- •Введение
- •Требования к усвоению дисциплины
- •1. Методические указания по подготовке к лабораторно--практическим занятиям с применением инновационных методов обучения
- •Раздел 1. Научные основы микробиологии
- •Тема 1. Предмет, методы и цели микробиологии.
- •Устройство биологического микроскопа.
- •Правила работы с биологическим микроскопом.
- •Приготовление препаратов микроорганизмов
- •Окраска бактерий по методу Грама.
- •Условия выращивания микроорганизмов.
- •Питательные среды.
- •Температура культивирования.
- •Аэрация.
- •Стерилизация.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Вопросы по собеседованию и самоконтролю (уо-1)
- •Тестовые задания к теме 1.
- •Тема 2. Морфология и систематика микроорганизмов
- •Лабораторная работа № 2: «Морфология микроорганизмов»
- •2.1 Морфология дрожжей
- •2.2 Морфология бактерий.
- •2.3 Морфология грибов Плесневые грибы
- •Идентификация грибов.
- •Вопросы по собеседованию и самоконтролю (уо-1)
- •Задания для самостоятельной работы
- •1.Для лучшего представления отличий прокариотов от эукариотов заполните следующую таблицу:
- •Тема 3. Физиология микроорганизмов
- •3.1 Определение состава микрофлоры исследуемого объекта путем выделения чистых культур микроорганизмов
- •Приступая к работе, следует протереть стол влажной тканью, а рукава одежды засучить или подтянуть.
- •Контрольные вопросы:
- •3.2. Определение состава микрофлоры исследуемого объекта путем получения элективных культур микроорганизмов.
- •Получение элективных культур гнилостных бактерий.
- •Получение элективной культуры картофельной палочки.
- •Получение элективной культуры жирорасщепляющих бактерий
- •Получение элективной культуры уксуснокислых бактерий
- •Получение элективной культуры маслянокислых бактерий.
- •3.3. Выделение элективной культуры группы целлюлозоразлагающих бактерий.
- •Задание 1. Анаэробное разложение клетчатки.
- •Задание 2. Аэробное разложение клетчатки.
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Задания для самостоятельной работы
- •Дискуссионные вопросы
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тестовые задания к теме 3.
- •Тема 4. Влияние условий внешней среды на микроорганизмы
- •4.1 Определение влияния концентрации Na Cl в среде на бактерии.
- •4.2 Определение влияния рН –среды на развитие бактерии.
- •4.3 Определение влияния температуры на развитие плесневого гриба.
- •Занятие второе.
- •4.5 Определение влияния фитонцидов лука на плесневые грибы.
- •4.6 Влияние сорбиновой кислоты (антисептика) на дрожжи.
- •4.7 Влияние антибиотиков на развитие бактерий
- •4.8 Определение влияния ультрафиолетового облучения на бактерии
- •Задания для самостоятельной работы
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Дискуссионные вопросы
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тестовые задания к теме 4
- •Тема 5. Важнейшие биохимические процессы, вызываемые микроорганизмами, их значение в природе и практическое использование.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Дискуссионные вопросы
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Тестовые задания к теме 5
- •Литература (основная и дополнительная)
- •4. Современная пищевая микробиология. Джеймс м./ Джей, Мартин Дж. Лёсснер, Дэвид а.Гольден ;) Москва, 2011. Сер. Лучший зарубежный учебник.887с
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Контрольная работа №1 по темам 1-5
- •Тема 6. Пищевые заболевания. Санитарно-показательные микроорганизмы.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Основные разделы темы
- •Дискуссионные вопросы
- •Тестовые задания к теме 6
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тема 7. Микробиология объектов окружающей среды
- •6.2 Санитарно-микробиологический контроль инвентаря посуды и рук персонала торговых предприятий.
- •Задание 1. Санитарно-микробиологическое исследование поверхности стола.
- •Задание 2. Санитарно-микробиологическое исследование смыва с рук персонала
- •Санитарно-микробиологическое исследование питьевой воды
- •5.Микрофлора тела человека
- •Тема 8 Микробиология продовольственных и непродовольственных товаров.
- •(Чашечный метод)
- •6.2 Определение методом титра обсемененности исследуемого объекта бактериями группы кишечной палочки
- •6.3 Микробиологическое исследование муки на наличие картофельной палочки (чашечный метод).
- •6.4 Бактериоскопические методы определения санитарного состояния пищевых продуктов (кисломолочные продукты, бифидопродукты, сыр, мясо, рыба, томатопродукты, плоды и овощи).
- •Задание 2. Бактериоскопическое исследование качества бифидопродуктов
- •Задание 3. Бактериоскопическое исследование сыров
- •Задание 5. Бактериоскопическое исследование рыбы
- •План занятия.
- •Задание 6. Бактериоскопический метод определения доброкачественности готовых блюд
- •Задание 7. Микробиологический анализ томатопродуктов
- •1.Заполнить камеры Горяева предложенными томатопродуктами и отметить количество положительных и отрицательных полей.
- •6.5 Микробиологический контроль косметических изделий
- •1. Какие основные источники обсеменения свежей рыбы?
- •Задания для самостоятельной работы Ситуационные задачи тс-3
- •Тема 9. Санитарно-гигиенический контроль. Санитария и гигиена в торговле.
- •Законодательное обеспечение качества и безопасности пищевой продукции
- •Нормативное обеспечение качества и безопасности
- •Литература
- •Задания для проведения тестирования по темам 1-9
- •Вариант №1
- •Примерный перечень вопросов для подготовки к экзамену для студентов 1 курса очной формы обучения (1 семестр)
- •1.Основная литература
- •4. Современная пищевая микробиология. Джеймс м. Джей, Мар- тин Дж. Лёсснер, Дэвид а.Гольден ; (пер. С англ.Е.А. Барановой) Москва, 2011. Сер. Лучший зарубежный учебник.887с
- •2. Дополнительная литература
- •3. Базы данных, поисково-справочные и информационные системы
- •4. Федеральные законы и нормативные документы
- •По балльной шкале оценок
- •На этапе проведения экзамена
- •Карта форм текущего контроля
4.2 Определение влияния рН –среды на развитие бактерии.
Каждый м.о. может развиваться в определенном интервале рН- среды. При рН ниже минимального и выше максимального жизнедеятельность м.о. прекращается и они отмирают, при оптимальном рН – происходит интенсивный рост. Для большинства бактерий оптимальной является нейтральная среда, для плесеней и дрожжей – слабокислая.
План занятия.
Ознакомиться с влиянием рН на м.о.
Поставить опыт по выращиванию м.о. на питательных средах с различными значениями рН.
Произвести оценку интенсивности роста м.о.
Установить вид изучаемых бактерий по морфологически признакам.
Методические указания:
Занятие первое:
Приготовить пробирки с МПБ со следующими значениями рН: 3, 5, 7, 9. Произвести посев суспензии бактерий в пробирки бактериологической петлей, стерилизуя ее перед каждым посевом.
Пробирки поставить на 48 часов в стакане в термостат при 25оС, предварительно поместив этикетку с фамилиями студентов и номером группы.
Занятие второе:
Оценить рост бактерий в пробирках по степени мутности, предварительно перемешав содержимое пробирок, пользуясь условными обозначениями: - отсутствие роста, + слабый рост, ++ умеренный рост, +++ обильный рост.
Из выросших бактерий приготовить и промикроскопировать препараты, окрашенные «простым» способом.
Результаты исследований записать по форме:
Название бактерий |
Интенсивность развития бактерий. |
|||
Значение рН среды |
||||
3 |
5 |
7 |
9 |
|
|
|
|
|
|
4.3 Определение влияния температуры на развитие плесневого гриба.
Каждый вид м.о. имеет свой определенный температурный предел для роста и размножения. При температуре меньше минимальной развитие прекращается, но м.о. могут сохраняться живыми, при температурах выше максимальной - рост м.о. прекращается и они гибнут. Температура, при которой происходит наиболее интенсивное развитие м.о. называется оптимальной. Термоустойчивость м.о. различна. Бесспоровые бактерии, вегетативные клетки споровых бактерий, дрожжей и плесеней при температуре 50-70оС погибают в течение 15-30 мин, а при 80-100оС – в течение нескольких минут или секунд. Споры большинства дрожжей и плесеней погибают при 65-80оС. Споры некоторых бактерий выдерживают нагревание при 100оС несколько часов и погибают быстро лишь при 120-130оС.
План занятия.
Ознакомиться с влиянием температуры на м.о.
Поставить опыт по выращиванию плесневого гриба в разных температурных условиях: при 5, 25 и 40оС.
Провести оценку роста плесневого гриба и определить родовое название изучаемого гриба.
Методические указания:
Занятие первое:
Приготовить чашки Петри с сусло-агаром. Наклеить на чашки этикетки с указанием температуры, фамилии студента.
Посеять споры плесени в центр пластинки сусла-агара (СА) маленькой бактериологической петлей слегка касаясь ребром петли.
Засеянные чашки перевернуть кверху дном и поставить выращивать посевы при температурах 5, 25 и 40оС.
Занятие второе:
Оценку влияния температуры на рост плесневого гриба производят по величине диаметра колоний, выросших на СА или по наличию спороношения и его степени (по величине окрашенной зоны колоний и интенсивности окраски). Диаметр измеряют миллиметровой бумагой со стороны дна чашки. Для оценки роста пользуются условными обозначениями: - отсутствие спороношения, + слабое спороношение, ++ умеренное спороношение, +++ обильное спороношение.
Приготовить микроскопический препарат «раздавленная капля». Мицелий брать из участка колоний со спороношением. Обнаружить и зарисовать орган размножения гриба и определить его родовое название по «ключу».
Результаты внести в таблицу.
Родовое название гриба |
Показатель интенсивности роста |
Температура выращивания, оС |
||
|
Диаметр колони, мм спороношение |
5 |
25 |
40 |
|
|
|
||
4.4 Определение термоустойчивости бесспоровых и споровых бактерий
Задание выполняется на двух занятиях двумя студентами совместно. Один из них проводит опыт по выявлению термоустойчивости бактерий к 60° С, другой - к 80° С. В дальнейшем результаты опытов обобщаются и сравниваются.
План занятия.
Ознакомиться с действием высоких температур на микроорганизмы.
Поставить опыт по выявлению действия высоких температур (60 и 80°С) на бесспоровые и споровые бактерии.
Выявить и сравнить эффект действия различных высоких температур на бесспоровые и споровые бактерии.
Методические указания
Занятие первое.
1. Установить на штативах две водяные бани с термометрами. Нагреть их до температуры 60 и 80°С и поддерживать эту температуру в течение проведения всего опыта.
2. Расплавить мясо-пептонный агар (4 пробирки) и разлить в 4 чашки Петри, распределяя его вращением чашек по всему их дну. Выдержать чашки в покое на столе до застудневания среды. Пронумеровать чашки: две за № I — они предназначаются для посева бесспоровых палочковидных бактерий; две за № 2—одна для посева споровых бактерий в опыте с температурой 80° С, другая для посева микрококков в опыте с 60° С. На боковую стенку чашки наклеить этикетки с указанием фамилии студента, номера группы и испытуемой температуры. Дно чашек расчертить восковым карандашом на сектора. Один сектор каждой чашки предназначается для посева суспензии бактерий перед ее нагревом (контроль), его надо обозначить цифрой 0, два других — для посева суспензий после их нагревания в течение 10 и 30 мин, поэтому один из секторов обозначить цифрой 10, другой — 30.
3. Заготовить для опыта в четырех пробирках с 9 см стерильного физиологического раствора «рабочие» суспензии. Надеть на пробирки бумажные ярлыки с номерами 1, 2, 3 и 4. В две (№ 1 и 2) пробирки внести стерильной пипеткой по 0,1 см суспензии бесспоровых палочковидных бактерий, в третью (№ 3) пробирку внести другой пипеткой 0,1 см суспензии споровых бактерий, в четвертую (№ 4) пробирку — новой пипеткой 0,1 см суспензии микрококков. Содержимое пробирок с «рабочими» суспензиями тщательно перемешать.
4. Для опыта с температурой 80° С посеять в чашку № 1 на МПА в сектор О (в его середину) «рабочую» суспензию № 1, а в чашку № 2 (в сектор О) - т«рабочую» суспензию № 3.
Для опыта с температурой 60°С посеять на МПА секторов О чашки № 1 суспензию № 2, а чашки № 2 - суспензию № 4.
Посев производить стерильной бактериологической петлей путем легкого прикосновения ее ребра к среде.
5. Поместить на 10 мин пробирки № 1 и 3 с «рабочими» суспензиями в водяную баню, нагретую до 80°С, а пробирки № 2 и 4 — в баню температурой 60°С. Уровень воды в бане должен быть несколько выше уровня суспензий в пробирках.
После нагревания в течение 10 мин сделать посев суспензий бактериологической петлей в секторы чашек, обозначенные цифрой 10.
6. Пробирки с суспензиями снова поместить в те же бани и выдерживать еще в течение 20 мин, а затем высеять суспензии в секторы МПА, обозначенные цифрой 30.
7. Поставить все чашки в термостат при температуре 25°С.
8. Последовательность проведения опыта записать.
