- •Biochimie
- •Partie 1
- •Биологическая химия
- •Часть 1
- •Table des matières
- •I. La partie théorique l'objet de la biochimie
- •1. La chimie des protéines
- •1.1. Les méthodes d` élimination et d`épuration des protéines
- •1.2. Les fonctions des protéines
- •1.3. La composition acido-aminée des protéines
- •1.4. L`organisation structurale des protéines
- •1.5. Les propriétés physico-chimiques des protéines
- •1.6. La classification des protéines
- •1.6.1. Les protéines simples
- •1. Les albumines et les globulines.
- •2. Les protamines et les histones.
- •3. Les prolamines et les glutélines.
- •1.6.2. Les protéines complexes
- •2. Les enzymes
- •2.1. La nature chimique des enzymes
- •2.2. Le mécanisme de l`action des enzymes
- •2.3. La cinétique des réactions enzymatiques
- •2.4. Les propriétés des enzymes
- •2.5. La régulation de l`activité des enzymes
- •1. Le contrôle de la quantité de l`enzyme.
- •2. Le contrôle de l'activité de l`enzyme.
- •2.1. L'influence des activateurs et des inhibiteurs aux enzymes.
- •2.2. La modification chimique de l`enzyme.
- •2.3. La régulation allostérique.
- •2.6. La classification et la nomenclature des enzymes
- •L`oxydation la réduction
- •Acide palmitique
- •Tripalmitine
- •2.7. Les enzymes dans la médecine
- •2. Les enzymopathies acquises.
- •3. Les vitamines
- •3.1. Les vitamines liposolubles
- •3.2. Les vitamines hydrosolubles
- •4. Les principes essentiels de l'organisation des biomembranes
- •4.1. La structure et les fonctions des membranes
- •1. Les phospholipides (jusqu'à 90 %) – les phosphoacylglycérols et les sphingolipides:
- •La phosphatidylcholine
- •Le céramide
- •Le galactosilcéramide
- •Uniport
- •Symport
- •Antiport
- •Contransport
- •2. La diffusion facilitée.
- •5. Les mécanismes de la transduction du signal hormonal
- •Ribosome Cytoplasme Hormone stéroïde Protéine arNm noyau Récepteur adn
- •6. L`introduction au métabolisme
- •6.1. La voie totale du catabolisme
- •6.2. La bioénergétique
- •6.3. L`organisation et le fonctionnement de la chaîne respiratoire
- •6.4. Le découplage de l`oxydation et de la phosphorylation
- •Dnp dnph membrane
- •6.5. La génération des radicaux libres dans la cellule
- •6.6. Les réaction de la voie totale du catabolisme
- •6.6.1. La décarboxylation oxydative de l`acide pyruvique
- •6.6.2. Le cycle des acides tricarboxyliques
- •Succinate
- •Fumarate
- •Succinatedéshydrogénase
- •Fumarate
- •Fumarate
- •7. Le métabolisme des glucides
- •7.1. La digestion des glucides
- •7.2. L`échange du glycogène
- •7.3. La glycolyse
- •7.4. L`incorporation de la fructose et du galactose à la glycolyse
- •7.5. Les mécanismes de navette
- •7.6. Le cycle de Cori
- •7.7. La fermentation alcoolique
- •7.8. La voie des pentoses phosphates de la transformation du glucose
- •Xylulose-5-phosphate
- •Isomérase
- •7.9. La néoglucogenèse
- •7.10. La régulation du métabolisme glucidique
- •Phosphoénolpyruvate → pyruvate (glycolytique)
- •Pyruvate → oxaloacétate → phosphoénolpyruvate
- •7.11. Les troubles du métabolisme glucidique
- •Maladies liées aux troubles métaboliques du glycogène
- •L`hyperglycémie et l`hypoglycémie
- •La glycosurie
- •2. Les réactions colorées sur les protéines
- •2.1. La réaction de Millone
- •2.2. La réaction d'Adamkevitche
- •2.3. La réaction ninhydrique
- •2.4. La réaction de Choultse – Raspajle
- •3. Les réactions de la précipitation des protéines
- •3.1. La précipitation des protéines pendant la chauffage
- •3.2. La précipitation des protéines par les sels des métaux lourds
- •3.3. La précipitation des protéines par les acides concentrés minéraux
- •3.5. La précipitation des protéines par les acides organiques
- •1.3. La détermination du point isoélectrique de la caséine
- •2.4. La preuve de la présence de l'hydrate de carbone dans l'albumine d'oeuf
- •1.2. La réaction avec le diphénylamine
- •2. Les chromoprotéines
- •2.1. L'essai benzidinique sur le groupement héminique de l'hémoglobine
- •Le travail 4. Les enzymes
- •1. La découverte de la peroxydase dans la pomme de terre
- •2. La découverte de la pepsine dans le suc gastrique
- •3. L'hydrolyse de l'amidon par α – amylase du salive
- •4. Le trait spécifique de l'action des enzymes de l’amylase et de la saccharase
- •Le travail 5. La détermination de l'activité des enzymes
- •1. L'action des activateurs et des inhibiteurs
- •2. La détermination de l'activité de α – amylase du salive selon Volguemoute
- •Le travail 6. Les vitamines l'expérience 1. Les réactions qualitatives sur la vitamine a
- •1.1. La réaction avec le chlorure de l’antimoine (III)
- •1.2. La réaction avec l'acide sulfurique (la réaction de Droummond)
- •L'expérience 6. La réaction qualitative sur la vitamine в (le ribophlavine)
- •L'expérience 9. Les réactions qualitatives sur la vitamine c (acide ascorbique)
- •9.1. La coopération de la vitamine c avec к3[Fe(cn)6]
- •9.2. La réaction avec le bleu de méthylène
- •L'expérience 10. La détermination quantitative de l'acide ascorbique dans l'urine par la méthode de Tilmanse
- •2. La comparaison des redox-potentiels du ribophlavine et du bleu de méthylène
- •3. La détermination de la catalase selon a.N. Bach et a.I. Oparine
- •Le travail 8. Le métabolisme des glucides l'expérience 1. La détermination quantitative de l'activité de l’amylase dans le sérum du sang
- •L’expérience 2. La détermination quantitative de l’acide piruvique dans l'urine
- •L'expérience 3. Le diagnostic rapide des pathologies du métabolisme glucidique
- •3.1. La réaction de Trommer avec l’hydroxyde du cuivre
- •3.2. La révélation de la fructosirie par l’essai de Selivanov
- •3.3. La méthode enzymatique de la détermination semi-quantitative du glucose dans l'urine à l'aide de la raie de test "glucophan"
- •Littérature
Le travail 5. La détermination de l'activité des enzymes
1. L'action des activateurs et des inhibiteurs
sur α – amylase du salive
Dans la première éprouvette on verse 0,5 ml de 1 % de la solution du chlorure du sodium, à deuxième – 0,5 ml de 1 % de la solution du sulfate du cuivre, à troisième – 0,5 ml de l'eau distillée. À toutes les éprouvettes on ajoute selon 1 ml de 0,5 % de la solution de l'amidon et selon 1 goutte du salive dilué par l'eau (1:5). On mélange le contenu des éprouvettes par la secousse, on les place au thermostat aquatique avec la température 37 °С. Dans les intervalles à 1-2 minutes des éprouvettes on prend les essais et on fait avec eux la réaction avec la solution de l'iode dans l'iodure du potassium. On passe l'hydrolyse jusqu'au stade de l’érythrodextrine. On marque le temps (en minutes) les apparitions de l’érythrodextrine. On fait la conclusion sur l'action (l'activateur, inhibiteur) des additions étudiés.
2. La détermination de l'activité de α – amylase du salive selon Volguemoute
La méthode est fondée sur l'établissement de la dilution limite de la solution α-amylase pendant laquelle dans les conditions définies une désagrégation de la quantité donnée d'amidon jusqu'à l’érythrodextrine se réalise. On peut se servir de la méthode de Volguemoute pour la définition approximative de l'activité α – amylase dans le jus pancréatique, le sang, l'urine et d'autres liquides biologiques.
On place 1 ml du salive à l'éprouvette, on ajoute 9 ml de l'eau distillée et on mélange. On reçoit la solution du salive 1:10.
Dans 10 éprouvettes numérotées on verse selon 1 ml l'eau. À la première éprouvette on apporte 1 ml du salive dilué en 10 fois et on mélange par la voie de l'aspiration triple et l’évacuation du liquide du compte-gouttes. Puis on transfère 1 ml du liquide de la première éprouvette à la deuxième éprouvette en mélangeant le contenu, comme indiqué ci-dessus. 1 ml du liquide de la deuxième éprouvette on transfère à la troisième éprouvette et etc. De la dixième éprouvette après le melange 1 ml du liquide on éloigne.
À toutes les éprouvettes, à partir de dixième, on ajoute selon 2 ml de 0,1 % de la solution de l'amidon, on mélange le contenu. On place les éprouvettes au thermostat à 37 °С pour 30 minutes.
Dans 30 minutes on refroidit les éprouvettes et on ajoute à chacune selon 1 goutte de la solution de l'iode dans l'iodure du potassium. On marque l'éprouvette dans laquelle il y avait une désagrégation de l'amidon jusqu'à l’érythrodextrine donnant avec l'iode la peinture roux foncée. On exprime l'activité de α-amylase par la quantité de millilitres de 0,1 % de la solution de l'amidon qui peut désagréger 1 ml du salive non dilué à 37 °С pendant 30 minutes jusqu'au stade de l’érythrodextrine.
L'exemple: si la coloration roux foncée est marquée dans la quatrième éprouvette, où le salive est dilué en 160 fois, 1 ml du salive non dilué désagrégerait en 160 fois de la solution de l'amidon. Donc, 1 ml du salive non dilué désagrège en 30 minutes à 37 °С:
2160 = 320 ml 0,1% de la solution de l'amidon. Conventionnellement on accepte cela pour 320 unités de α-amylase selon Volguemoute:
А 37°/30' = 320 unités.
Les questions de contrôle
1. Qu'est-ce que c'est les activateurs et les inhibiteurs des enzymes?
2. Comment on peut étudier l'influence des activateurs et des inhibiteurs sur l'action de l’enzyme?
3. L’enzyme acétylcholinésthérase catalise l'hydrolyse de l'acétylcholine – du neuromédiateur, détachant dans les synaps des nerfs cholinérgetiques. Les produits de sa désagrégation – l'acétate et la choline – ne sont pas capables d'agir comme les neuromédiateurs. L'hydrolyse de l'acétylcholine s'interrompt par le calimine – la préparation médicale utilisée aux violations motrices après les traumas, les paralysies, dans la période de relèvement après la poliomyélite transférée, de l'encéphalite etc. L’inhibition de l’acétylcholinésthérase est reflétée par le chéma suivant:
Comparez les formules structurales de l’inhibiteur et du substrat. Pourquoi on peut supposer que l’inhibiteur se lie au centre actif de l’enzyme? Comment sous l'action du calimine changera la tenue de l'impulsion nerveuse (augmentera, diminuera, ne changera pas)?
