4 курс / Сертификат медсестры / СД

–полимерный контейнер для дезинфекции или две емкости с соответствующей маркировкой и дезинфицирующим раствором:

●для промывания инструментов от крови и других биологи-

ческих жидкостей;

●для дезинфекции инструментария;

–инструменты после использования (в собранном виде);

–лотки;

–ватно-марлевые тампоны или щетки для мытья инструментов.

Обязательные условия:

–соблюдение отраслевого стандарта 42-21-2-85, определяющего методы, средства и режим дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения и инструкций к нему;

–проведение дезинфекции непосредственно после манипуляции.

Подготовка к процедуре

1.Надеть спецодежду: халат, маску, перчатки (соблюдение безопасности медсестры на рабочем месте, профилактика воздей-

ствия токсичных веществ).

2.Приготовить 3%-ный раствор хлорамина (или другой регламентированный раствор), сделать отметку на бирке о времени

приготовления, поставить подпись (соблюдаются отраслевой стан-

дарт 42-21-2-85, преемственность в работе, личная ответственность).

3.Подготовить оснащение.

4.Налить приготовленный раствор в емкости.

Выполнение процедуры

1. В первой емкости:

а) заполнить внутренние каналы шприцев, игл, инструментария непосредственно после использования (предупредить разбрызгивание потенциально инфицированного внутрен-

него содержимого шприца или другого инструмента);

б) промыть, не разбирая и не снимая игл со шприцев, методом насоса (достигается отмывание инструментов от крови, лекарственных средств и т.д. для последующей эффективной дезинфекции).

2. Во второй емкости:

а) заполнить внутренние каналы инструментария, шприцев, игл;

б) разобрать, погрузить все полностью.

3.Закрыть емкости крышкой на 1 час (или другое регламентированное время). Достигается эффективность обеззараживания инструментов и не снижается активность хлора в растворе.

4.Сменить перчатки, погрузить в емкость с дезраствором.

5. Сделать отметку на бирке о времени дезинфекции (для со-

блюдения сроков проведения дезинфекции).

Окончание процедуры

1.Извлечь инструменты из дезраствора по истечении времени дезинфекции.

2.Сложить в лоток.

3.Подготовить многоразовый инструментарий для дальней-

шей обработки в ЦСО (централизованном стерилизационном отделении).

4.Промыть проточной водой многократно (инструментарий

со следами любых загрязнений для дальнейшей обработки в

ЦСО не принимается).

5.Вылить использованный дезраствор в канализацию (дезра-

створы применяются однократно).

6.Снять перчатки, вымыть руки, осушить (соблюдение личной

гигиены).

2-é ýòàï

Предстерилизационная очистка инструментов

Эффективность любого метода стерилизации во многом за-

висит от чистоты стерилизуемых объектов. Наличие загрязнений

органического и неорганического характеров (остатки заводской смазки, лекарств, мочи, свернувшейся крови и др.), создающих

вокруг микроорганизмов защитную оболочку, резко снижают действительность как термической, так и химической стерилизации.

Вот почему предстерилизационной обработке придается в наше

время большое значение.

Предстерилизационной очистке, выполняемой в строгой последовательности, определенной приказом МЗ СССР ¹ 208, ОСТ 42-21-2-85, подвергаются инструменты, стеклянные изделия медицинского назначения (посуда, палочки, трубочки, чашки Петри, банки), перчатки. Данная очистка осуществляется в ЦСО (централизо-

ванные стерилизационные отделения).

Инструменты, полученные со склада, предварительно очищают от заводской смазки (расконсервируют). Это трудная и продолжительная работа, которую выполняют в перчатках.

Порядок обработки:

1. Замочить в горячей воде (50–60 °С) для размягчения сма-

зочного материала (масла).

2.Очистить чистой тряпкой смазку до полного удаления, разобрав инструмент на составные части (не перепутать детали).

3.Замочить очищенные инструменты на 15–20 мин в горячем

растворе 1%-ного моющего раствора.

4.Ополоснуть или протереть тряпочкой, смоченной в керосине или ацетоне, добиваясь полного удаления остатков смазки.

5.Очищенные до блеска инструменты кипятить в 2%-ном растворе натрия бикарбоната (соды), или в 1%-ном моющем растворе — и вновь протереть чистой тряпочкой.

6.При необходимости обработку керосином или ацетоном повторить.

Инструменты, бывшие в употреблении, подвергаются предстерилизационной очистке по схеме, разработанной сотрудниками

ЦНИИДИС и рекомендованной ОСТом и приказом МЗ ¹ 20-87 г. Особой технологии предстерилизационной очистки требуют резиновые кишечные трубки, катетеры, дренажные трубки, зонды.

После дезинфекции в 4%-ном растворе перекиси водорода

(90 мин) резиновые трубки промывают горячей проточной водой. Трубки разминают пальцами, растягивают, меняют направление струи.

В соответствии с инструкцией центрального института заливают

на 2 часа горячим (50–60 °С) 3%-ным раствором Н2Î2 с 1%-ным раствором моющего средства, или смесью равных частей 1%-ного раствора натрия гидрокарбоната и 1%-ного раствора аммиака. Трубки должны быть полностью заполнены моющим раствором.

Затем резиновые трубки вновь промывают проточной водой с повторным разминанием пальцами и сменой направления струи и кипятят 30 мин в дистиллированной воде, еще раз промывают и повторно кипятят в дистиллированной воде 20 минут.

Медсестра работает в маске, в перчатках. Лица, перенесшие

гнойные заболевания, к работе не допускаются. Резиновые труб-

ки проверяются (нет ли перегибов, трещин), растягиваются (плотность прилегания резиновых трубок к насадкам и стеклянным

трубкам).

Катетеры, кишечные трубки, зонды, каждый завертывают (от-

дельно!) в двуслойную бязевую салфетку, следя при этом, чтобы резиновые трубки не перегибались, так как на месте перегиба при стерилизации может образоваться стойкое сужение. Пакеты укладывают в большие барабаны или мешки из бязи и стерилизуют паром по второму щадящему режиму стерилизации.

Моющие средства, применяемые

для предстерилизационной обработки

«Биолот», или комплекс, состоящий из перекиси водорода с моющим средством. Моющий раствор допускается применять в течение суток до загрязнения (до появления розовой окраски), но не более шести раз.

«Биолот» применяют при ручной мойке в концентрации 0,5%, при машинной — 0,3%.

Комплекс перекиси водорода с моющим средством содержит 0,5%-ный раствор перекиси водорода и 0,5%-ный раствор мою-

щего средства (1:1), обладает высокой моющей активностью, разрыхляет различного рода загрязнения, не влияет на качество стекла,

ряда металлов, полимерных материалов и легко смывается. Пергидроль, выпускаемый промышленностью, содержит 30–33% пе-

рекиси водорода. В качестве моющих средств применяют «Прогресс», «Астру», «Лотос», «Айну».

Предстерилизационную обработку проводят ручным и механи- ческим способами.

В ЦСО проводится цветная реакция на следы дезинфектантов, подтверждающая, что после использования инструментарий про-

шел дезинфекцию. При дезинфекции химическими средствами, не содержащими хлор, эта реакция не проводится.

Предстерилизационная очистка инструментов

Оснащение: халат, маска, перчатки. Моющий раствор 0,5%-ной концентрации, состоящий из перекиси водорода и моющего средства, часы на 15 мин (песочные, электрические), ерши или марлевые тампоны, лотки, емкость с дистиллированной водой, сухожаровой шкаф, инструментарий.

1.Надеть халат, маску, перчатки.

2.Подогреть моющий 0,5%-ный раствор перекиси водорода с

моющим средством до 50 îÑ.

3.Поместить инструментарий в разобранном виде в 0,5%-íûé

моющий раствор на 15 мин, предварительно пропустив раствор через полости инструментария, закрыть крышкой

4.Обработать ершом (марлевым тампоном) в моющем раство-

ре, каждый предмет в течение 30 с (через иглы пропустить моющий раствор). Уложить инструментарий в лоток.

5.Промыть под проточной водой в течение 30 с каждый

предмет, пропуская воду через полости инструментария. Уложить в лоток.

6. Промыть инструментарий в дистиллированной воде, просу-

шить в сухожаровом шкафу при температуре 85 îC до полного исчезновения влаги.

3-é ýòàï

Контроль качества предстерилизационной очистки

Проводится после проведения предстерилизационной очистки

инструментов и др. предметов медицинского назначения на су-

хих предметах в количестве 1% отработанных инструментов. Применяют следующие пробы: ортотолуидиновую, амидопириновую

(на кровь) и фенолфталеиновую (на остатки моющих средств)

или азопирамовую пробу на наличие крови, моющих средств, ржавчины, белковых веществ и т.д. В настоящее время применяют

только азопирамовую пробу, пробу с суданом-3 (на жиры).

Амидопириновая проба

Оснащение. Растворы для реактива: 3%-ный раствор пере-

киси водорода, 30%-ный раствор уксусной кислоты, 5%-ный спиртовой раствор амидопирина, проверить их сроки годности. От-

дельные пипетки, имеющие маркировку; мензурка с маркировкой «Реактив»; лоток с ватными тампонами; лоток с сухим инструментарием для пробы, прошедшим предстерилизационную очистку.

1.Приготовить реактив, смешав в равных количествах 3%-ный раствор перекиси водорода, 30%-ный раствор уксусной кислоты, 5%-ный спиртовой раствор амидопирина разными промаркиро-

ванными пипетками.

2.Нанести бесцветный реактив пипеткой «для реактива» на сухие предметы, прошедшие предстерилизационную очистку на корпус и в полость инструмента, в просвет иглы и т.д.

3.Держать предмет над ватой или салфеткой, наблюдая за цветом стекающего реактива.

4.Оценить результат. При отрицательной пробе цвет реактива

не изменится.

5.Провести ополаскивание и предстерилизационную обработку использованного для пробы инструмента (при отрицательной

пробе).

Примечание: читать реакцию в течение двух минут. Эта проба

þвыявляет скрытую кровь на инструментах и определяет каче- ство обработки инструментов от крови. При положительной пробе цвет реактива изменится на сине-фиолетовый.

Фенолфталеиновая проба

Оснащение. Реактив: 1%-ный спиртовой раствор фенолфталеина, пипетка для реактива, лоток с ватными тампонами, лоток

для пробы с сухим инструментарием, прошедшим предстерилизационную обработку.

1.Нанести 1%-ный спиртовой раствор фенолфталеина на корпус инструментария, в просвет иглы и т.д.

2.Держать иглу над ватой, наблюдая за цветом стекающего реактива.

3.Оценить результат в течение двух минут. При отрицатель-

ной пробе цвет реактива не изменится.

4.Провести ополаскивание и предстерилизационную обработку использованного для пробы инструмента (при отрицательной

пробе).

Примечание: эта проба определяет качество очистки инстру-

þментов от моющего раствора. При положительной пробе цвет реактива изменится от розового до малинового.

Азопирамовая проба

Öåëü:

–провести комплексный контроль качества предстерилизационной очистки инструментов медицинского назначения (от гемо-

глобина, моющих средств, хлорсодержащих, ржавчины, лекарствен-

ных средств);

–оценить эффективность работы моечных машин в ЦСО.

Оснащение:

–азопирамовый реактив: 100 мл амидопирина, 1 мл солянокислого анилина смешать в сухой посуде и залить 96%-ным спиртом до 1 л, перемешать до полного растворения всех ингредиентов;

–пипетки для 1%-ного спиртового раствора азопирама и 3%-ного раствора перекиси водорода;

–лоток с ватными тампонами, инструментарий, подвергающий-

ся контролю.

Обязательные условия:

— использование свежеприготовленного 1%-ного раствора азопирама в течение двух часов;

— соблюдение сроков хранения азопирама: хранить в плотно закрытой емкости при температуре 4 °С в течение двух меся-

цев. При комнатной температуре до одного месяца умеренное

пожелтение азопирама без выпадения осадка не снижает его рабочих

свойств. Температура исследуемого изделия равна +18...+25 îÑ.

Подготовка

1.Надеть маску; вымыть руки, осушить; надеть перчатки (обеспечение безопасности медицинской сестры на рабочем месте).

2.Подготовить оснащение (условия для соблюдения четкости

âработе).

3.Приготовить 1%-ный рабочий раствор азопирама (соблюдение правил приготовления раствора процентной концентрации):

а) открыть флакон с азопирамом, взять пипетку с маркировкой «азопирамовый реактив», набрать определенное коли- чество реактива в пипетку, выпустить раствор из пипетки в емкость с маркировкой «1%-ный рабочий раствор азопи-

рама». Поставить пипетку в специальную емкость для хранения пипеток. Закрыть флакон с азопирамовым реактивом (соблюдение правил хранения);

б) открыть флакон с 3%-ным раствором перекиси водорода, взять пипетку с маркировкой «3%-ный раствор перекиси водорода», набрать раствор в том же количестве, как азопи-

рамовый реактив, выпустить раствор в емкость с маркировкой «1%-ный рабочий раствор азопирама»;

в) смешать ингредиенты приготовленного 1%-ного раствора азопирама, закрыть раствор;

г) подготовить необходимые инструменты в разобранном виде для постановки пробы (для проведения контроля качества предстерилизационной очистки инструментария).

Выполнение

1.Взять пипеткой с маркировкой «1%-ный рабочий раствор азопирама» небольшое количество раствора (обеспечение каче- ства контроля).

2.Нанести его на предмет, в полости инструмента, резьбу за-

жима, в места соприкосновения с биологическими жидкостями.

3.Держать предмет или инструментарий над ватой, наблюдая

за цветом стекающего реактива (проба считается положительной, если цвет реактива изменяется в течение первой минуты).

Завершение

Оценить результат. Контроль качества предстерилизационной

очистки: проба считается отрицательной, если цвет реактива не изменился.

þПримечание: проба считается положительной, если цвет реактива изменился на сине-фиолетовый. Это свидетельствует о

наличии крови на предметах. Бурое окрашивание свидетельствует о наличии хлорсодержащих окислителей, ржавчины. Розовое окрашивание свидетельствует о наличии моющего средства с щелочной реакцией.

ПОНЯТИЕ О СТЕРИЛИЗАЦИИ, МЕТОДЫ И СПОСОБЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ

Стерилизация — это уничтожение микроорганизмов и их

спор путем воздействия как физических факторов, так и химиче- ских препаратов.

В настоящее время действует отраслевой стандарт (ОСТ 42-21-2-85),

определяющий методы, средства и режимы стерилизации и дезинфекции изделий медицинского назначения, который дополнен

приказом ¹ 408 и «Методическими указаниями по дезинфекции,

предстерилизационной очистке и стерилизации предметов медицинского назначения», утвержденными МЗ России 30 декабря 1998 г.

¹ ÌÓ — 287-113.

Эти документы являются обязательными и определяющими для всех лечебно-профилактических учреждений и дают возмож-

ность широкого выбора средств и методов, наиболее подходящих

в условиях данного лечебного учреждения.

Стерилизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с

раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, и отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистыми оболочками и могут вызвать их повреждения.

Методы стерилизации

Различают термические методы (УФ-лучи: ультрафиолетовое

облучение воздуха, перевязочных, процедурных, операционных). Химические методы стерилизации изделий из полиэтилена,

аппаратуры для искусственной вентиляции легких (ИВЛ), различ- ных эндоскопов с волоконной оптикой осуществляются раствора-

ми дезинфицирующих средств или газами:

● газовая стерилизация (окись этилена, окись пропилена, бромистый метил, их смеси);

●ультразвуковая стерилизация;

●стерилизация инфракрасным излучением.

В клинической практике чаще всего применяется стерилиза-

ция физическими факторами — термический метод стерилизации, который заключается в воздействии пара под давлением (ав-

токлавирование) и воздействии сухого воздуха (используются сухожаровые шкафы разной модификации).

Стерилизация изделий медицинского назначения осуществляется в централизованных стерилизационных отделениях (ЦСО)

лечебно-профилактических учреждений (ЛПУ).

Понятие об автоклавировании

Автоклавирование обеспечивается паровыми стерилизаторами различных габаритов с различной степенью автоматизации.

В паровых стерилизаторах создаются высокая температура

(до 138 °С) и высокое давление (до 2,5 атм.), благодаря которым обеспечиваются условия для вытеснения воздуха из всей стерили-

зационной камеры, включая прослойку между складками белья и

перевязочного материала. В современных паровых стерилизаторах заполнение паром любых «закоулков» в стерилизационной камере

обеспечивает предварительная этенция (отсасывание) воздуха из

стерилизационной камеры с созданием в ней разрежения.

Для лечебных учреждений рекомендуется два режима стери-

лизации.

1-й режим — температура 132 °С, давление 2 атм., время

20ìèí.

Первый режим (основной) предназначен для стерилизации

изделий из бязи, марли (перевязочного материала, белья и т.д.), стекла, включая шприцы с пометкой «200 °С», изделий из корро-

зийностойкого металла.

2-й режим — температура 120 °С;. давление 1,1 атм., время

45ìèí.

Второй режим (щадящий) рекомендуется для изделий из тон-

кой резины, латекса (хирургические перчатки и др.) и отдельных видов полимеров (полиэтилен высокой плотности).

Все изделия, стерилизуемые паром под давлением, предварительно помещают в специальную упаковку — стерилизационные коробки (биксы или контейнеры) с фильтром или без фильтров,

упаковки из двуслойной х.-б. ткани или крафт-пакеты из плотной

бумаги, соответствующей ОСТу 42-21-2-85, и маркируют. Сроки

сохранения стерильности зависят от упаковки. Биксы без фильтра хранятся трое суток, с фильтром — 20 суток. Упаковки из дву-

слойной х/б ткани или крафт-пакеты хранятся до трех суток в

стерильных условиях.

Паровые стерилизаторы традиционно именуют автоклавами, хотя это название не соответствует сущности (автоклав означает «самозапирание», от греч. «ауто» — «сам» и лат. «клавис» — «ключ»). Простейший паровой стерилизатор состоит из котла с двойной стенкой и герметически закрывающейся крышки, позво-

ляющей поднять давление пара до определенного предела. Порядок работы автоклава детально изложен в инструкции к

нему. Бывают случаи, когда при соблюдении всех правил стерилизация была неполноценной. Причины таких неудач чаще всего следующие:

1)неправильно произведена загрузка стерилизатора, что при-

водит к неравномерному распространению пара по объему рабо- чей камеры. Стерилизатор должен быть загружен: не более 70% объема камеры;

2)не полностью вытеснен паром воздух из стерилизационной камеры, вследствие чего остались «пузыри» и не было должных условий для гибели микроорганизмов;

3)плотно уложены перевязочный материал и белье в биксы, из-за чего пар не смог проникнуть вглубь и воздействовать на

весь перевязочный материал;

4)при загрузке бикса забыли открыть отверстия для прохождения пара;

5)чрезмерное увлажнение материала при стерилизации, вследствие чего операционное белье становится проницаемым для мик-

роорганизмов и, следовательно, непригодно для накрывания стерильного стола.

Меры устранения указанных дефектов вытекают из их сущнос-

ти: они просты, но требуют постоянного внимания медперсонала.

Стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу. Воздушный метод стерилизации

Рекомендуется для изделий из металла и стекла. Стерилиза-

ции подвергаются сухие изделия в упаковках из бумаги мешоч-