Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

6 курс / Клинические и лабораторные анализы / Лабораторная_диагностика_туберкулеза_Ерохин_В_В_ред_

.pdf
Скачиваний:
20
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
6.25 Mб
Скачать

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

МОДУЛЬ 10. Молекулярно-генетическая идентификация микобактерий

Тема 10.4. «Методы,* применяемые для видовой идентификации НТМБ»

Количество аудиторных часов – 1

Примерный план семинарского занятия

Вопросы, прорабатываемые на семинаре:

методы идентификации микобактерий до вида;

этапы проведения ПЦР-анализа с последующей гибридизацией продуктов амплификации на стрипах;

принцип использования метода масс-спектрометрии для идентификации микобактерий до вида;

идентификацию микобактериальных культур до вида – алгоритм применения в практике противотуберкулезной лаборато-

рии Цель семинара – формирование у слушателей представлений о

современных методах идентификации микобактерий до вида и алгоритме их применения в практике противотуберкулезной лаборатории.

Семинар проводится в интерактивной форме. При обсуждении темы семинара ведущий и слушатели используют материалы лекций по теме модуля 10. «Молекулярно-генетическая идентификация микобактерий» темы 10.1 «Основные мишени и методы, позволяющие дифференцировать МБТК от НТМБ», а также учитывается самоподготовка по модулю 10. «Молекулярно-гене- тическая идентификация микобактерий». «Методы, позволяющие дифференцировать виды микобактерий внутри туберкулезного комплекса», «Молекулярные мишени, позволяющие проводить видовую дифференциацию НТМБ», «Методы, применяемые для видовой идентификации НТМБ».

Вводная часть (5–10 мин)

Ведущий семинара обсуждает со слушателями рабочий план и определяет ведущую тему дискуссии. Ведущий перечисляет основные методы идентификации микобактерий до вида – микробиологические и молекулярно-генетические. Преподаватель подчеркивает, что, если для выявления возбудителей туберкулеза и микобактериозов в диагностическом материале необходимо использовать комплексный подход с применением и микробиологи-

*Демонстрационный материал к семинару представлен на диске. Может быть распечатан в качестве раздаточного материала.

388

ческих, и молекулярно-генетических методов, то для идентификации микобактерий до вида именно молекулярно-генетические методы, основанные на ПЦР, занимают ведущую роль, так как традиционные микробиологические методы имеют ряд существенных недостатков (длительность проведения анализа, вариабельность в интерпретации результатов)

Основная часть (30 мин)

Восновной части семинара преподаватель подробно останавливается на молекулярно-генетических методах идентификации возбудителей туберкулеза и микобактериозов и перечисляет их достоинства

Вкачестве примера преподаватель разбирает методику проведения идентификации микобактерий до вида с помощью стриповой технологии (проведение ПЦР с праймерами, комплементарными участкам, кодирующим 16S-23S рибосомальную РНК, с последующей гибридизацией продуктов амплификации на стрипах с иммобилизованными олигонуклеотидами). Преподаватель фиксирует внимание слушателей на достоинствах и ограничениях этого метода.

Далее преподаватель разбирает методику проведения идентификация микобактерий до вида с использованием ПЦР в режиме реального времени, сравнивая ее со стриповой технологией.

Во второй части семинара преподаватель переходит к идентификации микобактерий до вида с использованием метода массспектрометрии и дает краткое определение метода. Затем ведущий объясняет суть метода масс-спектрометрии и принцип идентификации микобактерий до вида с его использованием.

Заключительная часть

В заключении преподаватель подчеркивает, что врач-фтизиатр, равно как и врач клинико-диагностической лаборатории должен быть в курсе всех новейших разработок в области выявления и идентификации возбудителей туберкулеза и микобактериозов.

Краткий информационный материал к семинару модуля 10.

Молекулярно-генетическая идентификация микобактерий. Тема 10.4. «Методы, применяемые для видовой идентификации НТМБ».

Достоинства молекулярно-генетических методов идентификации микобактерий:

1.Высокая специфичность методов

2.Быстрота получения результатов

Раздел 2. МЕТОДИЧЕСКИЕ МАТЕРИАЛЫ К СЕМИНАРАМ

389

3.Снижение трудозатрат

4.Снижение риска заражения персонала

 

Методика проведения идентификации микобактерий до вида

 

с помощью стриповой технологии (проведение ПЦР с прайме-

 

рами, комплементарными участкам, кодирующим 16S-23S рибо-

 

сомальную РНК, с последующей гибридизацией продуктов ампли-

 

фикации на стрипах с иммобилизованными на них

 

олигонуклеотидами.

 

ДНК-стриповая технология (рис. 1–8)

 

Стриповая технология позволяет выявлять сразу несколько

 

видов микобактерий в одном образце. В настоящее время на оте-

 

чественном рынке стриповая технология представлена германским

 

производителем Hain lifescience, выпускающим наборы Geno-

 

TypeCM (определяет M.avium ssp., M.chelonae, M.abscessus, M.fortu-

 

itum, M.gordonae, M.intracellulare, M.scrofulaceum, M.interjectum,

 

M.kansasii, M.malmoense, M.peregrinum, M.marinum/M.ulcerans,

 

M. xenopi, M.tuberculosis complex) и GenoTypeAS (определяет

 

M.simiae, M.mucogenicum, M.goodii, M.celatum, M.smegmatis,

 

M. genavense, M.lentiflavum, M.heckeshornense, M.szulgai, M.inter-

 

medium, M.phlei, M.haemophilum, M.kansasii, M.ulcerans, M.gastri,

 

M.asiaticum, M.shimoidei). Набор GenoTypeCM (рис. 1) выявляет

 

наиболее часто встречающиеся в клинической практике виды ми-

 

кобактерий. Набор GenoTypeAS выявляет виды НТМБ, выделяе-

 

мые реже, а также проводит дифференциацию между M.kansasii и

 

M.gastri. Предлагается на первом этапе проводить идентификацию

 

культуры с использованием набора GenoTypeCM, если результат

 

показывает наличие представителей рода микобактерий, но набор

 

не смог определить принадлежность к какому-либо виду, провести

 

дополнительную идентификацию образца с набором GenoTypeAS.

 

Этапы проведения анализа:

РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Выделение ДНК из культуры микобактерий. Для выделения ДНК

из культур предпочтительнее использовать простой одношаго-

 

 

вый метод, предотвращающий возможность контаминации.

 

Производителем предлагается прогреть культуру в деионизиро-

 

ванной воде при температуре 99°С 20 мин, потом обработать

 

пробирки ультразвуком в ультразвуковой бане и центрифуги-

МЕТОДИЧЕСКИЕ

ровать 1 мин при 13000 G. Надосадочная жидкость будет содер-

жать достаточное количество ДНК для проведения ПЦР.

 

 

2. Проведение ПЦР с праймерами к участку, кодирующему 16S-23S

 

рибосомальную РНК. Для этого необходимо собрать ПЦР-микс

 

и добавить в него выделенную ДНК, пользуясь инструкциями

390

производителя. Амплификацию проводить в термоциклере по программе, представленной производителем.

3.Гибридизация полученных продуктов на стрипах. Проводится в специальных «ванночках», предоставляемых производителем в шейкере-инкубаторе. В «ванночки» добавляются продукты амплификации (рис. 2) и гибридизационный буфер (рис. 3), раскладываются подписанные стрипы (рис. 4). На каждом стрипе иммобилизованы олигонуклеотиды, комплементарные специфическим участкам нескольких видов микобактерий, а также олигонуклеотиды внутреннего контроля прохождения реакции (набор GenoTypeCM – 14 видов, набор GenoTypeAS – 17 видов НТМБ). В процессе гибридизации (рис. 5) продукты амплификации, специфичные для того или иного вида будут комплементарно связываться только с соответствующими им по составу олигонуклеотидами на стрипе. Визуализация результатов проводится согласно инструкции производителя. В результате процедуры гибридизации, серии отмывок и конъюгации с красителем на стрипах проявляются темно-коричневые полоски, соответствующие комплементарно связавшимся продуктам амплификации с соответствующими олигонуклеотидами (рис. 6).

4.Интерпретация результатов. Интерпретацию результатов проводят, анализируя прохождение внутренних контролей и сравнивая расположение полосок с шаблоном, предоставленном про-

 

изводителем (рис. 7).

 

 

Достоинства метода:

СЕМИНАРАМ

1.

имеются автоматические шейкеры-инкубаторы, в которых весь

Получение результата в течение 1–2 рабочих дней.

 

2.

Возможность выявления нескольких видов НТМБ

 

3.

Возможность автоматизации процесса (рис. 8). В продаже

 

 

процесс гибридизации и визуализации результатов проходит без

К

 

вмешательства оператора.

МАТЕРИАЛЫ

 

 

 

Недостатки метода:

 

1.

Нельзя идентифицировать микобактерии непосредственно из

 

 

диагностического материала. Набор предполагает работу с

МЕТОДИЧЕСКИЕ

 

личивает риск контаминации.

 

культурой, что менее удобно в случае выявления медленнора-

 

 

стущих микобактерий.

 

2.

Работа с большим количеством ДНК ведется не в закрытых

 

 

пробирках, а в открытых «ванночках», что существенно уве-

 

 

 

Раздел 2.

391

Методика проведения идентификации микобактерий до вида с использованием ПЦР в режиме реального времени.

Этапы проведения анализа

1.Выделение ДНК из культуры или диагностического материала. Преподаватель заостряет внимание слушателей, что при выделении ДНК из культуры достаточно использовать любой быстрый одношаговый метод выделения, тогда как выделение ДНК из диагностического материала требует использования многошаговой методики выделения ДНК с использованием агрессивных лизирующих буферов.

2.Проведение ПЦР в режиме реального времени с праймерами, комплементарными специфичным для каждого вида НТМБ участкам генома.

3.Интерпретация результата.

Достоинства метода:

1.Анализ можно проводить как из культуры, так и непосредственно из диагностического материала больного.

2.Время получения результата – 2–4 часа (в зависимости от выбранного метода выделения ДНК)

3.Вероятность контаминации снижена

4.Низкая стоимость анализа.

5.Возможность автоматизации процесса.

Табл. 1.

Сравнение времени получения результатов идентификации с помощью стриповой технологии и ПЦР в режиме реального времени

 

Этапы идентифи-

 

Этапы идентифи-

 

 

 

кации с использо-

 

 

кации с использо-

Затраченное время

Затраченное время

 

ванием ПЦР в ре-

 

ванием стриповой

 

жиме реального

 

 

технологии

 

 

 

 

времени

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Выделение ДНК

20–40 мин

1. Выделение ДНК

20–40 мин

пликонов на стри-

3. Интерпретация

2 часа

15 мин

 

из культуры

 

из культуры

 

 

2. Проведение ам-

 

2. Проведение ам-

 

 

2 часа

плификации в ре-

2 часа

 

плификации

 

жиме реального

 

 

 

 

времени

 

 

3. Гибридизация ам-

 

 

 

МЕТОДИЧЕСКИЕ

пах

 

результатов

 

 

 

 

 

 

 

 

4. Интерпретация

15 мин

 

 

 

результатов

 

 

 

 

 

 

392

Идентификация микобактерий до вида с использованием метода масс-спектрометрии.

Краткое определение метода:

Масс-спектрометрия – метод определения химического, фазового состава и молекулярной структуры вещества, основанный на регистрации спектра масс ионов, образованных в результате ионизации атомов и (или) молекул пробы.

Масс-спектрометрия – представляет собой современную фундаментальную и прикладную физико-химическую науку. В её задачу входит получение и накопление знаний о составе веществ, их структуре, физико-химических свойствах, а также происходящих с ним процессах.

Масс-спектрометр – прибор для разделения ионизованных частиц (атомов, молекул, кластерных образований) по их массам (точнее, по отношению массы иона m его заряду e путем воздействия магнитных и электрических полей, а также для определения их масс и относительных содержаний, т.е. спектра масс).

Принцип метода масс-спектрометрии

Чтобы получить масс-спектр, необходимо:

1.Нейтральные молекулы анализируемого вещества превратить в заряженные ионы.

Способ ионизации исследуемого вещества зависит от физикохимических свойств самого вещества (табл. 2):

Табл. 2

Способ ионизации исследуемого вещества в зависимости от физико-химических свойств

Анализируемое вещество

Метод ионизации

 

 

Газ

Электронная ионизация

Химическая ионизация

 

Электронный захват

 

 

Твердое вещество

Десорбция в электрическом поле

Плазменная десорбция

 

 

 

Органические вещества, биологические

Матрично-активированная лазерная

объекты (белки, липиды, углеводы, ДНК,

десорбция/ионизация (MALDI)

РНК и пр.)

 

Для работы с биологическими объектами используется мат- рично-активированная лазерная десорбция/ионизация (MALDI)

Матрично-активированная ионизация – мягкий метод ионизации (поэтому он подходит для биологических объектов), когда анализируемый образец наносится на подложку вместе с матрицей.

Раздел 2. МЕТОДИЧЕСКИЕ МАТЕРИАЛЫ К СЕМИНАРАМ

393

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Матрица – специальное вещество, принимающее на себя удар лазера, поглощающее энергию лазера и передающее ее в виде заряда на молекулы исследуемого вещества.

Примеры матриц:

производные коричной кислоты

производные бензойной кислоты

производные синапиновой кислоты

производные серуловой кислоты

2. Отсортировать получившиеся ионы по массе и заряду. Прибор, проводящий масс-спектрометрию с MALDI–время-

пролетный масс-спектрометр (рис. 9).

Ионы исследуемого вещества попадают в вакуумную часть прибора, где под воздействием электрического поля движутся со скоростью, зависящей от величины их заряда и массы.

Основным условием точной работы прибора является создание глубокого вакуума. Это обеспечивает отсутствие на пути летящих ионов посторонних молекул и атомов, столкновения с которыми приводит к рассеиванию и превращению заряженных ионов обратно в нейтральные частицы.

3. Детектировать ионизированные молекулы и атомы вещества. Для детекции ионов используются динодные вторично-элек- тронные умножители. Прибор измеряет время пролета заряженный ионов исследуемого вещества и строит спектр масс (рис. 10).

Принцип идентификации бактерий с использованием MALDI масс-спектрометрии

В основе видовой идентификации бактерий лежит получение масс-спектров рибосомальных белков. Известно, что аминокислотный состав рибосомальных белков прокариот стабилен в пределах одного вида и различен у разных видов.

Сравнение профилей рибосомальных белков Mycobacterium позволит быстро и точно определять их видовую принадлежность (рис. 11–13).

Достоинства метода

1.Точность проведения анализа

2.Быстрота проведения анализа – до 384 образца за рабочий день

3.Дешевизна. Стоимость реагентов и расходных материалов на 1 анализ не превышает 100 рублей.

4.Компьютерная интерпретация результатов. Возможность построения «дерева родства»

5.Возможность автоматизации процесса.

394

Рекомендуемая литература

1.Приказ МЗ РФ №109 от 21.03.2003. «О совершенствовании противотуберкулезных мероприятий в Российской Федерации»

2.Lee A.S., Jelfs P., Sintchenko V., Gilbert G.L. Identification of nontuberculous mycobacteria: utility of the GenoType Mycobacterium CM/AS assay compared with HPLC and 16S rRNA gene sequencing. //J. Med. Microbiol. – 2009. – Vol. 58. – P. 900–904.

3.Richter E., Rьsch-Gerdes S., Hillemann D. Evaluation of the GenoType Mycobacterium Assay for Identification of Mycobacterial Species from Cultures // J. Clin. Microbiol. – 2006. – Vol. 44. – P. 1769– 1775.

4.Shitikov E., Ilina E., Chernousova L., Borovskaya A., Rukin I., Afanas’ev M., Smirnova T., Vorobyeva A., Larionova E., Andreevskaya S., Kostrzewa M., Govorun V. Mass spectrometry based methods for the discrimination and typing of mycobacteria // J. Infection, Genetics and Evolution. – 2012. – Vol. 12. – P. 838–845.

5.Susceptibility testing of Mycobacteria, Nocardiae and other aerobic Actinomycetes; Approved Standards. – M 24–A. – Vol. 23. – №18.

Материально-техническое обеспечение

Флип-чарт, маркеры, фломастеры, лазерная указка, мультимедийное оборудование, экран

Раздел 2. МЕТОДИЧЕСКИЕ МАТЕРИАЛЫ К СЕМИНАРАМ

395

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Тема 10.5. «Значение молекулярно-генетической идентификации* микобактерий для фтизиатрической клиники»

Количество аудиторных часов – 1

Примерный план семинарского занятия

Вопросы, прорабатываемые на семинаре:

лекарственная чувствительность НТМБ;

НТМБ как «маска» ШЛУ ТБ;

значение молекулярно-генетической идентификации НТМБ для исключения ошибок диагностики (дифференциация туберкулез/микобактериоз);

частота выявления НТМБ в клинике с использованием моле- кулярно-генетических методов; Цель семинара – формирование у слушателей представлений о

возможных ошибках в диагностике туберкулеза, связанной с недостаточными знаниями о природе и методах идентификации НТМБ

Семинар проводится в интерактивной форме. При обсуждении темы семинара ведущий и слушатели используют материалы лекций модуля 10. «Молекулярно-генетическая идентификация микобактерий» по теме 10.5 «Значение молекулярно-генетической идентификации микобактерий для фтизиатрической клиники», а также учитывается самоподготовка по теме 10.4 «Методы, применяемые для видовой идентификации НТМБ».

Вводная часть (5–10 мин)

Ведущий семинара обсуждает со слушателями рабочий план и определяет ведущую тему дискуссии. Ведущий перечисляет основные проблемы диагностики микобактериозов в России и пути решения этих проблем.

Основная часть (30 мин)

В основной части семинара преподаватель объясняет, как важно дифференцировать туберкулез от микобактериоза. Преподаватель объясняет, в чем трудности дифференциальной диагностики туберкулеза и микобактериоза. Ведущий фиксирует внимание слушателей на возможных лабораторных ошибках в выявлении НТМБ (схема 1), когда, без адекватно выполненной идентификации врачам может быть выдан неправильный результат. Далее ведущий останавливается на лекарственной чувстви-

*Демонстрационный материал к семинару представлен на диске. Может быть распечатан в качестве раздаточного материала.

396

тельности НТМБ и методах ее определения. Преподаватель фиксирует внимание слушателей на природной устойчивости НТМБ ко многим противотуберкулезным препаратам, микобактериоз может «маскировать» туберкулез с широкой лекарственной устойчивостью.

Говоря о частоте выявления НТМБ в лабораториях, преподаватель отмечает недостаточность информации.

Преподаватель подчеркивает, что однократное выявление НТМБ в пробирке не может являться однозначным критерием заболевания и предлагает слушателям стандарты для постановки диагноза микобактериоз (табл. 1). Преподаватель приводит пример частоты выявления НТМБ (табл. 2–4).

Заключительная часть

В заключении преподаватель подчеркивает, что только грамотно проведенная идентификация позволит избежать неправильного диагноза и неадекватного лечения больных микобактериозами.

Краткий информационный материал к семинару модуля 10

Молекулярно-генетическая идентификация микобактерий. Тема 10.4. «Методы, применяемые для видовой идентификации НТМБ».

Проблемы диагностики микобактериоза в России

Идентификация культур микобактерий до вида почти не проводится в отечественных баклабораториях с большим потоком анализов. Грамотная идентификация проводится только в крупных исследовательских центрах.

Практически не производится отечественных молекулярно-ге- нетических тест-систем (например, ПЦР) для быстрой и дешевой идентификации кислотоустойчивых палочек, а зарубежные аналоги дороги.

Проблема микобактериозов слабо освещена в специальной литературе, статистических данных по заболеваемости найти очень трудно.

По клиническим проявлениям туберкулез и микобактериозы очень схожи. Только грамотно проведенная идентификация с помощью молекулярно-генетических методов поможет врачам установить правильный диагноз.

Ошибки в лабораторной диагностике микобактериозов приводят к неправильной постановке диагноза и назначению неадекватной схемы химиотерапии.

Раздел 2. МЕТОДИЧЕСКИЕ МАТЕРИАЛЫ К СЕМИНАРАМ

397