- •Введение
- •Требования к усвоению дисциплины
- •1. Методические указания по подготовке к лабораторно--практическим занятиям с применением инновационных методов обучения
- •Раздел 1. Научные основы микробиологии
- •Тема 1. Предмет, методы и цели микробиологии.
- •Устройство биологического микроскопа.
- •Правила работы с биологическим микроскопом.
- •Приготовление препаратов микроорганизмов
- •Окраска бактерий по методу Грама.
- •Условия выращивания микроорганизмов.
- •Питательные среды.
- •Температура культивирования.
- •Аэрация.
- •Стерилизация.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Вопросы по собеседованию и самоконтролю (уо-1)
- •Тестовые задания к теме 1.
- •Тема 2. Морфология и систематика микроорганизмов
- •Лабораторная работа № 2: «Морфология микроорганизмов»
- •2.1 Морфология дрожжей
- •2.2 Морфология бактерий.
- •2.3 Морфология грибов Плесневые грибы
- •Идентификация грибов.
- •Вопросы по собеседованию и самоконтролю (уо-1)
- •Задания для самостоятельной работы
- •1.Для лучшего представления отличий прокариотов от эукариотов заполните следующую таблицу:
- •Тема 3. Физиология микроорганизмов
- •3.1 Определение состава микрофлоры исследуемого объекта путем выделения чистых культур микроорганизмов
- •Приступая к работе, следует протереть стол влажной тканью, а рукава одежды засучить или подтянуть.
- •Контрольные вопросы:
- •3.2. Определение состава микрофлоры исследуемого объекта путем получения элективных культур микроорганизмов.
- •Получение элективных культур гнилостных бактерий.
- •Получение элективной культуры картофельной палочки.
- •Получение элективной культуры жирорасщепляющих бактерий
- •Получение элективной культуры уксуснокислых бактерий
- •Получение элективной культуры маслянокислых бактерий.
- •3.3. Выделение элективной культуры группы целлюлозоразлагающих бактерий.
- •Задание 1. Анаэробное разложение клетчатки.
- •Задание 2. Аэробное разложение клетчатки.
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Задания для самостоятельной работы
- •Дискуссионные вопросы
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тестовые задания к теме 3.
- •Тема 4. Влияние условий внешней среды на микроорганизмы
- •4.1 Определение влияния концентрации Na Cl в среде на бактерии.
- •4.2 Определение влияния рН –среды на развитие бактерии.
- •4.3 Определение влияния температуры на развитие плесневого гриба.
- •Занятие второе.
- •4.5 Определение влияния фитонцидов лука на плесневые грибы.
- •4.6 Влияние сорбиновой кислоты (антисептика) на дрожжи.
- •4.7 Влияние антибиотиков на развитие бактерий
- •4.8 Определение влияния ультрафиолетового облучения на бактерии
- •Задания для самостоятельной работы
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Дискуссионные вопросы
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тестовые задания к теме 4
- •Тема 5. Важнейшие биохимические процессы, вызываемые микроорганизмами, их значение в природе и практическое использование.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Дискуссионные вопросы
- •Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
- •Тестовые задания к теме 5
- •Литература (основная и дополнительная)
- •4. Современная пищевая микробиология. Джеймс м./ Джей, Мартин Дж. Лёсснер, Дэвид а.Гольден ;) Москва, 2011. Сер. Лучший зарубежный учебник.887с
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Контрольная работа №1 по темам 1-5
- •Тема 6. Пищевые заболевания. Санитарно-показательные микроорганизмы.
- •Задания для самостоятельной работы
- •Основные разделы темы
- •Дискуссионные вопросы
- •Тестовые задания к теме 6
- •Литература
- •1. Основная
- •2. Дополнительная
- •Тема 7. Микробиология объектов окружающей среды
- •6.2 Санитарно-микробиологический контроль инвентаря посуды и рук персонала торговых предприятий.
- •Задание 1. Санитарно-микробиологическое исследование поверхности стола.
- •Задание 2. Санитарно-микробиологическое исследование смыва с рук персонала
- •Санитарно-микробиологическое исследование питьевой воды
- •5.Микрофлора тела человека
- •Тема 8 Микробиология продовольственных и непродовольственных товаров.
- •(Чашечный метод)
- •6.2 Определение методом титра обсемененности исследуемого объекта бактериями группы кишечной палочки
- •6.3 Микробиологическое исследование муки на наличие картофельной палочки (чашечный метод).
- •6.4 Бактериоскопические методы определения санитарного состояния пищевых продуктов (кисломолочные продукты, бифидопродукты, сыр, мясо, рыба, томатопродукты, плоды и овощи).
- •Задание 2. Бактериоскопическое исследование качества бифидопродуктов
- •Задание 3. Бактериоскопическое исследование сыров
- •Задание 5. Бактериоскопическое исследование рыбы
- •План занятия.
- •Задание 6. Бактериоскопический метод определения доброкачественности готовых блюд
- •Задание 7. Микробиологический анализ томатопродуктов
- •1.Заполнить камеры Горяева предложенными томатопродуктами и отметить количество положительных и отрицательных полей.
- •6.5 Микробиологический контроль косметических изделий
- •1. Какие основные источники обсеменения свежей рыбы?
- •Задания для самостоятельной работы Ситуационные задачи тс-3
- •Тема 9. Санитарно-гигиенический контроль. Санитария и гигиена в торговле.
- •Законодательное обеспечение качества и безопасности пищевой продукции
- •Нормативное обеспечение качества и безопасности
- •Литература
- •Задания для проведения тестирования по темам 1-9
- •Вариант №1
- •Примерный перечень вопросов для подготовки к экзамену для студентов 1 курса очной формы обучения (1 семестр)
- •1.Основная литература
- •4. Современная пищевая микробиология. Джеймс м. Джей, Мар- тин Дж. Лёсснер, Дэвид а.Гольден ; (пер. С англ.Е.А. Барановой) Москва, 2011. Сер. Лучший зарубежный учебник.887с
- •2. Дополнительная литература
- •3. Базы данных, поисково-справочные и информационные системы
- •4. Федеральные законы и нормативные документы
- •По балльной шкале оценок
- •На этапе проведения экзамена
- •Карта форм текущего контроля
Задание 1. Анаэробное разложение клетчатки.
Методические указания.
Занятие первое.
Приготовить питательную среду следующего состава (%): KNH
HPO
- 0,2; CaCl
- 0,3; пептон – 0,1; MgSO
- 0,05; CaCO
-
0,5.В круглую плоскодонную колбу (150-20 мл) вносят 1-2 фильтрованной бумаги, нарезанной полосками, и заливают питательной средой доверху. В колбу вносят небольшое количество почвы и закрывают корковой пробкой с отверстием для выхода газа.
Колбу ставят в термостат при температуре 30-35°С на 2-3 недели. Фильтровальная бумага по мере сбраживания желтеет, и постепенно разрушаются бактериями.
Занятие второе.
Извлекают со дна колбы кусочек фильтровальной бумаги и размазывают на предметном стекле без добавления воды. Мазок сушат, фиксируют, красят фуксином и микроскопируют с иммерсионным объективом.
Записать в тетрадь результаты микроскопического изучения возбудителей брожения клетчатки, зарисовать длинные тонкие палочки с круглой спорой на конце – Клостридиум Омелянского.
Задание 2. Аэробное разложение клетчатки.
Методические указания.
Занятие первое.
Приготовление гелевых пластин. Раствор Na SiO (удельный вес 1,10) и соляную кислоту смешивают в соотношение 1:1 и разливают по 15-20 мл в чашки Петри. Через 12 ч. выпадает плотная студенистая масса (гель), состоящая из кремневой кислоты.
Промытые и прокипяченные гелевые пластины пропитывают 2-3 мл питательной среды следующего состава: на 200 мл дистиллированной воды добавляют в граммах KNO - 2,5; K HPO - 1,0; MgSO - 0,5; NaCl – 0,5; FeSO - 0,01; MnSO - 0,01.
Поверхность геля покрывают стерильным кружком фильтрованной бумаги раскладывают до 50 комочков почвы (диаметром 1 мм).
Чашки помещают во влажную камеру и ставят в термостат при температуре 28-30°С на 8-10 дней.
Занятие второе.
Отметить появление вокруг комочков почвы колоний в виде розовых, зеленых, желтых, буровато-желтых пятен.
Приготовить окрашенные препараты из выросших колоний и промикроскопировать их с иммерсионным объективом.
Найти в препаратах разные виды целлюлозоразрушающих бактерии: Цитофага – бактерии со сложным циклом развития, относящиеся к миксобактериям (молодые клетки слегка заостренные, колонии в виде желтых, розовых и коричневых пятен); Полиангиум и Сорангиум – молодые клетки палочковидные, при старении укорачиваются и образуют микроцисты, которые собраны по 12-14 клеток в цисты. Из них формируется плодовые тела. Их колонии образуют слизистый налет желтого, оранжевого или темно-коричневого цвета. Активно разлагают клетчатку и отдельные представители грибов, а также дрожжей.
Зарисовать в тетради результаты микроскопирования.
Вопросы по собеседованию (уо-1) и самоконтролю
Что называется чистой культурой микроорганизмов?
2. Каково назначение чистых культур микроорганизмов?
3. Как устанавливается чистота культуры в колонии?
4. Чем могут различаться колонии различных видов бактерий?
Какие морфологические признаки используются для определения вида бактерий?
Как выявить подвижность бактерий?
Зачем производят посевы бактерий на различные питательные среды?
Как установить тип дыхания бактерий?
Как обнаруживается амилаза у бактерий?
Какие культуральные признаки используются для установления названия бактерий?
Чем отличаются гомоферментативное и гетероферментативное брожения?
Что является элективной средой для получения молочнокислых бактерий?
Как выявляют накопление гнилостных микроорганизмов в белковой среде?
Какого цвета налет на вареном картофеле при развитие на нем картофельной палочки?
Какие ферменты выделяют липолитические микроорганизмы для расщепления жиров?
Как установить накопление уксуснокислых бактерий?
Какой тип дыхания у уксуснокислых бактерий?
Как обнаружить в опыте продукты жизнедеятельности маслянокислых бактерий?
Какую форму имеют маслянокислые бактерии?
Какой тип дыхания у маслянокислых бактерий?
Назовите бактерии, сбраживающие целлюлозу.
Назовите микроорганизмы, разлагающие целлюлозу в аэробных условиях.
