- •Введение
- •Требования к усвоению дисциплины
- •1. Методические указания по подготовке к лабораторно--практическим занятиям с применением инновационных методов обучения
- •Раздел 1. Научные основы микробиологии
- •Тема 1. Предмет, методы и цели микробиологии.
- •Устройство биологического микроскопа.
- •Правила работы с биологическим микроскопом.
- •Приготовление препаратов микроорганизмов
- •Окраска бактерий по методу Грама.
- •Условия выращивания микроорганизмов.
- •Питательные среды.
- •Температура культивирования.
- •Аэрация.
- •Стерилизация.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Вопросы по собеседованию и самоконтролю (уо-1)
- •Тестовые задания к теме 1.
- •Тема 2. Морфология и систематика микроорганизмов
- •Лабораторная работа № 2: «Морфология микроорганизмов»
- •2.1 Морфология дрожжей
- •2.2 Морфология бактерий.
- •2.3 Морфология грибов Плесневые грибы
- •Идентификация грибов.
- •Вопросы по собеседованию и самоконтролю (уо-1)
- •Задания для самостоятельной работы
- •1.Для лучшего представления отличий прокариотов от эукариотов заполните следующую таблицу:
- •Тема 3. Физиология микроорганизмов
- •3.1 Определение состава микрофлоры исследуемого объекта путем выделения чистых культур микроорганизмов
- •Приступая к работе, следует протереть стол влажной тканью, а рукава одежды засучить или подтянуть.
- •Контрольные вопросы:
- •3.2. Определение состава микрофлоры исследуемого объекта путем получения элективных культур микроорганизмов.
- •Получение элективных культур гнилостных бактерий.
- •Получение элективной культуры картофельной палочки.
- •Получение элективной культуры жирорасщепляющих бактерий
- •Получение элективной культуры уксуснокислых бактерий
- •Получение элективной культуры маслянокислых бактерий.
- •3.3. Выделение элективной культуры группы целлюлозоразлагающих бактерий.
- •Задание 1. Анаэробное разложение клетчатки.
- •Задание 2. Аэробное разложение клетчатки.
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Задания для самостоятельной работы
- •Дискуссионные вопросы
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тестовые задания к теме 3.
- •Тема 4. Влияние условий внешней среды на микроорганизмы
- •4.1 Определение влияния концентрации Na Cl в среде на бактерии.
- •4.2 Определение влияния рН –среды на развитие бактерии.
- •4.3 Определение влияния температуры на развитие плесневого гриба.
- •Занятие второе.
- •4.5 Определение влияния фитонцидов лука на плесневые грибы.
- •4.6 Влияние сорбиновой кислоты (антисептика) на дрожжи.
- •4.7 Влияние антибиотиков на развитие бактерий
- •4.8 Определение влияния ультрафиолетового облучения на бактерии
- •Задания для самостоятельной работы
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Дискуссионные вопросы
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тестовые задания к теме 4
- •Тема 5. Важнейшие биохимические процессы, вызываемые микроорганизмами, их значение в природе и практическое использование.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Дискуссионные вопросы
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Тестовые задания к теме 5
- •Литература (основная и дополнительная)
- •4. Современная пищевая микробиология. Джеймс м./ Джей, Мартин Дж. Лёсснер, Дэвид а.Гольден ;) Москва, 2011. Сер. Лучший зарубежный учебник.887с
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Контрольная работа №1 по темам 1-5
- •Тема 6. Пищевые заболевания. Санитарно-показательные микроорганизмы.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Основные разделы темы
- •Дискуссионные вопросы
- •Тестовые задания к теме 6
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тема 7. Микробиология объектов окружающей среды
- •6.2 Санитарно-микробиологический контроль инвентаря посуды и рук персонала торговых предприятий.
- •Задание 1. Санитарно-микробиологическое исследование поверхности стола.
- •Задание 2. Санитарно-микробиологическое исследование смыва с рук персонала
- •Санитарно-микробиологическое исследование питьевой воды
- •5.Микрофлора тела человека
- •Тема 8 Микробиология продовольственных и непродовольственных товаров.
- •(Чашечный метод)
- •6.2 Определение методом титра обсемененности исследуемого объекта бактериями группы кишечной палочки
- •6.3 Микробиологическое исследование муки на наличие картофельной палочки (чашечный метод).
- •6.4 Бактериоскопические методы определения санитарного состояния пищевых продуктов (кисломолочные продукты, бифидопродукты, сыр, мясо, рыба, томатопродукты, плоды и овощи).
- •Задание 2. Бактериоскопическое исследование качества бифидопродуктов
- •Задание 3. Бактериоскопическое исследование сыров
- •Задание 5. Бактериоскопическое исследование рыбы
- •План занятия.
- •Задание 6. Бактериоскопический метод определения доброкачественности готовых блюд
- •Задание 7. Микробиологический анализ томатопродуктов
- •1.Заполнить камеры Горяева предложенными томатопродуктами и отметить количество положительных и отрицательных полей.
- •6.5 Микробиологический контроль косметических изделий
- •1. Какие основные источники обсеменения свежей рыбы?
- •Задания для самостоятельной работы Ситуационные задачи тс-3
- •Тема 9. Санитарно-гигиенический контроль. Санитария и гигиена в торговле.
- •Законодательное обеспечение качества и безопасности пищевой продукции
- •Нормативное обеспечение качества и безопасности
- •Литература
- •Задания для проведения тестирования по темам 1-9
- •Вариант №1
- •Примерный перечень вопросов для подготовки к экзамену для студентов 1 курса очной формы обучения (1 семестр)
- •1.Основная литература
- •4. Современная пищевая микробиология. Джеймс м. Джей, Мар- тин Дж. Лёсснер, Дэвид а.Гольден ; (пер. С англ.Е.А. Барановой) Москва, 2011. Сер. Лучший зарубежный учебник.887с
- •2. Дополнительная литература
- •3. Базы данных, поисково-справочные и информационные системы
- •4. Федеральные законы и нормативные документы
- •По балльной шкале оценок
- •На этапе проведения экзамена
- •Карта форм текущего контроля
Правила работы с биологическим микроскопом.
Микроскоп переносят держа двумя руками за ручку и ножку штатива, при этом нельзя наклонять, т.к. может выпасть окуляр.
На рабочем столе микроскоп должен стоять на расстоянии 5 см от края стола. Перед работой его протирают от пыли мягкой сухой тканью.
Настройка освещения производится с объективом 8. После зрения микроскопа должно иметь форму круга, равномерно и хорошо освещенного.
Исследуемый препарат закрепляют на предметном столике.
Препарат рассматривают с объективом 8, а затем переходят к нужному увеличению. При работе с объективом 8 расстояние от объектива до препарата около 9 мм, с объективом 40 – 0,6 мм, с объективом 90 – 0,15 мм. Тубус опускают макровинтом до соответствующих рабочих расстояний, пока не появится изображение изучаемого объекта. После с помощью микрометрического винта фокусируют объектив до четкого изображения. При работе с иммерсионным объективом на препарат наносят иммерсионное масло и, осторожно опуская кончик объектива в каплю масла, находят изображение объекта и микрометрическим винтом устанавливают четное изображение.
При работе с разными объективами требуется различная освещенность, что регулируется соответствующим положением конденсатора: объектив 90-конденсор поднят до предела, объектив 40 – конденсор немножко опущен и объектив 8 конденсор опущен еще ниже.
Передвигая предметный столик с препаратом боковыми винтами, просматривают весь мазок.
Во время микроскопирования необходимо держать оба глаза открытыми и пользоваться ими попеременно.
После окончания работы снимают препарат с предметного столика, ставят объектив 8, опускают конденсор, вытирают иммерсионное масло с линзы объектива 90 и убирают микроскоп.
Приготовление препаратов микроорганизмов
Для микроскопирования препараты готовят на предметном стекле, нередко требуется и покровное стекло. Препараты бывают следующих типов: «раздавленная капля», «висячая капля» и окрашенные препараты.
Препарат «раздавленная капля» готовится для рассмотрения микроорганизмов в живом состоянии. На середину предметного стекла наносят каплю воды или физраствора и в нее вносят бактериологической иглой немного исследуемого микроорганизма и перемешивают. Каплю накрывают покровным стеклом, и излишек жидкости удаляют фильтровальной бумажкой. Бактерии и дрожжи микроскопируют с объективом 40, иногда 90, а грибы – с объективом 8 и 40.
Препарат «висячая капля» применяется при изучении подвижности микроорганизмов и прорастания спор. Предметное стекло для «висячей капли» имеет углубление посередине. На покровное стекло наносится очень маленькая капля с исследуемым микроорганизмом и переворачивается на предметное стекло так, чтобы капля свисала в углубление, не касаясь краев и дна. Края покровного стекла для герметичности смазывают вазелином.
Окрашенные препараты делятся на простые и сложные по способу окраски.
Препараты с простым способом окраски применяется для ознакомления с морфологией бактерий. Методика состоит из приготовления мазка, его высушивания, фиксации и окраски.
Для приготовления мазка на середину предметного стекла наносят каплю воды, вносят в нее микроорганизмы и после перемешивания размазывают по поверхности предметного стекла на площади 2-3 см2.
Высушивают мазок на воздухе или над спиртовкой, не давая нагреваться стеклу.
Фиксируют мазок проводя 3-4 раза над пламенем горелки или фиксаторами. Цель фиксации – убить клетки бактерий, т.к. мертвые прокрашиваются лучше живых и зафиксировать их.
На фиксированный мазок наносят 1-2 капли карболового фуксина Циля. Фуксин готовят смешиванием 190 см3 5% раствора фенола и 10 см3 насыщенного спиртового раствора фуксина. Выдерживают мазок 20-40 секунд в краске, смывают слабой струей воды и высушивают. На препарат наносят каплю иммерсионного масла и микроскопируют с объективом 90.
Сложные способы окраски применяют для выявления деталей строения микроорганизмов и их дифференциации.
К сложным способам окраски относится окраска бактерий по методу Грама. Одни виды окрашиваются по Граму и называются грамположительными; другие не окрашиваются и называются грамотрицательными.
