- •5. Иммерсионный микроскоп. Принцип работы. Сфера применения.
- •9. Принципы классификации микроорганизмов. Понятие о виде и штамме.
- •10. Основные группы микроорганизмов. Значение в патологии человека. Примеры.
- •11. Морфологические и тинкториальные свойства бактерий. Методы изучения.
- •13. Клеточная стенка, особенности строения, функциональное назначение.
- •14. Кислотоустойчивые бактерии: особенности строения и методы выявления.
- •19. Бактериоскопический метод диагностики. Достоинства метода.
- •20. Бактериоскопический метод диагностики. Недостатки метода.
- •1.Метаболизм бактерий. Катаболизм, анаболизм.
- •2. Транспорт питательных веществ в бактериальную клетку.
- •3. Способы получения энергии бактериями. Мембранное и субстратное фосфорилирование.
- •4. Ферменты бактерий. Экзо- и эндоферменты, адаптивные и конститутивные ферменты.
- •5. Биохимические свойства бактерий. Методы изучения.
- •6. Питание бактерий. Классификация бактерий в зависимости от источников энергии, углерода, потребности в сложных органических соединениях.
- •7. Методы культивирования бактерий. Непрерывное и периодическое культивирование. Рост и размножение бактерий на жидких питательных средах при периодическом культивировании.
- •8. Питательные среды. Требования, предъявляемые к питательным средам.
- •9. Культуральные свойства. Колония и её характеристики.
- •10. Классификация питательных сред. Особенности состава и области применения. Примеры.
- •11. Методы культивирования облигатно-анаэробных микроорганизмов. Особенности питательных сред для них.
- •12. Чистая культура. Методы выделения чистой культуры бактерий.
- •13. Бактериологический метод диагностики. Основные этапы.
- •14. Бактериологический метод диагностики. Достоинства и недостатки.
- •15. Влияние физических факторов на жизнедеятельность микроорганизмов
- •16. Влияние химических факторов на жизнедеятельность микроорганизмов.
- •17. Основные группы дезинфектантов. Механизмы действия.
- •18. Стерилизация. Методы стерилизации, используемые в медицине и микробиологии.
- •19. Паровой и воздушный методы стерилизации. Режимы, области применения.
- •20. Методы контроля режима стерилизации. Контроль стерильности.
- •21. Использование излучений для дезинфекции и стерилизации. Область применения.
19. Паровой и воздушный методы стерилизации. Режимы, области применения.
3. Стерилизация сухим жаром. (печь Пастера). В сушильном шкафу стерилизуют чистую, предварительно высушенную стеклянную посуду, завернутую в пергаментную бумагу. Режимы стерилизации: 155…1600 – 2 часа; 165…1700 – 1…1,5 часа; 1800 – 1 час. Время экспозиции отмечают от момента достижения температурой заданного значения.
4. Стерилизация текучим паром. Стерилизацию проводят в аппарате Коха, который представляет собой сосуд с неплотно закрытой крышкой. На дне аппарата имеется решетчатая подставка, до уровня которой наливают воду. На подставку помещают сосуд с решетчатым дном, в котором находятся объекты, подлежащие стерилизации (питательные среды). В процессе кипения воды образуются пары, нагревающие содержимое сосуда. Время стерилизации – 30…40 минут. Однократная стерилизация уничтожает только вегетативные формы бактерий, а споры сохраняют свою жизнеспособность, стерилизацию проводят «дробно» - три дня подряд. Таким способом стерилизуют среды с углеводами, молоко, среды с желатиной, то есть субстраты, которые не выдерживают нагревания более 1000С, длительного действия пара или сухого жара.
7. Стерилизация паром под давлением (автоклавирование). Это самый эффективный метод стерилизации. Принцип стерилизации основан на том, что чистый насыщенный водяной пар при высоком давлении, конденсируясь, повышает температуру внутри автоклава выше температуры кипения. При повышении давления пара соответственно повышается и температура в стерилизационной камере: 50,6 кПа (0,5 атм.) – 110…1120С, 101,3 кПа (1 атм.) – 120…1210С, 151,9 кПа (1,5 атм.) – 124…1260С, 202,6 кПа (2 атм.) – 132…1330С. Конструкции и объем стерилизационной камеры автоклавов могут быть различными (горизонтальные и вертикальные), но принцип действия остается таким же. В автоклаве стерилизуют питательные среды, выдерживающие температуру выше 1000С, стеклянную посуду, завернутую в бумагу, перевязочный материал, халаты (в биксах). Кроме того, обеззараживают микробные культуры, отработанные питательные среды, посуду. Режимы работы автоклава нуждаются в постоянном контроле. Для этого используют химические и биологические методы.
20. Методы контроля режима стерилизации. Контроль стерильности.
Контроль работы паровых и воздушных стерилизаторов осуществляют физическим, химическим и бактериологическим методами.
Физический метод контроля работы стерилизаторов осуществляется с помощью температуры и давления.
Химический метод контроля работы стерилизаторов осуществляется с помощью химических тестов и термохимических индикаторов, изменяющих свое агрегатное состояние и цвет при достижении определенного для него плавления:
для паровых стерилизаторов используется мочевина (карбамид) с розовым красителем температура плавления 132 градуса Цельсия
бензойная кислота с фуксином — температура плавления 120°С; термоиндикаторная бумага, изменяющая свой цвет под воздействием определенной температуры (l20°C-130)
для воздушных стерилизаторов: тиомочевина (тиокарбамид) без красителя, температура плавления 180°С, а также янтарная кислота, температура плавления которой 180°С
термоиндикаторная бумага изменяет свой цвет при температуре 180°С.
Бактериологический (биологический) метод контроля стерильности проводят один раз в месяц. Контроль
может свидетельствовать об инфицировании стерилизуемых объектов и указать на вид микробной флоры. Результаты посевов попучают через 48-72 часа