Файловый архив студентов. Файловый архив студентов.
1310 вузов, 5235 предметов.
/ Регистрация
FAQ Обратная связь Вопросы и предложения
Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз:
Национальный университет физического воспитания и спорта Украины
Предмет:
[НЕСОРТИРОВАННОЕ]
Файл:
Журнал Тренер on-line 2.docx
Скачиваний:
0
Добавлен:
01.07.2025
Размер:
15.44 Mб
Скачать
☆
►Содержание►

Половые различия в метаболизме мышечных белков и упражнения

К сожалению, мало что известно про влияние полового диморфизма на композицию тела, при этом мужчины имеют большую массу мышц, чем женщины. Хорошо известно анаболическое влияние тестостерона на мышцы (41, 58), и секреция тестостерона в пубертатном периоде, скорее всего, ответственна за увеличение массы мышц в раннем взрослом возрасте. Тестостерон также увеличивает СМП в покое как у молодых, так и у пожилых людей (23, 116), но это влияние не связано со срочными изменениями синтеза белка, а проявляется ген-зависимыми изменениями, через воздействие на андрогенные рецепторы ядра. Женские половые гормоны ингибируют СМП и рост мышц у крыс (115), но не выявлено измеримых различий между мужчинами и женщинами в базальном уровне фракционного белкового синтеза или ответе на внутривенное введение аминокислот при умеренном уровне инсулина (Smith G., Mittendorfer B., Atherton P. и Rennie M. J., неопубликованные данные). Также не выявлены различия СМП или РМП в исходном уровне или после упражнений между молодыми мужчинами и женщинами (44, 59, 75, 82).

Тем не менее, согласно нашим и другим сообщениям, у женщин после менопаузы исходный уровень СМП на ~20 – 30 % выше, чем у мужчин (56, 105), и незначительно реагирует на прием пищи (105), таким образом, различия в метаболизме белка проявляются с возрастом, вероятно, в результате изменения в гормональном статусе. Изменения возникают независимо от композиции тела, так, нами были обследованы субъекты с ожирением (ИМТ 36–38) (105), в отличие от эксперимента группы Nair’s (56), сообщавшей об аналогичных различиях в базальном уровне СМП. Известно, что пожилые женщины демонстрируют меньшую гипертрофию (~33 %), чем мужчины, в ответ на тренировку с отягощением (3 дня в неделю, 26 недель) (6), вероятно, из-за неспособности поддерживать адаптивный ответ на хроническое тренирующее воздействие; так, пожилые мужчины увеличивают базальный уровень СМП на ~50 % после 3 месяцев тренировки, тогда как пожилые женщины только на ~15 % (104)

Влияние возраста на метаболизм мышечного белка и упражнения

П ротиворечивы сведения относительно базального уровня СМП у пожилых людей, в некоторых ранних исследованиях сообщалось о снижении уровня синтеза белка в мышцах по сравнению с молодыми субъектами (96, 121, 127). Тем не менее, если данные корректны, величина утраты мышечной ткани с возрастом должна быть намного выше, чем обычно наблюдаемая, поэтому большинство ученых в настоящее время согласны, что у здоровых людей старение не влияет на базальный уровень СМП, и общий баланс белка у здоровых пожилых людей не снижается (32, 117, 119). Умеренное повышение двигательной активности предотвращает связанную с возрастом утрату мышечной силы, а также возрастную жировую инфильтрацию мышц у пожилых людей (40). Более того, было показано, что у пожилых людей СМП может стимулироваться как упражнениями с отягощением, так и питанием (32, 38, 131). Тем не менее мы недавно продемонстрировали «анаболическую резистентность» СМП стариков к однократной тренировке из упражнений с отягощениями в широком диапазоне интенсивности нагрузки – на ~30 % меньший ответ у пожилых в сравнении с молодыми людьми (66).

Тогда как другие исследователи сообщали о запаздывании ответной реакции на упражнения с отягощениями у пожилых людей (38), мы не обнаружили подобного эффекта (66). Эти расхождения могут быть вызваны меньшим объемом упражнений, использованных в эксперименте, и обстоятельством, что субъекты изучались в состоянии голода после ночного сна (66). Подобный «притупленный» анаболический эффект наблюдался у стариков в ответ на прием пищи, расцененный как снижение чувствительности и способности к анаболическому ответу на прием аминокислот отдельно (32) и в сочетании с глюкозой (118).

Худший анаболический ответ СМП на упражнения с отягощением в мышцах пожилых людей, видимо, связан со снижением активации восходящего сигнала пути mTOR и повышением активности АМРК по сравнению с мышцами молодых людей (38). В исследованиях на грызунах обнаружено снижение активации сигнального пути mTOR после упражнений с отягощениями и повышение активности АМРК у пожилых крыс по сравнению с молодыми животными (45, 83, 111).

Недостаточное количество данных об РМП в ответ на упражнения у стариков. Используя метод растворенных A-V меток, обнаружено некоторое увеличение распада белка в состоянии покоя у пожилых людей (119). Тем не менее, по нашим данным, нет различий в базальном РМП, но «нормальное» ингибирование РМП инсулином существенно ниже у стариков (122). Видимо, «притупленный анаболизм» – широко распространенное явление в стареющих мышцах.

Минимизация потерь мышечной ткани, поддержание массы и функций мышц – основная цель при старении; мы должны понять синергию между упражнениями и приемом пищи, а также разработать надлежащую стратегию тренировок и питания для пожилых людей.

ВЫВОДЫ

Подводя итог, можно констатировать, что мышцы показывают удивительную пластичность в ответ на упражнения. Во время упражнений с отягощениями и без них СМП подавляется, тогда как после тренировки – повышается как в голодном, так и в сытом состоянии. Эта стимуляция проявляет зависимость от дозы и величины воздействия; тем не менее, для выяснение роли рабочей нагрузки требуются дополнительные исследования. Независимо от различий в нагрузке и наличия (или отсутствия) отягощения, сократительная активность вызывает сходный срочный анаболический ответ в нетренированных мышцах. Однако после периода тренировок срочный ответ уменьшается и зависит от вида упражнений: с отягощением или без отягощения и стимулирует синтез белков миофибрилл (с отягощением) или митохондрий (без отягощения), вероятно, отражая адаптивные изменения в зависимости от вида упражнения. Активация РМП во время упражнения с отягощением или без остается невыясненной. Тем не менее существует достаточно данных, подтверждающих увеличение РМП после обоих видов упражнений. Общее увеличение мышечной массы (СМП – РМП) после упражнений проявляется только при повышении доступности аминокислот во время постнагрузочного периода. Приблизительно 20 г высококачественного белка, например молочного, достаточно для инициации максимального синтетического ответа и, соответственно, общего увеличения массы мышц.

С возрастом уменьшается синтез белка миофибрилл в ответ на упражнение и потребление пищи, последние данные свидетельствуют о существовании половых различий в обмене мышечного белка, особенно об уменьшении ответа на упражнения у пожилых женщин.

Активация АМРК в результате клеточных запасов энергии играет важную роль в ингибировании синтеза белка. Увеличение синтеза белка после упражнений опосредуется активацией передачи сигналов mTOR и последующих эффекторов. Связь времени и величины ответа между упражнениями и фосфорилированием регуляторов клеточных сигнальных путей, вовлеченных в синтез и деградацию белка, только начинает выясняться. Несмотря на то что эти процессы фосфорилирования в основном качественно проявляются в результате анаболических стимулов, таких как упражнения, требуется гораздо больше работ для расшифровки сигналов, которые их включают или выключают и в конечном счете контролируют адаптивный ответ, например, мышечную гипертрофию или биогенез митохондрий. Конечно, в настоящее время невозможно напрямую связать размеры активации обмена мышечных белков с фосфорилированием сигнальных молекул. Когда мы сможем сделать это, мы будем гораздо ближе к нашей цели – пониманию регуляции мышечной массы и функции и разработке стратегии максимизации поддержания мышц в здоровье и болезни.

REFERENCES

  1. Aronson D., Violan M.A., Dufresne S.D., Zangen D., Fielding R.A., Goodyear L.J. Exercise stimulates the mitogen-activated protein kinase pathway in human skeletal muscle. J ClinInvest, 99: 1251–1257, 1997. Medline

  2. Atherton P.J., Babraj J., Smith K., Singh J., Rennie M.J., Wackerhage H. Selective activation of AMPK-PGC-1alpha or PKB-TSC2-mTOR signaling can explain specific adaptive responses to endurance or resistance training-like electrical muscle stimulation. FASEB J, 19: 786–788, 2005. Abstract/FREE FullText

  3. Attaix D., Ventadour S., Codran A., Bechet D., Taillandier D., Combaret L.The ubiquitin-proteasome system and skeletal muscle wasting. Essays Biochem, 41: 173–186, 2005. CrossRefMedline

  4. Baar K., Esser K. Phosphorylation of p70(S6k) correlates with increased skeletal muscle mass following resistance exercise. Am J Physiol Cell Physiol, 276: C120–C127, 1999. Abstract/FREE Full Text

  5. Balagopal P., Schimke J.C., Ades P., Adey D., Nair K.S. Age effect on transcript levels and synthesis rate of muscle MHC and response to resistance exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 280: E203–E208, 2001. Abstract/FREE Full Text

  6. Bamman M.M., Hill V.J., Adams G.R., Haddad F., Wetzstein C.J., Gower B.A., Ahmed A., Hunter G.R. Gender differences in resistance-training-induced myofiber hypertrophy among older adults. J Gerontol A BiolSciMedSci, 58: 108–116, 2003. Medline

  7. Beelen M., Koopman R., Gijsen A.P., Vandereyt H., Kies A.K., Kuipers H., Saris W.H., van Loon L.J. Protein coingestion stimulates muscle protein synthesis during resistance-type exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 295: E70–E77, 2008. Abstract/FREE Full Text

  8. Beelen M., Tieland M., Gijsen A.P., Vandereyt H., Kies A.K., Kuipers H., Saris W.H., Koopman R., van Loon L.J. Coingestion of carbohydrate and protein hydrolysate stimulates muscle protein synthesis during exercise in young men, with no further increase during subsequent overnight recovery. J Nutr, 138: 2198–2204, 2008. Abstract/FREE FullText

  9. Belcastro A.N. Skeletal muscle calcium-activated neutral protease (calpain) with exercise .J ApplPhysiol, 74: 1381–1386, 1993. Abstract/FREE FullText

  10. Bennet W.M., Connacher A.A., Scrimgeour C.M., Smith K., Rennie M.J. Increase in anterior tibialis muscle protein synthesis in healthy man during mixed amino acid infusion: studies of incorporation of [1‑13C]leucine. ClinSci (Lond), 76: 447–454, 1989. Medline

  11. Benziane B., Burton T.J., Scanlan B., Galuska D., Canny B.J., Chibalin A.V., Zierath J.R., Stepto N.K. Divergent cell signaling after short-term intensified endurance training in human skeletal muscle. Am J Physiol Endocrinol Metab, 295: E1427–E1438, 2008. Abstract/FREE Full Text

  12. Bier D.M.. Stable isotopes in biosciences, their measurement and models for amino acid metabolism. Eur J Pediatr, 156, Suppl 1: S2–S8, 1997. CrossRefMedline

  13. Biolo G., Maggi S.P., Williams B.D., Tipton K.D., Wolfe R.R. Increased rates of muscle protein turnover and amino acid transport after resistance exercise in humans. Am J Physiol Endocrinol Metab, 268: E514–E520, 1995. Abstract/FREE Full Text

  14. Biolo G., Tipton K.D., Klein S., Wolfe R.R. An abundant supply of amino acids enhances the metabolic effect of exercise on muscle protein. Am J Physiol Endocrinol Metab, 273: E122–E129, 1997. Abstract/FREE Full Text

  15. Biolo G., Williams B.D., Fleming R.Y., Wolfe R.R. Insulin action on muscle protein kinetics and amino acid transport during recovery after resistance exercise. Diabetes, 48: 949–957, 1999. Abstract

  16. Bohe J., Low A., Wolfe R.R., Rennie M.J. Human muscle protein synthesis is modulated by extracellular, not intramuscular amino acid availability: a dose-response study. J Physiol, 552: 315–324, 2003. Abstract/FREE FullText

  17. Bohe J, Low J.F., Wolfe R.R., Rennie M.J. Latency and duration of stimulation of human muscle protein synthesis during continuous infusion of amino acids. J Physiol, 532: 575–579, 2001. Abstract/FREE FullText

  18. Bolster D.R., Crozier S.J., Kimball S.R., Jefferson L.S. AMP-activated protein kinase suppresses protein synthesis in rat skeletal muscle through down-regulated mammalian target of rapamycin (mTOR) signaling. J BiolChem, 277: 23977–23980, 2002. Abstract/FREE FullText

  19. Bolster D.R., Kubica N., Crozier S.J., Williamson D.L., Farrell P.A., Kimball S.R., Jefferson L.S. Immediate response of mammalian target of rapamycin (mTOR)-mediated signaling following acute resistance exercise in rat skeletal muscle. J Physiol, 553: 213–220, 2003. Abstract/FREE FullText

  20. Borsheim E., Cree M.G., Tipton K.D., Elliott T.A., Aarsland A., Wolfe R.R. Effect of carbohydrate intake on net muscle protein synthesis during recovery from resistance exercise. J ApplPhysiol, 96: 674–678, 2004. Abstract/FREE FullText

  21. Borsheim E., Tipton K.D., Wolf S.E., Wolfe R.R. Essential amino acids and muscle protein recovery from resistance exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 283: E648–E657, 2002. Abstract/FREE Full Text

  22. Bowtell J.L., Leese G.P., Smith K., Watt P.W., Nevill A., Rooyackers O., Wagenmakers A.J., Rennie M.J. Modulation of whole body protein metabolism, during and after exercise, by variation of dietary protein. J ApplPhysiol, 85: 1744–1752, 1998. Abstract/FREE FullText

  23. Brodsky I.G., Balagopal P., Nair K.S. Effects of testosterone replacement on muscle mass and muscle protein synthesis in hypogonadal men – a clinical research center study. J Clin Endocrinol Metab, 81: 3469–3475, 1996. Abstract

  24. Bylund-Fellenius A.C., Ojamaa K.M., Flaim K.E., Li J.B., Wassner S.J., Jefferson L.S. Protein synthesis versus energy state in contracting muscles of perfused rat hindlimb. Am J Physiol Endocrinol Metab, 246: E297–E305, 1984. Abstract/FREE Full Text

  25. Carmeli E., Moas M., Lennon S., Powers S.K. High intensity exercise increases expression of matrix metalloproteinases in fast skeletal muscle fibres. ExpPhysiol, 90: 613–619, 2005. Abstract/FREE FullText

  26. Carraro F., Hartl W.H., Stuart C.A., Layman D.K., Jahoor F., Wolfe R.R. Whole body and plasma protein synthesis in exercise and recovery in human subjects. Am J Physiol Endocrinol Metab, 258: E821–E831, 1990. Abstract/FREE Full Text

  27. Carraro F., Stuart C.A., Hartl W.H., Rosenblatt J., Wolfe R.R. Effect of exercise and recovery on muscle protein synthesis in human subjects. Am J Physiol Endocrinol Metab, 259: E470–E476, 1990. Abstract/FREE Full Text

  28. Cheng K.N., Dworzak F., Ford G.C., Rennie M.J., Halliday D. Direct determination of leucine metabolism and protein breakdown in humans using l-[1-13C,15N]-leucine and the forearm model. Eur J ClinInvest, 15: 349–354, 1985. Medline

  29. Chesley A., MacDougall J.D., Tarnopolsky M.A., Atkinson S.A., Smith K. Changes in human muscle protein synthesis after resistance exercise. J ApplPhysiol, 73: 1383–1388, 1992. Abstract/FREE FullText

  30. Chinkes D., Klein S., Zhang X.J., Wolfe R.R. Infusion of labeled KIC is more accurate than labeled leucine to determine human muscle protein synthesis. Am J Physiol Endocrinol Metab, 270: E67–E71, 1996. Abstract/FREE Full Text

  31. Coffey V.G., Hawley J.A. The molecular bases of training adaptation. SportsMed, 37: 737–763, 2007. CrossRefMedline

  32. Cuthbertson D., Smith K., Babraj J., Leese G., Waddell T., Atherton P., Wackerhage H., Taylor P.M., Rennie M.J. Anabolic signaling deficits underlie amino acid resistance of wasting, aging muscle. FASEB J, 19: 422–424, 2005. Abstract/FREE FullText

  33. Cuthbertson D.J., Babraj J., Smith K., Wilkes E., Fedele M.J., Esser K., Rennie M. Anabolic signaling and protein synthesis in human skeletal muscle after dynamic shortening or lengthening exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab,290: E731–E738, 2006. Abstract/FREE Full Text

  34. Deldicque L., Atherton P., Patel R., Theisen D., Nielens H., Rennie M.J., Francaux M. Decrease in Akt/PKB signalling in human skeletal muscle by resistance exercise. Eur J ApplPhysiol, 104: 57–65, 2008. CrossRefMedline

  35. Dohm G.L., Tapscott E.B., Barakat H.A., Kasperek G.J. Measurement of in vivo protein synthesis in rats during an exercise bout. BiochemMed, 27: 367–373, 1982. CrossRefMedline

  36. Dreyer H.C., Drummond M.J., Pennings B., Fujita S., Glynn E.L., Chinkes D.L., Dhanani S., Volpi E., Rasmussen B.B. Leucine-enriched essential amino acid and carbohydrate ingestion following resistance exercise enhances mTOR signaling and protein synthesis in human muscle. Am J Physiol Endocrinol Metab, 294: E392–E400, 2008. Abstract/FREE Full Text

  37. Dreyer H.C., Fujita S., Cadenas J.G., Chinkes D.L., Volpi E., Rasmussen B.B. Resistance exercise increases AMPK activity and reduces 4E-BP1 phosphorylation and protein synthesis in human skeletal muscle. J Physiol, 576: 613–624, 2006. Abstract/FREE FullText

  38. Drummond M.J., Dreyer H.C., Pennings B., Fry C.S., Dhanani S., Dillon E.L., Sheffield-Moore M., Volpi E., Rasmussen B.B. Skeletal muscle protein anabolic response to resistance exercise and essential amino acids is delayed with aging. J ApplPhysiol, 104: 1452–1461, 2008. Abstract/FREE FullText

  39. Durham W.J., Miller S.L., Yeckel C.W., Chinkes D.L., Tipton K.D., Rasmussen B.B., Wolfe R.R. Leg glucose and protein metabolism during an acute bout of resistance exercise in humans. J ApplPhysiol, 97: 1379–1386, 2004. Abstract/FREE FullText

  40. Esmarck B., Andersen J.L., Olsen S., Richter E.A., Mizuno M., Kjaer M. Timing of postexercise protein intake is important for muscle hypertrophy with resistance training in elderly humans. J Physiol, 535: 301–311, 2001. Abstract/FREE FullText

  41. Forbes G.B. The effect of anabolic steroids on lean body mass: the dose response curve. Metabolism, 34: 571–573, 1985. CrossRefMedline

  42. Fujii N., Hayashi T., Hirshman M.F., Smith J.T., Habinowski S.A., Kaijser L., Mu J., Ljungqvist O., Birnbaum M.J., Witters L.A., Thorell A., Goodyear L.J. Exercise induces isoform-specific increase in 5′AMP-activated protein kinase activity in human skeletal muscle. BiochemBiophysResCommun, 273: 1150–1155, 2000. CrossRefMedline

  43. Fujita S., Dreyer H.C., Drummond M.J., Glynn E.L., Volpi E., Rasmussen B.B. Essential amino acid and carbohydrate ingestion prior to resistance exercise does not enhance post-exercise muscle protein synthesis. J ApplPhysiol. Inpress.

  44. Fujita S., Rasmussen B.B., Bell J.A., Cadenas J.G., Volpi E. Basal muscle intracellular amino acid kinetics in women and men. Am J Physiol Endocrinol Metab, 292: E77–E83, 2007. Abstract/FREE Full Text

  45. Funai K., Parkington J.D., Carambula S., Fielding R.A. Age-associated decrease in contraction-induced activation of downstream targets of Akt/mTor signaling in skeletal muscle. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol, 290: R1080–R1086, 2006. Abstract/FREE Full Text

  46. Gautsch T.A., Anthony J.C., Kimball S.R., Paul G.L., Layman D.K., Jefferson L.S. Availability of eIF4E regulates skeletal muscle protein synthesis during recovery from exercise. Am J Physiol Cell Physiol, 274: C406–C414, 1998. Abstract/FREE Full Text

  47. Glover E.I., Phillips S.M., Oates B.R., Tang J.E., Tarnopolsky M.A., Selby A., Smith K., Rennie M.J. Immobilization induces anabolic resistance in human myofibrillar protein synthesis with low and high dose amino acid infusion. J Physiol, 586: 6049–61, 2008. Abstract/FREE FullText

  48. Gollnick P.D., Saltin B. Significance of skeletal muscle oxidative enzyme enhancement with endurance training. ClinPhysiol, 2: 1–12, 1982. Medline

  49. Goodpaster B.H., Chomentowski P., Ward B.K., Rossi A., Glynn N.W., Delmonico M.J., Kritchevsky S.B., Pahor M., Newman A.B. Effects of physical activity on strength and skeletal muscle fat infiltration in older adults: a randomized controlled trial. J ApplPhysiol, 105: 1498–1503, 2008. Abstract/FREE FullText

  50. Greenhaff P.L., Karagounis L., Peirce N., Simpson E.J., Hazell M., Layfield R., Wackerhage H., Smith K., Atherton P., Selby A., Rennie M.J. Disassociation between the effects of amino acids and insulin on signaling, ubiquitin-ligases and protein turnover in human muscle. Am J Physiol Endocrinol Metab, 295: E595–E604, 2008. Abstract/FREE Full Text

  51. Halliday D., McKeran R.O. Measurement of muscle protein synthetic rate from serial muscle biopsies and total body protein turnover in man by continuous intravenous infusion of l-(α-15N)lysine. ClinSciMolMed, 49: 581–590, 1975. Medline

  52. Hardie D.G. AMPK: a key regulator of energy balance in the single cell and the whole organism. Int J Obes (Lond), 32, Suppl4: S7–S12, 2008.

  53. Hartman J.W., Tang J.E., Wilkinson S.B., Tarnopolsky M.A., Lawrence R.L., Fullerton A.V., Phillips S.M. Consumption of fat-free fluid milk after resistance exercise promotes greater lean mass accretion than does consumption of soy or carbohydrate in young, novice, male weightlifters. Am J ClinNutr, 86: 373–381, 2007. Abstract/FREE FullText

  54. Hasten D.L., Pak-Loduca J., Obert K.A., Yarasheski K.E. Resistance exercise acutely increases MHC and mixed muscle protein synthesis rates in 78–84 and 23–32 yr olds. Am J Physiol Endocrinol Metab, 278: E620–E626, 2000. Abstract/FREE Full Text

  55. Haus J.M., Miller B.F., Carroll C.C., Weinheimer E.M., Trappe T.A. The effect of strenuous aerobic exercise on skeletal muscle myofibrillar proteolysis in humans. Scand J MedSciSports, 17: 260–266, 2007. Medline

  56. Henderson G.C., Dhatariya K., Ford G.C., Klaus K.A., Basu R., Rizza R.A., Jensen M.D., Khosla S., O'Brien P., Nair K.S. Higher muscle protein synthesis in women than men across the lifespan, and failure of androgen administration to amend age-related decrements. FASEB J, 23: 631–641, 2009. Abstract/FREE FullText

  57. Hoppeler H. Exercise-induced ultrastructural changes in skeletal muscle. Int J SportsMed, 7: 187–204, 1986. Medline

  58. Isidori A.M., Giannetta E., Greco E.A., Gianfrilli D., Bonifacio V., Isidori A., Lenzi A., Fabbri A. Effects of testosterone on body composition, bone metabolism and serum lipid profile in middle-aged men: a meta-analysis. ClinEndocrinol (Oxf), 63: 280–293, 2005. CrossRefMedline

  59. Jahn L.A., Barrett E.J., Genco M.L., Wei L., Spraggins T.A., Fryburg D.A. Tissue composition affects measures of postabsorptive human skeletal muscle metabolism: comparison across genders. J ClinEndocrinolMetab, 84: 1007–1010, 1999. Abstract/FREE FullText

  60. Jaleel A., Short K.R., Asmann Y.W., Klaus K.A., Morse D.M., Ford G.C., Nair K.S. In vivo measurement of synthesis rate of individual skeletal muscle mitochondrial proteins. Am J Physiol Endocrinol Metab, 295: E1255–E1268, 2008. Abstract/FREE Full Text

  61. Karlsson H.K., Nilsson P.A., Nilsson J., Chibalin A.V., Zierath J.R., Blomstrand E. Branched-chain amino acids increase p70S6k phosphorylation in human skeletal muscle after resistance exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 287: E1–E7, 2004. Abstract/FREE Full Text

  62. Kim P.L., Staron R.S., Phillips S.M. Fasted-state skeletal muscle protein synthesis after resistance exercise is altered with training. J Physiol, 568: 283–290, 2005. Abstract/FREE FullText

  63. Kimball S.R., Farrell P.A., Jefferson L.S. Invited Review: Role of insulin in translational control of protein synthesis in skeletal muscle by amino acids or exercise. J ApplPhysiol, 93: 1168–1180, 2002. Abstract/FREE FullText

  64. Koopman R., Wagenmakers A.J., Manders R.J., Zorenc A.H., Senden J.M., Gorselink M., Keizer H.A., van Loon L.J. Combined ingestion of protein and free leucine with carbohydrate increases postexercise muscle protein synthesis in vivo in male subjects. Am J Physiol Endocrinol Metab, 288: E645–E653, 2005. Abstract/FREE Full Text

  65. Kostek M.C., Chen Y.W., Cuthbertson D.J., Shi R., Fedele M.J., Esser K.A., Rennie M.J. Gene expression responses over 24 h to lengthening and shortening contractions in human muscle: major changes in CSRP3, MUSTN1, SIX1, and FBXO32. PhysiolGenomics, 31: 42–52, 2007. Abstract/FREE FullText

  66. Kumar V., Selby A., Rankin D., Patel R., Atherton P., Hildebrandt W., Williams J., Smith K., Seynnes O., Hiscock N., Rennie M.J. Age-related differences in the dose-response of muscle protein synthesis to resistance exercise in young and old men. J Physiol, 587: 211–217, 2009. Abstract/FREE FullText

  1. Levenhagen D.K., Gresham J.D., Carlson M.G., Maron D.J., Borel M.J., Flakoll P.J. Postexercise nutrient intake timing in humans is critical to recovery of leg glucose and protein homeostasis. Am J Physiol Endocrinol Metab, 280: E982–E993, 2001. Abstract/FREE Full Text

  2. Louard R.J., Barrett E.J., Gelfand R.A. Effect of infused branched-chain amino acids on muscle and whole-body amino acid metabolism in man. ClinSci (Lond), 79: 457–466, 1990. Medline

  3. Louard R.J., Barrett E.J., Gelfand R.A. Overnight branched-chain amino acid infusion causes sustained suppression of muscle proteolysis. Metabolism, 44: 424–429, 1995. CrossRefMedline

  4. Louis M., Poortmans J.R., Francaux M., Berre J., Boisseau N., Brassine E., Cuthbertson D.J., Smith K., Babraj J.A., Waddell T., Rennie M.J. No effect of creatine supplementation on human myofibrillar and sarcoplasmic protein synthesis after resistance exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 285: E1089–E1094, 2003. Abstract/FREE Full Text

  5. MacDougall J.D., Gibala M.J., Tarnopolsky M.A., MacDonald J.R., Interisano S.A., Yarasheski K.E. The time course for elevated muscle protein synthesis following heavy resistance exercise. Can J ApplPhysiol, 20: 480–486, 1995. Medline

  6. MacLean D.A., Graham T.E., Saltin B. Branched-chain amino acids augment ammonia metabolism while attenuating protein breakdown during exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 267: E1010–E1022, 1994. Abstract/FREE Full Text

  7. MacLean D.A., Graham T.E., Saltin B. Stimulation of muscle ammonia production during exercise following branched-chain amino acid supplementation in humans. J Physiol, 493: 909–922, 1996. Abstract/FREE FullText

  8. Mascher H., Andersson H., Nilsson P.A., Ekblom B., Blomstrand E. Changes in signalling pathways regulating protein synthesis in human muscle in the recovery period after endurance exercise. ActaPhysiol (Oxf), 191: 67–75, 2007. CrossRefMedline

  9. Miller B.F., Hansen M., Olesen J.L., Flyvbjerg A., Schwarz P., Babraj J.A., Smith K., Rennie M.J., Kjaer M. No effect of menstrual cycle on myofibrillar and connective tissue protein synthesis in contracting skeletal muscle. Am J Physiol Endocrinol Metab, 290: E163–E168, 2006. Abstract/FREE Full Text

  10. Miller B.F., Olesen J.L., Hansen M., Dossing S., Crameri R.M., Welling R.J., Langberg H., Flyvbjerg A., Kjaer M., Babraj J.A., Smith K., Rennie M.J. Coordinated collagen and muscle protein synthesis in human patella tendon and quadriceps muscle after exercise. J Physiol, 567: 1021–1033, 2005. Abstract/FREE FullText

  11. Miller S.L., Tipton K.D., Chinkes D.L., Wolf S.E., Wolfe R.R. Independent and combined effects of amino acids and glucose after resistance exercise. MedSciSportsExerc, 35: 449–455, 2003. CrossRefMedline

  12. Millward D.J., Jackson A.A. Protein/energy ratios of current diets in developed and developing countries compared with a safe protein/energy ratio: implications for recommended protein and amino acid intakes. PublicHealthNutr, 7: 387–405, 2004. CrossRefMedline

  13. Moore D.R., Phillips S.M., Babraj J.A., Smith K., Rennie M.J. Myofibrillar and collagen protein synthesis in human skeletal muscle in young men after maximal shortening and lengthening contractions. Am J Physiol Endocrinol Metab, 288: E1153–E1159, 2005. Abstract/FREE Full Text

  14. Moore D.R., Robinson M.J., Fry J.L., Tang J.E., Glover E.I., Wilkinson S.B., Prior T., Tarnopolsky M.A., Phillips S.M. Ingested protein dose-response of muscle and albumin prtoein synthesis after resistance exercise in young men. Am J ClinNutr, 89: 161–168, 2008. CrossRefMedline

  15. Nair K.S., Jaleel A., Asmann Y.W., Short K.R., Raghavakaimal S. Proteomic research: potential opportunities for clinical and physiological investigators. Am J Physiol Endocrinol Metab, 286: E863–E874, 2004. Abstract/FREE Full Text

  16. Parise G., Mihic S., MacLennan D., Yarasheski K.E., Tarnopolsky M.A. Effects of acute creatine monohydrate supplementation on leucine kinetics and mixed-muscle protein synthesis. J ApplPhysiol, 91: 1041–1047, 2001. Abstract/FREE FullText

  17. Parkington J.D., LeBrasseur N.K., Siebert A.P., Fielding R.A. Contraction-mediated mTOR, p70S6k, and ERK1/2 phosphorylation in aged skeletal muscle. J ApplPhysiol, 97: 243–248, 2004. Abstract/FREE FullText

  18. Phillips S.M., Parise G., Roy B.D., Tipton K.D., Wolfe R.R., Tamopolsky M.A. Resistance-training-induced adaptations in skeletal muscle protein turnover in the fed state. Can J PhysiolPharmacol, 80: 1045–1053, 2002. CrossRefMedline

  19. Phillips S.M., Tipton K.D., Aarsland A., Wolf S.E., Wolfe R.R. Mixed muscle protein synthesis and breakdown after resistance exercise in humans. Am J Physiol Endocrinol Metab, 273: E99–E107, 1997. Abstract/FREE Full Text

  20. Phillips S.M., Tipton K.D., Ferrando A.A., Wolfe R.R. Resistance training reduces the acute exercise-induced increase in muscle protein turnover. Am J Physiol Endocrinol Metab, 276: E118–E124, 1999. Abstract/FREE Full Text

  21. Pikosky M.A., Gaine P.C., Martin W.F., Grabarz K.C., Ferrando A.A., Wolfe R.R., Rodriguez N.R. Aerobic exercise training increases skeletal muscle protein turnover in healthy adults at rest. J Nutr, 136: 379–383, 2006. Abstract/FREE FullText

  22. Pilegaard H., Richter E.A. PGC-1alpha: important for exercise performance? J ApplPhysiol, 104: 1264–1265, 2008. FREE FullText

  23. Pilegaard H., Saltin B., Neufer P.D. Exercise induces transient transcriptional activation of the PGC-1alpha gene in human skeletal muscle. J Physiol, 546: 851–858, 2003. Abstract/FREE FullText

  24. Rasmussen B.B., Tipton K.D., Miller S.L., Wolf S.E., Wolfe R.R. An oral essential amino acid-carbohydrate supplement enhances muscle protein anabolism after resistance exercise. J ApplPhysiol, 88: 386–392, 2000. Abstract/FREE FullText

  25. Raue U., Slivka D., Jemiolo B., Hollon C., Trappe S. Proteolytic gene expression differs at rest and after resistance exercise between young and old women. J Gerontol A Biol Sci Med Sci, 62: 1407–1412, 2007. Abstract/FREE Full Text

  26. Rennie M.J. An introduction to the use of tracers in nutrition and metabolism.ProcNutrSoc, 58: 935–944, 1999. Medline

  27. Rennie M.J., Edwards R.H., Davies C.T., Krywawych S., Halliday D., Waterlow J.C., Millward D.J. Protein and amino acid turnover during and after exercise. Biochem Soc Trans, 8: 499–501, 1980. Medline

  28. Rennie M.J., Edwards R.H., Halliday D., Matthews D.E., Wolman S.L., Millward D.J. Muscle protein synthesis measured by stable isotope techniques in man: the effects of feeding and fasting. ClinSci (Lond), 63: 519–523, 1982. Medline

  29. Rennie M.J., Phillips S., Smith K. Reliability of results and interpretation of measures of 3-methylhistidine in muscle interstitium as marker of muscle proteolysis. J ApplPhysiol, 105: 1380–1381, 2008. FREE FullText

  30. Rooyackers O.E., Adey D.B., Ades P.A., Nair K.S. Effect of age on in vivo rates of mitochondrial protein synthesis in human skeletal muscle. ProcNatlAcadSci USA, 93: 15364–15369, 1996. Abstract/FREE FullText

  31. Rose A.J., Broholm C., Kiillerich K., Finn S.G., Proud C.G., Rider M.H., Richter E.A., Kiens B. Exercise rapidly increases eukaryotic elongation factor 2 phosphorylation in skeletal muscle of men. J Physiol, 569: 223–228, 2005. Abstract/FREE FullText

  32. Sakamoto K., Arnolds D.E., Ekberg I., Thorell A., Goodyear L.J. Exercise regulates Akt and glycogen synthase kinase-3 activities in human skeletal muscle. BiochemBiophysResCommun, 319: 419–425, 2004. CrossRefMedline

  33. Sakamoto K., Goodyear L.J. Invited Review: Intracellular signaling in contracting skeletal muscle. J ApplPhysiol, 93: 369–383, 2002. Abstract/FREE FullText

  34. Sheffield-Moore M., Paddon-Jones D., Sanford A.P., Rosenblatt J.I., Matlock A.G., Cree M.G., Wolfe R.R. Mixed muscle and hepatic derived plasma protein metabolism is differentially regulated in older and younger men following resistance exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 288: E922–E929, 2005. Abstract/FREE Full Text

  35. Sheffield-Moore M., Yeckel C.W., Volpi E., Wolf S.E., Morio B., Chinkes D.L., Paddon-Jones D., Wolfe R.R. Postexercise protein metabolism in older and younger men following moderate-intensity aerobic exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 287: E513–E522, 2004. Abstract/FREE Full Text

  36. Short K.R., Vittone J.L., Bigelow M.L., Proctor D.N., Nair K.S. Age and aerobic exercise training effects on whole body and muscle protein metabolism. Am J Physiol Endocrinol Metab, 286: E92–E101, 2004. Abstract/FREE Full Text

  37. Short K.R., Vittone J.L., Bigelow M.L., Proctor D.N., Rizza R.A., Coenen-Schimke J.M., Nair K.S. Impact of aerobic exercise training on age-related changes in insulin sensitivity and muscle oxidative capacity. Diabetes, 52: 1888–1896, 2003. Abstract/FREE FullText

  38. Smith G., Villareal D., Sinacore D., Shah K., Mittendorfer B. The anabolic response to exercise training is greater in older men than older women. In: APS Intersociety Meeting: The Integrative Biology of Exercise V, September 24–27, 2009, Hilton Head, SC. Bethesda, MD: Am. Physiol. Soc., 2008, p. 17.2.

  39. Smith G.I., Atherton P., Villareal D.T., Frimel T.N., Rankin D., Rennie M.J., Mittendorfer B. Differences in muscle protein synthesis and anabolic signaling in the postabsorptive state and in response to food in 65–80 year old men and women. PLoS ONE3: e1875, 2008. CrossRefMedline

  40. Smith K., Barua J.M., Watt P.W., Scrimgeour C.M., Rennie M.J. Flooding with l-[1-13C]leucine stimulates human muscle protein incorporation of continuously infused l-[1-13C]valine. Am J Physiol Endocrinol Metab, 262: E372–E376, 1992. Abstract/FREE Full Text

  41. Smith K., Rennie M.J. The measurement of tissue protein turnover. BaillieresClinEndocrinolMetab, 10: 469–495, 1996. CrossRefMedline

  42. Tang J.E., Manolakos J.J., Kujbida G.W., Lysecki P.J., Moore D.R., Phillips S.M. Minimal whey protein with carbohydrate stimulates muscle protein synthesis following resistance exercise in trained young men. ApplPhysiolNutrMetab, 32: 1132–1138, 2007. CrossRefMedline

  43. Tang J.E., Perco J.G., Moore D.R., Wilkinson S.B., Phillips S.M. Resistance training alters the response of fed state mixed muscle protein synthesis in young men. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol, 294: R172–R178, 2008. Abstract/FREE Full Text

  44. Thomson D.M., Gordon S.E. Diminished overload-induced hypertrophy in aged fast-twitch skeletal muscle is associated with AMPK hyperphosphorylation. J ApplPhysiol, 98: 557–564, 2005. Abstract/FREE FullText

  45. Tipton K.D., Borsheim E., Wolf S.E., Sanford A.P., Wolfe R.R. Acute response of net muscle protein balance reflects 24-h balance after exercise and amino acid ingestion. Am J Physiol Endocrinol Metab, 284: E76–E89, 2003. Abstract/FREE Full Text

  46. Tipton K.D., Ferrando A.A., Phillips S.M., Doyle D. Jr., Wolfe R.R. Postexercise net protein synthesis in human muscle from orally administered amino acids. Am J Physiol Endocrinol Metab, 276: E628–E634, 1999. Abstract/FREE Full Text

  47. Tipton K.D., Ferrando A.A., Williams B.D., Wolfe R.R. Muscle protein metabolism in female swimmers after a combination of resistance and endurance exercise. J ApplPhysiol, 81: 2034–2038, 1996. Abstract/FREE FullText

  48. Tipton K.D., Rasmussen B.B., Miller S.L., Wolf S.E., Owens-Stovall S.K., Petrini B.E., Wolfe R.R. Timing of amino acid-carbohydrate ingestion alters anabolic response of muscle to resistance exercise. Am J Physiol Endocrinol Metab, 281: E197–E206, 2001. Abstract/FREE Full Text

  49. Toth M.J., Poehlman E.T., Matthews D.E., Tchernof A., MacCoss M.J. Effects of estradiol and progesterone on body composition, protein synthesis, and lipoprotein lipase in rats. Am J Physiol Endocrinol Metab, 280: E496–E501, 2001. Abstract/FREE Full Text

  50. Urban R.J., Bodenburg Y.H., Gilkison C., Foxworth J., Coggan A.R., Wolfe R.R., Ferrando A. Testosterone administration to elderly men increases skeletal muscle strength and protein synthesis. Am J Physiol Endocrinol Metab, 269: E820–E826, 1995. Abstract/FREE Full Text

  51. Volpi E., Ferrando A.A., Yeckel C.W., Tipton K.D., Wolfe R.R. Exogenous amino acids stimulate net muscle protein synthesis in the elderly. J ClinInvest, 101: 2000–2007, 1998. Medline

  52. Volpi E., Mittendorfer B., Rasmussen B.B., Wolfe R.R. The response of muscle protein anabolism to combined hyperaminoacidemia and glucose-induced hyperinsulinemia is impaired in the elderly. J ClinEndocrinolMetab, 85: 4481–4490, 2000. Abstract/FREE FullText

  53. Volpi E., Sheffield-Moore M., Rasmussen B.B., Wolfe R.R. Basal muscle amino acid kinetics and protein synthesis in healthy young and older men. JAMA, 286: 1206–1212, 2001. Abstract/FREE FullText

  54. Wagenmakers A.J. Tracers to investigate protein and amino acid metabolism in human subjects. ProcNutrSoc, 58: 987–1000, 1999. Medline

  55. Welle S., Thornton C., Jozefowicz R., Statt M. Myofibrillar protein synthesis in young and old men. Am J Physiol Endocrinol Metab, 264: E693–E698, 1993. Abstract/FREE Full Text

  56. Wilkes E., Selby A., Patel R., Rankin D., Smith K., Rennie M. Blunting of insulin-mediated proteolysis in leg muscle of elderly subjects may contribute to age-related sarcopenia (Abstract). ProcNutrSociety, 67 (OCE5): E153, 2008. CrossRef

  57. Wilkinson S.B., Phillips S.M., Atherton P.J., Patel R., Yarasheski K.E., Tarnopolsky M.A., Rennie M.J. Differential effects of resistance and endurance exercise in the fed state on signaling molecule phosphorylation and protein synthesis in human muscle. J Physiol, 586: 3701–3717, 2008. Abstract/FREE FullText

  58. Wilkinson S.B., Tarnopolsky M.A., Macdonald M.J., MacDonald J.R., Armstrong D., Phillips S.M. Consumption of fluid skim milk promotes greater muscle protein accretion after resistance exercise than does consumption of an isonitrogenous and isoenergetic soy-protein beverage. Am J ClinNutr, 85: 1031–1040, 2007. Abstract/FREE FullText

  59. Williamson D.L., Kubica N., Kimball S.R., Jefferson L.S. Exercise-induced alterations in extracellular signal-regulated kinase 1/2 and mammalian target of rapamycin (mTOR) signalling to regulatory mechanisms of mRNA translation in mouse muscle. J Physiol, 573: 497–510, 2006. Abstract/FREE FullText

  60. Yang Y., Creer A., Jemiolo B., Trappe S. Time course of myogenic and metabolic gene expression in response to acute exercise in human skeletal muscle. J ApplPhysiol, 98: 1745–1752, 2005. Abstract/FREE FullText

  61. Yarasheski K.E. Exercise, aging, and muscle protein metabolism. J Gerontol A Biol Sci Med Sci, 58: M918–M922, 2003. Abstract/FREE FullText

  62. Yarasheski K.E., Campbell J.A., Smith K., Rennie M.J., Holloszy J.O., Bier D.M. Effect of growth hormone and resistance exercise on muscle growth in young men. Am J Physiol Endocrinol Metab, 262: E261–E267, 1992. Abstract/FREE Full Text

  63. Yarasheski K.E., Pak-Loduca J., Hasten D.L., Obert K.A., Brown M.B., Sinacore D.R. Resistance exercise training increases mixed muscle protein synthesis rate in frail women and men ≥76 yr old. Am J Physiol Endocrinol Metab, 277: E118–E125, 1999. Abstract/FREE Full Text

  64. Yarasheski K.E., Smith K., Rennie M.J., Bier D.M. Measurement of muscle protein fractional synthetic rate by capillary gas chromatography/combustion isotope ratio mass spectrometry. BiolMassSpectrom, 21: 486–490, 1992. CrossRefMedline

  65. Yarasheski K.E., Zachwieja J.J., Bier D.M. Acute effects of resistance exercise on muscle protein synthesis rate in young and elderly men and women. Am J Physiol Endocrinol Metab, 265: E210–E214, 1993. Abstract/FREE Full Text

  66. Zhang X.J., Chinkes D.L., Wolfe R.R. Measurement of muscle protein fractional synthesis and breakdown rates from a pulse tracer injection. Am J Physiol Endocrinol Metab, 283: E753–E764, 2002. Abstract/FREE Full Text

Гипертрофия, Научные исследования, Тренировки с отягощениями, Физиология

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]
Помощь Обратная связь Вопросы и предложения Пользовательское соглашение Политика конфиденциальности