6. Санитарно-бактериологическое исследование перевязочного и шовного материала. Его значение.

Ответ.

САНИТАРНО-МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ В МЕДИЦИНСКИХ УЧРЕЖДЕНИЯХ

Основным нормативным документом является Приказ №720 от 31 июля 1978 года «Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией». В приложении 2 представлена Инструкция по бактериологическому контролю комплекса санитарно-гигиенических мероприятий в лечебно-профилактических учреждениях (отделениях хирургического профиля, в палатах и отделениях реанимации и интенсивной терапии).

Бактериологические лаборатории центров санэпиднадзора и дезинфекционных станций проводят контроль не реже двух раз в год, баклаборатории лечебных учреждений контролируют санитарно-гигиенический режим (обсемененность различных объектов и воздуха) один раз в месяц, а контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, операционного белья, перевязочного материала, рук хирургов и кожи операционного поля (выборочно) – один раз в неделю.

Исследование микробной обсемененности объектов внешней среды

Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов внешней среды предусматривает выявление стафилококка, синегнойной палочки, бактерий группы кишечных палочек БГКП (ОКБ).

Забор проб с поверхностей различных объектов осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками, размером 5*5 см. Для увлажнения тампонов и салфеток используют стерильный физраствор. При контроле мелких предметов смывы забирают с поверхности всего предмета. При контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят в нескольких местах исследуемого предмета площадью примерно 100-200 см².

Для выделения стафилококков делают посев непосредственно на чашку Петри с желточно-солевым агаром (ЖСА) и бульоны накопления (6,5% солевой и с 1% глюкозы). Далее работают по схеме исследования на стафилококк.

Для выявления БГКП (ОКБ) производят посев на среду обогащения Кесслера или 10-20% желчный бульон. Через сутки инкубирования при 37^o С делают пересев на среду Эндо. Подозрительные колонии на среде Эндо (лактозоположительные) микроскопируют и идентифицируют по схеме.

Для выявления синегнойной палочки специальные посевы можно не производить. Обычно колонии синегнойной палочки удается выявить на кровяном агаре или на среде Эндо. Далее – исследование по схеме.

Ориентировочный перечень объектов, подлежащих бактериологическому контролю

А. Наркозная комната

1. Интубационная трубка

2. Маска наркозного аппарата

3. Тройник наркозного аппарата

4. Гофрированная трубка

5. Ларингоскоп

6. Роторасширитель

7. Дыхательный мешок

8. Руки врачей-анестезиологов-реаниматологов, сестер-анестезиологов

Б. Предоперационная

1. Тазы для мытья рук хирургов

2. Чистые щетки для мытья рук

3. Фартуки (клеёнчатые и полиэтиленовые)

В. Операционная

1. Рабочий стол анестезиологов

2. Операционный стол

3. Шланг кислородной подводки

4. Смывы с рук всех участвующих в операции

5. Кожа операционного поля

Г. Послеоперационные палаты, отделения и палаты реанимации и интенсивной терапии

1. Кровать, подготовленная для больного

2. Полотенце для рук персонала и смывы с рук

3. Щетка на раковине

4. Шланг кислородной подводки

5. Запасная наркозная аппаратура (набор реанимационной укладки)

6. Шланг вакуумотсоса

7. Внутренняя поверхность холодильника (для хранения лекарств)

8. Градусники

Д. Перевязочная

1. Кушетка для перевязок

2. Полотенце для рук персонала

3. Щетка на раковине

4. Халат медицинских сестер

5. Руки врачей, медицинских сестер

6. Рабочий медицинский стол

7. Внутренняя поверхность холодильника для хранения лекарств

Контроль стерильности изделий медицинского назначения

Контроль стерильности изделий, простерилизованных в ЛПУ, проводят в специально оборудованных помещениях, соблюдая асептические условия, исключающие возможность вторичной контаминации изделий микроорганизмами.

В стационарах, имеющих централизованные стерилизационные (ЦСО), контролю на стерильность подлежит не менее 1% от числа одновременно простерилизованных изделий одного наименования.

В стационарах, не имеющих централизованных стерилизационных и осуществляющих стерилизацию в отделениях, контролю на стерильность подлежат не менее двух одновременно простерилизованных изделий одного наименования.

Методика и техника посева на стерильность

Посевы на стерильность проводит бактериолог с помощью лаборанта.

Контроль стерильности проводят путем прямого посева (погружения) изделий целиком (при их небольших размерах) или в виде отдельных деталей (разъемные изделия) и фрагментов (отрезанные стерильными ножницами кусочки шовного, перевязочного материала и т.п.) в питательные среды. Объем питательной среды в пробирке (колбе, флаконе) должен быть достаточным для полного погружения изделия (деталей или фрагментов изделия).

При проверке стерильности более крупных изделий проводят отбор проб методом смывов с различных участков поверхности изделий: с помощью стерильного пинцета каждый участок тщательно протирают стерильной марлевой салфеткой, увлажненной стерильным физраствором или раствором нейтрализатора (при стерилизации раствором химического средства). Каждую салфетку помещают в отдельную пробирку с питательной средой.

У изделий, имеющих функциональные каналы, рабочий конец опускают в пробирку с питательной средой и с помощью стерильного шприца или пипетки 1-2 раза промывают канал этой средой.

При контроле стерильности проводят посев на тиогликолевую среду (для культивирования бактериальной флоры) и среду Сабуро (для культивирования микроскопических грибков).

При контроле изделий каждого наименования обязателен одновременный посев на обе указанные питательные среды.

Посевы в тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 32^o С, посевы в среду Сабуро – при температуре 20-22^o С в течение 14 суток при контроле изделий, простерилизованных растворами химических средств и газовым методом, в течение 7 суток – изделий, простерилизованных термическими (паровой, воздушный) методами.

При отсутствии роста микроорганизмов во всех пробирках делают заключение о стерильности изделий.

В микробиологическую лабораторию для исследования на стерильность поступает перевязочный материал (бинты, марлевые салфетки, ватные шарики, тампоны), шовный хирургический материал (шелк, кетгут и др.), простерилизованный в лечебно-профилактических учреждениях.

Материал для исследования направляют в лабораторию в день его стерилизации, в закрытых и опечатанных биксах.

Пробы кетгута и шелка берет хирургическая сестра в условиях чистой операционной по одному мотку из каждой банки с подготовленным для операции шовным материалом.

Для проведения посевов в боксе необходимы:

• набор стерильных инструментов – ножницы, корнцанги, анатомические пинцеты;

• cтерильный гипосульфит, 10 % раствор;

• дистиллированная стерильная вода;

• набор питательных сред.

Посев исследуемого материала производят:

• в мясопептонный бульон с 0,5 % глюкозы для выделения АЭРОБНОЙ микрофлоры;

• в среду Китта-Тароцци с 0,15 % агара для выделения АНАЭ­РОБНЫХ микроорганизмов.

Исследуемый хирургический материал берут из разных мест бикса стерильным пинцетом над пламенем горелки и опускают в 2 пробирки с сахарным бульоном и в 2 пробирки со средой Китта–Тароцци.

Кетгут обычно сохраняют в спиртовом растворе йода, по­этому перед посевом на стерильность необходимо йод нейтра­лизовать.

Для этого:

• моток кетгута помещают на 24 ч в колбу с 30 мл стерильного 10 % раствора гипосульфита;

• по истечении указанного времени кетгут из раствора гипосульфита переносят в колбу с 30 мл стерильной дистиллированной воды на 24 ч;

• непосредственно перед посевом моток кетгута извлекают стерильным пинцетом из колбы с дистиллированной водой, кладут в чашку Петри, простерилизованную вместе с кружком фильтровальной бумаги, разрезают стерильными ножницами на куски длиной 2–4 см.

В 2 пробирки с сахарным бульоном и в 2 пробирки со средой Китта-Тароцци (рецепт 161) вносят по нескольку ку­сочков исследуемого кетгута.

Цели исследования:

• определение количества мезофильных аэробов и факульта­тивно-анаэробных микроорганизмов в 1 см³ на питательном агаре;

• выявление бактерий группы кишечных палочек в 1 см³ с использованием сред обогащения [глюкозопептонная среда (рецепт 95), среды Кесслера (рецепт 119) и Кода (рецепт 159)] и дифференциально-диагностической среды Эндо. На среде Эндо возможно обнаружение колоний синегнойной палочки и бактерий рода Proteus. В этих случаях проводят идентификацию по культурным и биохимическим тестам. Учёт.