- •Предисловие
- •4 Практикум по фармакогнозии
- •6 Практикум по фармакогнозии
- •Условные сокращения
- •8 Введение
- •1 0 Введение
- •Монография на лекарственное растительное сырье в PhEur.
- •1 2 Введение
- •1 4 Введение
- •Фармакогностические методы анализа
- •Общие требования к фармакогностическому анализу
- •1 6 Введение
- •1 8 Введение
- •Растворители, часто применяемые в фитохимическом анализе
- •2 2 Введение
- •Хроматографические методы фармакогностического анализа
- •2 6 Введение
- •2 8 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Работа в лаборатории
- •Листья — Folia (гф хi, вып.1, с. 252)
- •Цветки — Flores (гф хi, вып. 1, с. 257)
- •Контрольные вопросы
- •Микроскопический анализ лрс
- •3 2 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •3 4 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Работа в лаборатории
- •3 6 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Контрольные вопросы
- •Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •4 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •4 4 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Контрольные вопросы
- •Макро? и микроскопический анализ лрс, содержащего полисахариды
- •Корни алтея — Radices Althaeae
- •4 8 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Основные отличия алтея лекарственного и алтея армянского
- •5 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Трава алтея лекарственного — Herba Althaeae officinalis
- •Листья подорожника большого — Folia Plantaginis majoris
- •Семена подорожника блошного — Semina Psyllii
- •Листья мать?и?мачехи — Folia Farfarae (Folia Tussilaginis farfarae)
- •5 8 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Семена льна — Semina Lini (Semina Lini usitatissimi)
- •6 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Слоевища ламинарии (морская капуста) — Thalli Laminariae
- •Ные, волнистые.
- •Контрольные вопросы
- •Анализ жирных масел
- •6 6 Тема 3. Липиды
- •7 2 Тема 3. Липиды
- •7 4 Тема 3. Липиды
- •Приготовление смеси веществ, применяемых для калибровки*
- •7 6 Тема 3. Липиды
- •Контрольные вопросы
- •8 0 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Листья брусники — Folia Vitis idaeaе
- •Трава фиалки — Herba Violae
- •8 8 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Корневища и корни родиолы розовой — Rhizomata et radices Rhodiolae roseae
- •9 0 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Кора ивы — Cortex Salicis
- •9 2 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Трава эхинацеи пурпурной — Herba Echinaceae purpureae
- •Корневища щитовника мужского (папоротника мужского) — Rhizomata Filicis maris
- •9 4 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Контрольные вопросы
- •Кумарины
- •9 8 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Химический анализ лрс, содержащего кумарины
- •1 0 2 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Плоды амми большой — Fructus Ammi majoris
- •1 0 4 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Плоды пастернака — Fructus Pastinacae sativae
- •Корневища с корнями дудника обыкновенного — Rhizomata cum radicibus Angelicae
- •1 0 6 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Листья смоковницы обыкновенной (инжира) — Folia Fici caricae
- •1 0 8 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Хромоны
- •1 1 0 Фенольные соединения. Тема 6. Хромоны
- •1 1 2 Фенольные соединения. Тема 6. Хромоны
- •25 Мл раствора фильтруют и измеряют оптическую плотность на фото-электроколориметре в кювете с толщиной слоя 10 мм при длине волны 465 нм.
- •Контрольные вопросы к темам «кумарины и хромоны»
- •Ксантоны и лигнаны
- •1 1 6 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •1 1 8 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •5 Мл элюата прибавляют 5 мл спиртового раствора алюминия хлорида
- •Плоды расторопши — Fructus Silybi
- •1 2 0 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •Корневища и корни элеутерококка — Rhizomata et radices Eleutherococci
- •Корневища с корнями подофилла — Rhizomata cum radicibus Podophylli
- •1 2 4 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •Контрольные вопросы
- •Флавоноиды
- •1 2 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •1 2 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •1 3 0 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Контрольные вопросы
- •Макро? и микроскопический анализ лрс, содержащего флавоноиды
- •Бутоны софоры японской — Alabastrae Sophorae japonicae
- •Отличительные признаки софоры японской и сходных видов
- •Плоды софоры японской — Fructus Sophorae japonicae
- •1 См, шириной 0,4—0,7 см; большая часть семян недоразвита. Запах отсут-ствует. Вкус горький.
- •Цветки василька синего — Flores Centaureae cyani
- •1 3 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Плоды аронии черноплодной свежие — Fructus Aroniae melanocarpae recentes
- •Трава пустырника — Herba Leonuri
- •1 3 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Отличительные признаки видов пустырника и сходных видов
- •Трава горца перечного (водяного перца) — Herba Polygoni hydropiperis
- •Отличительные признаки горца перечного и сходных с ним видов
- •Трава горца почечуйного — Herba Polygoni persicariae
- •Трава горца птичьего (спорыша) — Herba Polygoni avicularis
- •1 4 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Трава сушеницы топяной — Herba Gnaphalii uliginosi
- •1 4 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Цветки бессмертника песчаного — Flores Helichrysi arenarii
- •Цветки пижмы — Flores Tanaceti
2 2 Введение
Единицы объема: литр (л) = 1000 см3, миллилитр (мл) = 1 см3, микро-литр (мкл) = 0,001 см3.
Единицы давления: килопаскаль (кПа), паскаль (Па).
некоторых случаях используется единица давления, не входящая в сис-тему СИ: миллиметр ртутного столба (мм рт.ст.) ≈ 133 Па.
Хроматографические методы фармакогностического анализа
Хроматографические методы получили широкое распростране-ние в фитохимии благодаря эффективности, простоте эксперимента, селек-тивности, экспрессности, возможности автоматизации и сочетания с други-ми физико-химическими методами. Особенностью хроматографических ме-тодов является универсальность, т. е. возможность использовать их для разделения и идентификации твердых, жидких и газообразных природных соединений. Особая ценность заключается в возможности эффективно разде-лять соединения с близкими свойствами, проводить не только качествен-ный, но и количественный анализ исследуемых объектов.
При классификации хроматографических методов учитывают природу подвижной и неподвижной фаз, механизм взаимодействия между фазой и разделяемыми веществами, технику эксперимента (табл. 9).
Т а б л и ц а 9
Классификация хроматографических методов
Бумажная хроматография (БХ). В распределительной хроматографии на бумаге разделение веществ происходит вследствие различия в распределении между двумя жидкими фазами, одна из которых подвижна (как правило, это смесь органических растворителей), а другая — неподвижна и представляет
Фармакогностические методы анализа |
2 3 |
|
|
|
|
|
|
|
собой воду, находящуюся в волокнах хроматографической бумаги. Перед хро-матографированием растворы анализируемых веществ наносят на бумагу.
Принципы и применение методов тонкослойной, газовой и жидкостной хроматографии в фармацевтическом анализе описаны в Государственной фармакопее Украины.
Тонкослойная хроматография (ТСХ). В тонкослойной хроматографии адсорбентом служит тонкий, равномерный слой (обычно толщиной около 0,24 мм) сухого мелкоизмельченного материала, нанесенного на стеклян-ную пластинку, алюминиевую фольгу или пластмассовую пленку. Подвиж-ная фаза движется по поверхности пластинки под действием капиллярных сил. Хроматографический процесс зависит от адсорбента, его обработки
природы используемых растворителей. Во время хроматографирования плас-тинка находится в хроматографической камере (чаще всего изготовленной из стекла, чтобы можно было наблюдать движение подвижной фазы по плас-тинке), которая обычно насыщена парами растворителя. В качестве твердого носителя используют силикагель, кизельгур, окись алюминия, целлюлозу или ионообменную смолу. Тонкий слой можно пропитать буферными мате-риалами, чтобы получить кислый, нейтральный или основный слой. Перед использованием пластинки могут быть активированы посредством нагрева-
ния в термостате при температуре от 100 до 105 °С в течение 1 ч. Методика вертикального и горизонтального элюирования изложены в ГФУ (раздел 2.2.27)
Широкий диапазон различных слоев в сочетании с многообразием сис-тем растворителей дает почти неограниченную возможность изменять силу разделения веществ. Это делает тонкослойную хроматографию незаменимой в анализе растительного сырья и препаратов из него. Метод ТСХ эффекти-вен, легок в исполнении и не требует дорогостоящего оборудования.
испытаниях на подлинность ТСХ служит для сравнения поведения при-родных соединений в анализируемом ЛРС и стандартного образца, обычно аутентичного одному из действующих веществ в экстракте. Если оба вещества продвигаются во время хроматографического процесса на одинаковое рас-стояние и если оба вещества, смешанные и подвергнутые хроматографиро-ванию, движутся как единое вещество, можно предположить, что эти веще-ства идентичны. Это предположение может быть подтверждено повторением той же процедуры с использованием другой хроматографической системы. Если два вещества ведут себя идентично в трех совершенно различных систе-мах, предположение об их идентичности вполне обосновано.
Величина удерживания Rf является основной характеристикой разделения веществ, которая используется для установления подлинности. Она показы-вает положение зоны вещества на хроматографической пластинке (рис. 2).
На полученной хроматограмме отношение расстояния, пройденного на адсорбенте данным веществом, к расстоянию, пройденному передним кра-ем («фронтом») подвижной фазы, есть величина Rf, характерная для данного вещества в данной хроматографической системе. Отношение расстояний, пройденных испытуемым веществом и стандартным образцом, принимают за величину Rr.
Величину удерживания Rf рассчитывают по следующей формуле:
b
Rf = —a,
где a — расстояние от линии старта до линии фронта, пройденного системой растворителей, мм;
b — расстояние от линии старта до верхнего края пятна, мм;
a
— расстояние, пройденное фронтом
ра-створителей, мм; b — расстояние,
пройден-ное идентифицируемым веществом,
мм; c — расстояние, пройденное стандартным
веществом, мм
c — расстояние от линии старта до верх-него края пятна стандартного образца, мм.
На практике величины Rf могут значи-тельно варьировать в зависимости от конк-ретных экспериментальных условий. Надеж-ные результаты дает сравнение с аутентич-ным образцом, как описано выше, и именно эта методика используется для фармакопей-ных целей.
Для количественных измерений пятно мож-но удалить с пластинки, элюируя вещество подходящим растворителем, а затем опреде-лить его достаточно чувствительным методом, например спектрофотометрически (непосред-ственно либо после химической реакции).
|
В некоторых случаях количественную оценку |
|
|||
|
можно провести путем измерения интенсив- |
|
|||
|
ности пятна с помощью сканирующего ден- |
|
|||
|
ситометра и последующего сравнения этой |
|
|||
|
интенсивности |
с |
интенсивностями |
пятен |
|
|
стандартных образцов. Методы разделения |
|
|||
|
с применением ТСХ иногда могут быть усо- |
|
|||
Рис. 2. Схема хроматограммы: |
вершенствованы |
путем многократного хро- |
|
||
А — извлечение; |
матографирования |
(хроматограмме |
дают |
|
|
|
|
||||
В — стандартный образец;
высохнуть и вновь хроматографируют в той же системе), непрерывного хроматографи-рования (подвижная фаза непрерывно испа-ряется с верхнего края поверхности адсор-бента) или двухмерного хроматографиро-
вания (хроматограмме дают высохнуть, поворачивают под прямым углом
вновь хроматографируют, часто в иной системе растворителей, чем перво-начально).
Проявляющие, или хромогенные реактивы. Для определения положения не-окрашенного вещества на полученной хроматограмме обычно необходимо обрабатывать хроматограмму реактивом, который либо обугливает разделен-ные вещества, либо переводит их в окрашенные или флуоресцирующие про-изводные. Проявляющие реактивы для обнаружения разделенных веществ на-носят на пластинку посредством опрыскивания, обработки парами или по-гружения. Часто применяют и другой удобный метод: проводят хроматографию на пластинке, пропитанной веществом, сильно флуоресцирующим под воз-действием коротковолнового ультрафиолетового света. Площади на пластин-ке, занятые веществами, поглощающими при той же длине волны, выглядят как темные пятна на флуоресцирующем фоне.
Хроматографическая камера представляет собой емкость с пришлифо-ванной крышкой для обеспечения герметичности и с плоским дном или дном с двумя желобами из инертного прозрачного материала, соответствую-щими по размеру используемым полоскам бумаги или пластинкам. Для гори-зонтального элюирования хроматографическая камера имеет желоб для по-движной фазы и дополнительно содержит устройство для подачи подвижной фазы к неподвижной фазе.
Если нет других указаний, работу проводят в насыщенной камере. Для достижения таких условий стенки камеры выстилают фильтровальной бума-
Фармакогностические методы анализа |
2 5 |
|
|
|
|
|
|
|
гой и вливают количество подвижной фазы, достаточное для насыщения фильтровальной бумаги и образования слоя глубиной около 5 мм. Закрывают камеру и оставляют стоять не менее чем 1 ч при комнатной температуре.
Хроматографическая камера должна быть защищена от действия света, если предполагается, что исследуемые соединения могут быть светочувстви-тельными. В любом случае камеру защищают от прямых солнечных лучей, чтобы на пластинке не образовались области повышенной температуры и не нарушалось правильное перемещение подвижной фазы.
Вертикальное элюирование. Если нет других указаний в частной статье, хроматографическое разделение выполняют восходящим способом в насы-щенной атмосфере. Предпочтительно использовать такие подвижные фазы (системы), которые обеспечивают величины Rf в пределах от 0,3 до 0,7.
Методика. Наносят объем раствора, указанный в частной статье, в виде компактного пятна диаметром не более 4 мм либо в виде полосы (длиной от 5—10 и высотой от 1 до 2 мм). Для нанесения используют микропипет-ку, микрошприц или калиброванный капилляр. Пятно должно находиться на расстоянии около 1,5 см от нижнего края и отстоять не менее чем на 2 см от вертикальной стороны пластинки. Если на одной пластинке полу-чают несколько хроматограмм, пятна следует располагать на расстоянии не менее 1,5 см друг от друга на линии старта, параллельной нижнему краю бумаги или пластинки. Когда растворитель испарится, пластинку по-мещают в камеру, стараясь установить ее как можно точнее в вертикаль-ном положении; стартовые точки должны находиться выше уровня под-вижной фазы. Камеру закрывают и выдерживают при постоянной темпе-ратуре. Дают подвижной фазе подняться на предписанное расстояние, обычно на 10—15 см, вынимают пластинку, отмечают положение фронта растворителя, высушивают и обнаруживают пятна способом, указанным в частной статье.
Горизонтальное элюирование. Растворы анализируемых веществ наносят на хроматографическую пластинку. После испарения растворителей из нане-сенных проб в желоб хроматографической камеры вводят с помощью шпри-ца или пипетки достаточное количество подвижной фазы, помещают плас-тинку в камеру горизонтально и подсоединяют устройство для подачи под-вижной фазы в соответствии с инструкцией производителя. Если указано
частной статье, пластинку элюируют, начиная одновременно с двух кон-цов. Камеру закрывают и проводят хроматографирование при температуре от 20 до 25 °С. После того как подвижная фаза пройдет расстояние, указанное
частной статье, пластинку вынимают, сушат и обнаруживают пятна ука-занным способом.
Исследование и интерпретация хроматограмм. Хроматограммы изучают визуально в дневном и УФ-свете. Отмечают границы и окраску пятен. Изме-ряют и записывают расстояние от линии старта до верхней границы каждого пятна. Если указано в частной статье, то опрыскивают хроматограмму соот-ветствующим реактивом. Основное пятно на хроматограмме, полученной для испытуемого раствора, сравнивают визуально с соответствующим пятном на хроматограмме, полученной для раствора стандартного образца, сравнивая окраску (флюоресценцию в УФ-свете), размер и величину удерживания (Rf ) обоих пятен.
Проверка чувствительности. Чувствительность считается удовлетворитель-ной, если пятно или полоса четко обнаруживается на хроматограмме, полу-ченной с наиболее разбавленным раствором сравнения.
