Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Власов Ю.И., Ларина Э.И. Сельскохозяйственная вирусология

.pdf
Скачиваний:
127
Добавлен:
30.09.2020
Размер:
4.48 Mб
Скачать

Цепь РНК расположена в углублении между слоями белковых субъединиц на расстоянии 4 нм от оси части­ цы или 2 нм от края центральной полости и 3 нм от

внешней поверхности вириона и со всех сторон защи­ щена белком. Молекула РНК представлена единой полинуклеотидной цепью, состоящей из 6300 нуклеотид­ ных остатков. Каждая молекула белка связана с тремя нуклеотидными остатками РНК. Наряду с этими обще­ признанными данными в литературе встречаются све­ дения о том, что частица ВТМ построена из 2650 субъ­ единиц, упакованных спирально с шагом спирали 1,785 нм.

Вирионы других палочковидных вирусов имеют сход­ ную с ВТМ структуру, но отличаются по некоторым по­ казателям. Например, у вируса погремковости табака период идентичности равен трем оборотам, шаг спира­ ли— 2,5 нм, а число субъединиц на виток составляет 25'/з- У вируса штриховатой мозаики ячменя период идентичности равен пяти оборотам спирали, а шаг

2,6 нм.

Нитевидные вирусы, по имеющимся данным, пред­ ставляют собой спираль с шагом от 3,3 до 3,6 нм.

' В и р у с ы с и к о с а э д р и ч е с к о й с и м м е т р и ­ ей. Белковые оболочки сферических вирусов выглядят как многогранники, а видимые в электронный микро­ скоп субъединицы представляют собой агрегаты бел­ ковых (химических) субъединиц, и называются морфо­ логическими единицами йли капсомерами. Часто капсо-

меры состоят из пяти или шести субъединиц, в этом случае они носят название пентамеры и гексамеры; диме­ ры и тримеры, т. е. содержащие соответственно две или три субъединицы, встречаются реже. Первые два типа капсомеров способствуют более тесному контакту между структурными бедками.

Капсиды сферических вирусов относятся к икосаэд-

рическому

типу симметрии. Икосаэдр — это многогран­

ник с 12

вершинами (в каждой из которых

сходятся

5 ребер), 20 гранями и 30 ребрами.

 

Приведем некоторые примеры структуры

сфериче­

ских или так называемых икосаэдрических вирусов. Модельный объект — вирус желтой мозаики турнепса —

имеет 180 белковых субъединиц,

сгруппированных в

32 капсомера (12 пентамеров и 20

гексамеров). Значи­

тельная часть РНК глубоко погружена в белковую обо­

лочку. Вирусы обыкновенной мозаики огурца и мозаи­ ки костра обладают аналогичным строением капсомера. Вирионы же вируса мозаики коровьего гороха

содержат 60

белковых

субъединиц двух типов: субъеди­

ницы одного

собраны

в 12 пентамеров, а другого — в

20 тримеров.

 

 

Сведений о характере расположения РНК или ДНК внутри вирусов с икосаэдрической симметрией пока мало.

Химический состав вирусов. Исследования химиче­ ского состава вирусов начаты около 50 лет назад. В 1935 г. В. М. Стэнли впервые получил очищенный препарат ВТМ. Общий анализ элементарного состава вирусных частиц показал наличие в них углерода (50%), водорода (7%), азота (15...17%), фосфора (0,5...4%), серы (0...1,6%), зольных элементов. Однако изучение типов химических соединений у различных представителей вирусов выявило разнообразие их хи­ мического состава.

Фитопатогенные вирусы содержат нуклеиновую кис­ лоту (РНК или ДНК), белок, ионы металлов. Кроме того, у некоторых из них отмечается наличие липидов (до 2 0 % у ряда бацилловидных вирусов), полиаминов (до 1 %, например, у вируса желтой мозаики турнепса),

ферментов типа РНК-транскриптазы (у вирусов ране­ вых опухолей клевера, некротического пожелтения сала­ та латука и др.). Несмотря на то, что половину массы кристаллов вирусов и от 10 до 50% массы вирусных частиц (в суспензии) составляет вода, обычно при опре­ делении состава вирионов все расчеты проводятся на сухую массу вирусных частиц.

Нуклеиновые кислоты. Большинство вирусов расте­

ний имеет одноцепочечную РНК, в то же время заре­ гистрированы случаи наличия двухцепочечной РНК, в частности у вирусов раневых опухолей клевера и кар­ ликовости риса. Что касается ДНК-содержащих фито­ вирусов, примерами таковых являются вирусы мозаики цветной капусты и пожелтения жилок огурца.

Содержание РНК заметно варьирует. Так, у изо­ метрических вирусов оно составляет 15...45%, у палоч­ ковидных — 5%, у бацилловидных — 1 %.

Нуклеиновая кислота — длинная полимерная цепь, состоящая из нуклеотидов. В состав нуклеотида входят азотистое основание, сахар (рибоза для РНК и дезо-

ксирибоза для ДНК) и остаток фосфорной кислоты. РНК содержит два пуриновых (аденин и гуанин) и два пиримидиновых (цитозин и урацил) основания. В ДНК вместо урацила находится тимин. Соседние нуклеоти­ ды соединены фосфорнодиэфирными связями между З'-углеродным атомом рибозы (или дезоксирибозы) од­ ного нуклеотида и 5'-углеродным атомом другого.

У вирусов с одноцепочечной РНК соотношения гуа-

ннн : цитозин и аденин: урацил не совпадают, в то вре­ мя как у двухцепочечных РНК- и ДНК-содержащих ви­ русов такое совпадение наблюдается.

Целый ряд вирусов (ВТМ, Х-вирус картофеля, Y-вирус картофеля и др.) состоит из одной молекулы РНК, молекулярная масса которой имеет более-менее однородное значение при использовании различных ме­ тодов расчета и составляет в среднем 2 - 106.

Более поздние исследования показали существова­ ние так называемых многокомпонентных вирусов, или вирусов с разделенным геномом, в которых РНК пред­ ставлена несколькими типами, имеющими различную молекулярную массу. У отдельных представителей этой группы обнаружена возможность наличия в одном из типов частиц двух молекул РНК. В качестве примеров многокомпонентных вирусов из числа изометрических можно назвать вирусы кольцевой пятнистости табака и кольцевой пятнистости малины, у которых выявлено три типа частиц для первого и два типа частиц для второго патогена. У вируса.кольцевой пятнистости та­ бака первый тип частиц содержит одну молекулу РНК с молекулярной массой 2,2 - 10®, второй тип частиц —

две молекулы РНК

(молекулярная

масса

каждой

1,2 - 10®) и третий тип

частиц— одну

молекулу

РНК с

молекулярной массой 1,2-10®. Для вируса кольцевой пятнистости малины специфично присутствие в первом типе частиц одной молекулы РНК с молекулярной мас­ сой 2,4-10®, а во втором типе частиц — двух молекул РНК, каждая с молекулярной массой 1,4-10®.

Многокомпонентные вирусы могут также иметь одно­ родные по размерам частицы, содержащие одну молеку­ лу РНК, но различающиеся по ее молекулярной массе и запасу информации. К их числу следует отнести ви­ русы мозаики коровьего гороха, обыкновенной мозаики огурца (ВОМО), мозаики костра (ВМК), мозаики крап­ чатости бобов фасоли и др. Так, у ВОМО сходные по

размерам (30 нм) изометрические вирионы по содер­ жанию РНК делятся на 6 типов: РНК-1 (молекулярная

масса 1,07-106), РНҚ-2

(0,95-106) , РНК-3 (0,69-10®),

РНК-4 (0,25-106), РНК-5

(0,1 М О6), РНК-6 (0,01 -10®).

Из шести названных первые четыре типа преобладают. У ВМК выявлено 4 типа РНК с молекулярной массой 1,09-106; 0,99...1,07■ 106; 0,73...0,80-106 и 0,32...0,28• 106.

Вместе с тем описан ряд сферических, палочковид­ ных, бацилловидных вирусов, обладающих различными по размерам и содержанию РНК вирионами. Вирус погремковости табака, например, имеет частицы двух ти­ пов: длиной 180...200 и 43...110 нм с молекулярной мас­ сой от 2,3...2,5-106 до 0,7-10е для каждой группы соот­

ветственно. Наибольшее разнообразие нуклеопротеидных частиц наблюдается у вируса мозаики люцерны — от почти изометрической до бацилловидной или палоч­ ковидной с закругленными концами; ширина вирионов 19—20 нм, длина 26, 42, 52, 58 нм. Каждому типу час­ тиц присуща РНК с определенной молекулярной массой: 1-й тип— 1,31 ...1,27 • 106, 2-й тип— 1,06...1,0-10®, 3-й тип— 0,7...0,9-10®, 4-й тип — 0,34...0,33-10®.

О биологическом значении различных типов РНК у многокомпонентных вирусов будет сказано ниже при рассмотрении вопроса репродукции вирусов.

Последовательность оснований нуклеиновой кисло­ ты определяет последовательность аминокислот и соот­ ветственно свойства вирусспецифических белков. Нук­ леиновая кислота каждого вируса имеет характерную для нее последовательность и соотношение нуклеотидов.

Белки, образующие капсиды фитовирусов, по ами­

нокислотному составу и соотношению аминокислот не отличаются от белков бактерий, растений и животных. В белках вирусов, например, цистеин, метионин, трипто­ фан, гистидин и тирозин также содержатся в малых ко­ личествах (у отдельных вирусов некоторые из назван­ ных аминокислот отсутствуют вообще, например гисти­ дин и метионин у ВТМ). В то же время для вирусов растений характерно повышенное содержание серина и треонина.

Белок оболочки состоит из отдельных одинаковых белковых субъединиц, молекулярная масса которых у различных вирусов колеблется от 10 до 80 тыс. Размер белковых молекул фитовирусов находится в диапазоне от 150 до 600 и более аминокислотных остатков. У не­

которых вирусов и их штаммов полностью (например, у ВТМ) пли частично (у возбудителя желтой мозаики турнепса) определена последовательность аминокислот.

Антигенные свойства вирусов. Антигенами называ­

ются чужеродные вещества, способные при введении в кровь животного вызвать появление антител и всту­

пить с ними в специфическую реакцию.

Антитела имеют белковую природу (выявляются в глобулиновой фракции сывороточных белков) и пред­ ставлены двумя типами: у-глобулинами с молекулярной массой 1,5-105 и константой 6,5 S и микроглобулинами

с молекулярной массой 8-105. Свойство антигена инду­ цировать в организме животного антитела, специфи­ чески взаимодействующие с данным антигеном, назы­ вается иммуногенностью, а способность антигена свя­

зываться

с

образующимися антителами — антиген-

ностью.

*

 

 

 

Активными антигенами являются белки. У фитовиру­

сов антигенная активность

определяется

в первую оче­

редь белком,

находящимся

в наружной

части белковой

оболочки вириона.

Явление антигенности сохраняется и при удалении сыворотки крови из организма животного и использу­ ется при постановке реакций in vitro. Такая сыворотка называется диагностической или антисывороткой к оп­ ределенному виду вируса. Антигенные свойства виру­ сов лежат в основе так называемого серологического (serum — по латыни сыворотка) метода диагностики, о котором более подробно сказано в разделе «Методы диагнрстики фитопатогенных вирусов».

Репродукция фитопатогенных вирусов. Развитие мо­ лекулярной биологии во многом определило возмож­ ность познания механизмов репродукции вирусов. В первую очередь это относится к бактериофагам и ви­ русам животных. Что касается фитопатогенных виру­ сов, то исследования во многом были ограничены от­ сутствием экспериментальных моделей, позволяющих иметь системы одновременно инфицируемых клеток рас­ тений, а также клеток переносчиков. Разработанные в последние годы способы культивированця вирусов рас­ тений в протопластах, каллусных клетках, выращивае­ мых in vitro, в изолированных клетках листьев, и пере­ носчиках, а также методы трансляции РНК в бесклеточной белоксинтезирующей системе (из зародышей

пшеницы и других тканей) несомненно открывают перс­ пективы для дальнейшего познания цикла репродукции фитовирусов.

Отличительная особенность размножения вирусов со­ стоит в том, что после попадания в клетку хозяина или переносчика они распадаются на макромолекулы с ос­ вобождением нуклеиновой кислоты — носителя генетиче­ ской информации. Затем вследствие трансляции вирус­ ного генома, или информационной РНК (и-РНК), син­

тезируемой на нем как на Матрице и поэтому называемой матричной (м-РНК), происходит репликация нук­

леиновой кислоты вируса и образование вирусспецифических белков. Под репликацией принято понимать

процесс самовоспроизведения (самокопирования) нук­ леиновых кислот, генов и хромосом, в основе которого лежит ферментативный синтез ДНК или РНК, осущест­ вляемый по матричному принципу. Поэтому, говоря о синтезе вирусной нуклеиновой кислоты, следует при­ держиваться этого термина, отражающего принцип об­ разования вирусной нуклеиновой кислоты.

Из вновь синтезированных нуклеиновой кислоты и вирусных белков происходит «самосборка» новых вирус­ ных частиц.

Изучение динамики инфекционного процесса вирусов

в растениях показывает наличие латентного (скрытого) периода или эклипс-периода, который предшествует по­

явлению вновь синтезированных вирусных частиц. Про­ должительность латентного периода зависит от вида вируса, а также от концентрации инфекционного мате­ риала, используемого для заражения, и температуры, при которой выращиваются растения. Например, для ВТМ этот период может составлять 15 ч. В эклипс-пе- риоде инфекционность отсутствует, но по прошествии этого периода вирионы распространяются от первона­ чально зараженных клеток к другим и репродуцируют­ ся в них. Заметное нарастание инфекционности вирусов наблюдается в среднем в течение двух-трех недель, а затем их концентрация или остается на том же уровне (например, у ВТМ), или снижается (в случае Y-вируса картофеля, вирусов огуречной мозаики, мозаики люцер­ ны в табаке и др.).

Р а н н и е с т а д и и и н ф е к ц и и . Проникновение фитовирусов, не имеющих, как правило, собственной ферментной системы, происходит через механические

повреждения или поранения, нанесенные переносчиком. После попадания вируса в клетку начинается процесс освобождения нуклеиновой кислоты от капсидного бел­ ка. Этот процесс может в какой-то мере определять круг восприимчивых растений-хозяев. Если in vitro лолучить частицы, имеющие инфекционную РНК вируса мозаики костра и белок ВТМ, то они не способны за­ разить растения ячменя, высоковосприимчивого к вирионам, состоящим из белка и РНК вируса мозаики ко­ стра, или одной РНК этого вируса. Показано также, что пшеница могла быть успешно инфицирована ВТМ, не свойственным для этого вида растения патогеном, в сме­ шанной инфекции с вирусом штриховатой мозаики яч­ меня, где, очевидно, имело место «одевание» РНК ВТМ

белком вируса

штриховатой мозаики ячменя.

. Информация

об освобождении нуклеиновой кисло­

ты от белка и примерная длительность этого периода были установлены в опытах по заражению фасоли ви­ русом некроза табака и его инфекционной РНК. В слу­ чае инокуляции-одной РНК вирус обнаруживался .на 2—4 ч раньше; при этом устойчивость к ультрафиоле­

товому облучению

начинала

немедленно

нарастать, в

то время как при

заражении

интактным

вирусом та­

кая устойчивость появлялась лишь через 3 ч. Подоб­ ные данные были получены и для ВТМ.

С и н т е з в и р у с н о й РНК. По способам трансля­ ции генетической информации вирусы растений можно разбить на две группы: 1) вирионные, РНК которых со­

держат прямую информацию для синтеза структурного

белка, т. е. используются в качестве

матричных

РНК,

и 2) содержащие в вирионе особый

фермент — вирус-

специфическую РНК-транскриптазу, с

помощью

кото­

рой на геномной (исходной вирусной) РНК синтезиру­ ется комплементарная ей молекула минус-цепи (м-РНК)- К первой группе принадлежат ВТМ, вирус сателлита некроза табака и один из компонентов ви­ руса мозаики люцерны, к представителям второй груп­ пы относятся двухцепочечные РНК-содержащие вирусы раневых опухолей клевера и карликовости риса, а так­ же рабдовирусы (мозаики гомфрены, некротического пожелтения салата латука и др.).

У вирусов с разделенным геномом, о которых речь шла выше, установлено комплементационное взаимодей­ ствие между компонентами. Причем у одной части этих

вирусов (например, вируса погремковости табака) один из компонентов РНК (в данном случае содержащийся в коротких частицах вируса погремковости табака) спо­ собен инфицировать хозяина. У другой части вирусов для инфекционного процесса необходимо присутствие всех компонентов генома. Этих компонентов может быть два (У Nepo- w Сошо-вирусов) или три, что типично для вирусов мозаики люцерны, мозаики костра, обык­ новенной мозаики огурца.

Детали различий между группами не установлены, но четко показано, что у вируса погремковости табака больший компонент генома содержит информацию для синтеза в клетках функциональной РНК-репликазы ви­ руса, в то время как ни один фрагмент генома других вирусов не обеспечивает такого синтеза.

С и н т е з в и р у с н о г о б е л к а . Структурный бе­ лок таких вирусов, как ВТМ и вирус желтой мозаики турнепса, синтезируется главным образом в цитоплазме на рибосомах с седиментацией 80 S.

На ранних стадиях развития инфекции синтезиру­ ется белок-репликаза, необходимый для репликации ви­ русной РНК.

‘ Л о к а л и з а ц и я м е с т р е п л и к а ц и и и с б о р ­ ки в и р у с о в . Место репликации РНК вирусов может изменяться в зависимости от вида вируса. Установлено (методами поглощения ультрафиолетовыми лучами и фазово-контрастной микроскопии), что репликация РНК ВТМ связана с ядром и, в частности, с ядрышками. У возбудителей бронзовости томатов, крапчатости кон­ ских бобов и кольцевой пятнистости томата синтез РНК, вероятно, происходит в цитоплазме. Цитоплазматиче­ ские включения, очевидно, являются местом репликации двухцепочечнои РНК вируса мозаики коровьего гороха. Не исключено также, что в синтезе РНК вируса погрем­ ковости табака принимают участие митохондрии. До­ статочно аргументирована и роль хлоропластов как места репликации РНК вируса желтой мозаики тур­ непса.

Относительно сборки вирусов in vivo сведений прак­ тически нет. Сборка простоустроенных вирусов (типа ВТМ), по-видимому, одинакова in vivo и in vitro. Час­ тицы ВТМ обычно накапливаются только в цитоплазме, однако это не исключает сборку вируса и в других участках клетки. У сложноустроенных вирусов разные

стадии репликации протекают в различных местах клет­ ки. Так, например, сборка вирионов вируса шерохова­ той карликовости кукурузы начинается в электронно­ плотных аморфных цитоплазматических включениях, а затем переходит в цитоплазму. Липидсодержащие обо­ лочки образуются при прохождении нуклеокапсида че­ рез мембрану хозяина.

Устойчивость вирусов к физическим и химическим воздействиям. Изучение воздействия различных физи­ ческих и химических факторов имеет большое практиче­ ское значение, в частности для идентификации вирусов, исследования химического состава и структуры вирио­ нов, выявления соединений, инактивирующих вирусы, с целью их дальнейшего практического использования (для дезинфекции семян, орудий, тары, профилактиче­ ских и терапевтических противовирусных обработок рас­ тений) .

Т е м п е р а т у р а . Вирусы обладают различной ус­ тойчивостью по отношению к действию повышенных температур. Термостойкость вирусов является одним из главных показателей при их идентификации. Для этой цели проводится определение точки тепловой инактива­ ции (ТТИ), т. е. температуры, при которой вирус пол­

ностью инактивируется после десятиминутного нагрева­ ния инфекционного сока. У большинства фитовирусов ТТИ находится в пределах 50...60°С. В то же время име­ ются вирусы крайне нестойкие, лабильные (вирус бронзовости томата, инактивирующийся при 43°С), и, наобо­ рот, более термостойкие (например, ВТМ, инактивация которого происходит при температуре 92...95°С, а у не­ которых штаммов при 98°С). Помимо ВТМ, к группе

термостойких относятся

вирусы мозаики костра (ТТИ

до 92°С); некроза табака

(ТТИ 80°С) и др. У некоторых

вирусов (ВТМ, Х-вирус картофеля) тепловая инактива­ ция, очевидно, связана с денатурацией белка.

В качестве показателя при идентификации вирусов используется также длительность сохранения инфекционности в соке при комнатной температуре. Устойчи­ вость при выстаивании сока колеблется в широких пре­ делах. ВТМ сохраняет инфекционность в течение ряда лет, в то время как вирус бронзовости томата в отжа­ том соке полностью инактивируется в течение несколь­ ких часов.

Замораживание пораженных вирусами листьев или отжатого из них сока не оказывает значительного влия­ ния на инфекционность большинства вирусов и широ­ ко используется при их очистке.

У л ь т р а ф и о л е т о в ы й свет . При облучении уль­ трафиолетовыми лучами вирусы растений быстро инак­ тивируются, сохраняя при этом физические, химические и антигенные свойства вирионов. Устойчивость к инак­ тивации возрастает по мере увеличения разрыва между моментом заражения и временем воздействия лучами. Некоторые вирусы способны восстанавливать инфек­ ционность, утраченную после обработки ультрафиолето­ выми лучами, при облучении больных растений види­ мым светом. Это явление носит название фотореактива­ ции. Если ввести в восприимчивое растение инактивиро­

ванный вирус, то фотореактивация может наступить лишь по прошествии определенного времени. К примеру, для реактивации Х-вируса картофеля и ряда других вирусов требуется около 30 мин. При этом установлено, что большим эффектом реактивации обладают волны короче 450 нм. При облучении ими реактивация насту­ пает в течение 10...15 мин и сохраняется около 1 ч. На­ ряду с этим экспериментально показано отсутствие

фотореактивации

у

ВТМ.

Х и м и ч е с к и

е

с о е д и н е н и я . В процессе иссле­

дований выявлен ряд химических веществ, необратимо инактивирующих вирусы. К ним, в частности, относятся реагенты, денатурирующие белок или инактивирующие РНК, а также оказывающие ингибирующее действие на оба вышеуказанных компонента вирусной частицы. Сре­ ди них органические растворители, азотистая кислота, формальдегид, гидроксиламин, некоторые ферменты и органические кислоты, мочевина, соли тяжёлых метал­ лов, таннины и др.

Мочевина, например, вызывает денатурацию белка, при этом инактивация ВТМ и Х-вируса картофеля про­ исходит в результате отделения белка от РНК. Воздей­ ствие гидроксиламина приводит к инактивации РНК ВТМ, а также к возникновению мутаций. Аналогичное действие на РНК оказывают и алкилирующие агенты (окиси этилена и пропилена, диметилсульфат и др.). Органические растворители либо денатурируют вирус­ ный белок, либо разрушают липидсодержащие вирусы (вирус некротического пожелтения салата латука). Азо­