Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Частная бактериология

.pdf
Скачиваний:
3
Добавлен:
23.12.2023
Размер:
24.43 Mб
Скачать

501

Входные ворота

Пленка

Увеличенные

лимфатические узлы Токсемия

Отек шеи

Нервная система Сердце Почки

Рисунок 7.29 – Патогенез развития дифтерии.

При распространении процесса из ротоглотки вниз по дыхательным путям последовательно поражаются трахея и бронхи. В результате отека (рисунок 7.30) и отслоения крупозной пленки со слизистой трахеи может развиться дифтерийный круп (шотл. croup - каркать) – асфиксия, возникающая при закупорке респираторного тракта.

Рисунок 7.30 – Дифтерийный круп. Стрелками обозначены участки отека. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Дифтерийный или истинный круп характеризуется крупозным воспалением слизистой оболочки гортани и трахеи. В дисфоническую стадию развития крупа наблюдается нарастающая осиплость голоса, “лающий” кашель. Затем появляются симптомы стеноза верхних дыхательных путей (шумное дыхание, напряжение дыхательной мускулатуры). В асфиксическую стадию процесса может наступить удушье в результате закрытия просвета дыхательных путей отеком или пленкой.

Дифтерия является токсинемической инфекцией, при которой возбудитель остается в месте входных ворот, а основные клинические проявления заболевания связаны с действием экзотоксина, проникающего в кровь. Наиболее часто при токсинемии поражаются миокард, нервная ткань, надпочечники и почки. В этих органах развивается дегенерация паренхимы, некроз, обширные кровоизлияния.

Клиническая картина дифтерии. Различают следующие периоды болезни: - инкубационный период (от 2 до 10 дней, в среднем 5-7 суток);

502

-период манифестных проявлений и ранних токсических осложнений (5- 10 суток);

-период поздних токсических осложнений (до 6 недель);

-период реконвалесценции (2-3 месяца).

Начало заболевания в легких случаях постепенное, при тяжелом течении - острое. Температура тела повышается до 38-40°С.

Наиболее часто развивается дифтерия зева. В месте входных ворот инфекции отмечается гиперемия, отек слизистой оболочки и пленка серовато-белого цвета. Пленка содержит большое количество клеток возбудителя. Наличие пленки является характерным признаком дифтерии (рисунок 7.31).

Рисунок 7.31 – Дифтерия зева. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

При локализации процесса в зеве увеличиваются региональные (шейные) лимфатические узлы, в области шеи развивается выраженный отек мягких тканей - симптом “бычья шея” (рисунок 7.32).

Рисунок 7.32 – Отек в области шеи при дифтерии (“бычья шея”). Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Иммунитет. После переболевания дифтерией формируется пожизненный напряженный антитоксический иммунитет. В 5-6% случаев все же возможно повторное заболевание.

Диагностика дифтерии. Лабораторную диагностику дифтерии проводят согласно МУК 4.2.3065-13. Бактериоскопическое исследование при дифтерии проводится редко, так как эффективность этого метода очень низкая в связи с

503

возможностью обнаружения в мазках коринебактерий – представителей нормальной микробиоты. Например, в носоглотке часто обнаруживается C. pseudodiphtheriticum (палочка Хофмана), а на слизистой оболочке глаз - C. xerosis.

Бактериологическое (культуральное) исследование предусматривает выделение чистой культуры на элективных питательных средах и изучение ее биохимических свойств. Особое внимание уделяется пробе Пизу на цистиназу, пробе Закса на уреазу, изучению ферментативной активности с использованием укороченного пестрого ряда (глюкоза, сахароза, крахмал). В обязательном порядке проводится определение токсигенности выделенных чистых культур. Серологические методы диагностики являются ретроспективными.

Бактериологическое исследование проводят в следующих случаях:

-диагностическое обследование детей и взрослых с острыми воспалительными явлениями в области зева, носа и носоглотки, особенно при подозрении на дифтерию;

-обследование по эпидемическим показаниям детей и взрослых, бывших в контакте с источником инфекции;

-выявление возможных бактерионосителей среди лиц, вновь поступающих в детские дома, школы-интернаты.

Исследуемый материал. В качестве исследуемого материала используют слизь и пленки из очагов воспаления. Сбор материала необходимо проводить в течение 3-4 часов (не позже 12 часов) с момента обращения больного. Для взятия материала используют сухие ватные тампоны (если посев будет проведен не позднее 2-3 часов после сбора материала) или тампоны, предварительно смоченные 5% раствором глицерина (при транспортировке материала на дальние расстояния). Материал для исследования берут отдельными тампонами из ротоглотки (с миндалин) и из носа (рисунок 7.33). Отбор материала следует проводить не ранее чем через 2 часа после еды.

Рисунок 7.33 – Взятие материала из носа. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

При дифтерии редких локализаций (глаз, ухо, кожная рана) материал берут с пораженных участков, а также с миндалин и из носа. При наличии налетов материал берут с границы пораженных и здоровых тканей. Посев материала необходимо провести не позднее чем через 3 часа после его взятия.

Схема микробиологического исследования при дифтерии:

1 день:

504

-бактериоскопическое исследование (окраска мазков корифосфином, по Граму и Нейссеру);

-посев исследуемого материала на одну из рекомендованных плотных питательных сред.

2 день:

-определение характера роста культур, микроскопия мазков, приготовленных

спосевов и окрашенных по Граму и Нейссеру;

-посев из отдельных колоний на среду для определения токсигенности (посев из половины колонии);

-посев на скошенный сывороточный агар для получения чистой культуры (посев из другой половины колонии).

3 день:

-посев чистой культуры на укороченный пестрый ряд (глюкоза, сахароза, крахмал);

-посев чистой культуры для выявления гемолиза, цистиназы (проба Пизу) и уреазы (проба Закса);

-постановка реакции агглютинации.

4 день:

-учет результатов;

-выдача заключения о выделении токсигенных или нетоксигенных коринебактерий.

Окончательный ответ о наличии токсигенных бактерий выдается через 48-72 часа. Окончательный ответ по биохимическим свойствам нетоксигенных бактерий выдается через 72-96 часов.

Для определения токсигенности выделенной культуры (реакция преципитации в геле, тест иммунодиффузии Илека или Элека) полоску фильтровальной бумаги смачивают антитоксической противодифтерийной сывороткой и помещают на поверхность питательной среды в чашке Петри. Испытуемые культуры высевают бляшками или штрихами по обе стороны от полоски. На одну чашку высевают несколько штаммов, один из которых является

заведомо токсигенным (из коллекции лаборатории) и служит контролем. Чашки с посевами инкубируют при 37ОС, результаты учитывают через 24-48 часов. В результате встречной диффузии антитоксина и токсина на месте их взаимодействия образуется четкая полоса преципитации в виде полукруглой линии или “усов”. Схема реакции и результаты теста иммунодиффузии представлены на рисунке 7.34.

Рисунок 7.34 – Схема и результаты реакции иммунодиффузии. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

505

В настоящее время для выявления токсигенных дифтерийных бактерий используют следующие методы:

-иммуноферментный анализ (ИФА) с использованием меченых пероксидазой или щелочной фосфатазой антитоксических антител;

-тест с иммунохроматографическими полосками (ICS), на которые нанесены антитоксические антитела, меченые коллоидным золотом;

-полимеразная цепная реакция (ПЦР) для непосредственного обнаружения tox-оперона.

Ускоренными методами выявления коринебактерий являются:

-микроскопический метод;

-иммунофлюоресцентный метод;

-метод “свернутого тампона” (метод Фольгера или Фольгера-Золле) - метод забора материала для бактериологического исследования на дифтерийную палочку с помощью стерильного ватного тампона, пропитанного лошадиной сывороткой. Сыворотку крови свертывают, а тампоны после взятия материала помещают на 4-6 часов в термостат, после чего используют для приготовления мазка.

Однако эти методы не позволяют говорить о токсигенности выделенных культур.

Серологические методы при дифтерии являются методами ретроспективной диагностики, поэтому они имеют вспомогательное значение.

РНГА (РПГА) с антигенным эритроцитарным диагностикумом используется для оценки напряженности антитоксического иммунитета. Эритроцитарный диагностикум получают сенсибилизацией эритроцитов дифтерийным анатоксином. Защитный титр антител в РНГА равен 1:40. Если антитела обнаруживаются в более низких разведениях сыворотки, требуется ревакцинация. Учет результатов осуществляют визуально - по степени агглютинации эритроцитов. Положительными считаются пробы, давшие реакцию агглютинации не менее чем на два плюса (++).

Для оценки напряженности антитоксического иммунитета ранее широко применялась проба Шика: в кожу средней трети ладонной поверхности предплечья вводят 1/40 Dlm дифтерийного токсина в объеме 0,2 мл. При отсутствии в крови антитоксинов на месте введения токсина через 24-48 часов появляются припухлость

ипокраснение. При наличии антитоксинов (1/30 АЕ/мл) местных проявлений не наблюдается. В настоящее время эта проба практически не используется.

Лечение дифтерии проводится в стационаре. Для нейтрализации токсина используют специфическую противодифтерийную лошадиную очищенную концентрированную жидкую сыворотку (антитоксин). Препарат получают путем многократной иммунизации лошадей дифтерийным анатоксином. Сыворотку вводят внутримышечно или подкожно (рисунок 7.35).

506

Рисунок 7.35 - Противодифтерийная лошадиная сыворотка. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Специфическое лечение противодифтерийной сывороткой начинают немедленно при подозрении на дифтерию, так как антитоксин нейтрализует только циркулирующий в крови и лимфе токсин, который еще не связался с тканями. Для профилактики анафилактического шока противодифтерийную сыворотку вводят дробно. Дробное введение гетерологичных сывороточных препаратов разработал А.М. Безредка (рисунок 7.36).

Рисунок 7.36 – Александр Михайлович Безредка (1870-1940 гг.). Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Суть дробного метода введения гетерологичных сывороток состоит в том, что сначала в организм вводится очень малая доза сыворотки, а спустя 4 часа – остальное необходимое количество. Введение сыворотки после 3-го дня болезни считается поздним. Противодифтерийная антитоксическая сыворотка вводится внутримышечно в дозе от 10000 до 400000 МЕ в зависимости от тяжести течения болезни.

Разработан также иммуноглобулин человека противодифтерийный для внутривенного введения. Для получения противодифтерийного иммуноглобулина доноров прививают однократно адсорбированным дифтерийным анатоксином с уменьшенным содержанием антигена (АД-М) в дозе 0,5 мл подкожно в подлопаточную область. Через 30 дней проводят взятие крови и определение уровня антитоксина в реакции пассивной гемагглютинации с использованием эритроцитарного дифтерийного диагностикума. Для выделения иммуноглобулина

507

используют плазму с титром антител ≥ 1:160. Выделение иммуноглобулиновой фракции проводят спиртовым методом при низких температурах.

Поскольку введение антитоксина не оказывает влияния на размножение C. diphtheriae в месте входных ворот инфекции, одновременно с введением антитоксической противодифтерийной сыворотки больным обязательно назначают антибиотики. Препаратами выбора являются пенициллин или эритромицин, либо другие β-лактамы и макролиды (кларитромицин, азитромицин, ванкомицин, джозамицин).

В связи с токсинемией больным назначают детоксикационную терапию. При стенозе гортани проводят трахеотомию. Выписывают больных после двукратного отрицательного результата бактериологического обследования.

Специфическая профилактика. Для специфической профилактики дифтерии используют препараты, содержащие дифтерийный анатоксин (токсоид). В процессе получения анатоксин утрачивает способность связываться с клеточными рецепторами, не обладает АДФ-рибозил-трансферазной активностью и не расщепляется на А- и В-субъединицы. Этим объясняется его полная безвредность при сохранении иммуногенности. Дифтерийный анатоксин входит в состав следующих профилактических препаратов:

-адсорбированная коклюшно-дифтерийно-столбнячная вакцина (АКДС-

вакцина);

-адсорбированный дифтерийно-столбнячный анатоксин (АДС-анатоксин);

-адсорбированный дифтерийно-столбнячный анатоксин с уменьшенным содержанием антигенов (АДС-М-анатоксин):

-адсорбированный дифтерийный анатоксин с уменьшенным содержанием антигена (АД-М-анатоксин).

АКДС-вакцина представляет собой гомогенную взвесь, состоящую из убитых коклюшных палочек, дифтерийного и столбнячного анатоксинов, сорбированных на гидроокиси алюминия. Применяется для плановой иммунизации одновременно против коклюша, дифтерии и столбняка (рисунок 7.37).

Рисунок 7.37 – АКДС-вакцина. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

В настоящее время используют также бесклеточные вакцины АКаДС, которые содержат ацеллюлярный коклюшный компонент - коклюшный анатоксин и ряд протективных коклюшных антигенов. В РФ официально разрешено применение следующих АКаДС-вакцин, имеющих в своем составе коклюшный анатоксин,

508

филаментозный гемагглютинин и пертактин: Инфанрикс, Инфанрикс-Гекса, Тетраксим и Пентаксим.

АДС-анатоксин состоит из смеси дифтерийного и столбнячного анатоксинов, сорбированных на гидроокиси алюминия. Применяется для плановой иммунизации против дифтерии и столбняка детей, переболевших коклюшем или привитых против коклюша.

АД-анатоксин представляет собой очищенный концентрированный адсорбированный на гидроокиси алюминия препарат. Он предназначен для создания активного искусственного иммунитета к дифтерии у детей.

Препараты с уменьшенным содержанием антигена (АДС-М, АД-М) менее реактогенны и применяются у детей старше 6 лет, подростков и взрослых (рисунок

7.38).

Рисунок 7.38 – Адсорбированный дифтерийный анатоксин с уменьшенным содержанием антигена. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Для профилактики дифтерии, столбняка, коклюша, полиомиелита и гемофильной инфекции применяется французская вакцина Пентаксим (рисунок

7.39).

Рисунок 7.39 – Вакцина Пентаксим. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Эта вакцина содержит дифтерийный анатоксин, столбнячный анатоксин, коклюшный анатоксин, филаментозный коклюшный гемагглютинин, инактивированные вирусы полиомиелита 1, 2 и 3 типов, полисахарид Haemophilus influenzae типа b. В соответствии с Национальным календарем профилактических прививок Российской Федерации курс вакцинации при использовании этой вакцины состоит из 3 введений препарата в возрасте 3, 4,5 и 6 месяцев, а ревакцинация осуществляется в возрасте 18 месяцев.

509

Для иммунопрофилактики дифтерии, коклюша, столбняка и гепатита В у детей используют вакцину Бубо-Кок (рисунок 7.40).

Рисунок 7.40 - Вакцина Бубо-Кок. Заимствовано из Интернет-ресурсов.

Вакцина представляет собой смесь, состоящую из дифтерийного и столбнячного анатоксинов, убитых коклюшных микробов и рекомбинантного дрожжевого поверхностного антигена вируса гепатита В (HBs-антигена). Вакцина вводится внутримышечно.

Для профилактики дифтерии, столбняка и гепатита В у детей старше 6 лет, подростков и взрослых используют также вакцину Бубо-М. Вакцина вводится внутримышечно в дельтовидную мышцу в дозе 0,5 мл.

Наибольшее распространение в России получила вакцина АКДС – адсорбированная коклюшно-дифтерийно-столбнячная вакцина. Она состоит из коклюшных бактерий, убитых формалином или мертиолятом, дифтерийного анатоксина и столбнячного анатоксина. Первая вакцинация проводится в 3 месяца, вторая в 4,5 месяца, третья – в 6 месяцев, ревакцинация – в 18 месяцев, 6 и 14 лет. Ревакцинация взрослых при дифтерии проводится с интервалом 10 лет. Препарат вводится внутримышечно или подкожно.

В России зарегистрированы также другие вакцины против дифтерии: Тетракок (для профилактики коклюша, дифтерии, столбняка и полиомиелита, Франция), Д. Т. Вакс (для профилактики дифтерии и столбняка у детей, Франция), ДТ-адюльт (для профилактики дифтерии и столбняка у подростков и взрослых, Франция).

Вопросы для самоконтроля усвоения материала

1.Расскажите об истории открытия возбудителя дифтерии.

2.Опишите морфологические свойства дифтерийного микроба.

3.Какие культуральные свойства характерны для возбудителя дифтерии?

4.Назовите биохимические особенности возбудителя дифтерии.

5.Охарактеризуйте факторы патогенности дифтерийного микроба.

6.Расскажите о патогенезе дифтерии.

7.Опишите клинические формы и симптомы дифтерии.

8.Расскажите о методах лабораторной диагностики дифтерии.

9.Охарактеризуйте средства специфической профилактики дифтерии.

10.Принципы лечения дифтерии.

Тренировочные тесты

510

1.Возбудитель дифтерии впервые был обнаружен (один правильный ответ): 1.1 Кохом 1.2 Пастером 1.3 Клебсом

1.4 Ивановским

1.5 Мечниковым

2.В чистой культуре возбудитель дифтерии впервые был выделен (один правильный ответ):

2.1 Пастером

2.2 Кохом

2.3 Эрлихом

2.4 Лёффлером

2.5 Ивановским

3.Зерна волютина окрашиваются с помощью метода (один правильный ответ):

3.1Грама

3.2Нейссера

3.3Морозова

3.4Циля-Нельсена

3.5Пешкова

4.Для возбудителя дифтерии характерно (несколько правильных ответов): 4.1 грамотрицательные палочки 4.2 грамположительные палочки 4.3 образование спор 4.4 наличие зерен волютина 4.5 наличие жгутиков

5.Дифтерийный токсин является (один праильный ответ):

5.1 эндотоксином

5.2гистотоксином

5.3энтеротоксином

5.4нейротоксином

5.5лейкоцидином

6.Основным фактором патогенности дифтерийного микроба является (один праильный ответ):

6.1 жгутики

6.2 экзотоксин

6.3 эндотоксин

6.4 гепарин

6.5 фибринолизин

7.Источники инфекции при дифтерии (несколько правильных ответов):

7.1 бактерионосители токсигенных штаммов