегда и везде, но редко выявляемые: например, Легионеллы
- чтобы верно трактовать результаты посева, надо знать нормофлору полости рта, чтобы исключить ее при анализе и лечении...