- •Предисловие
- •4 Практикум по фармакогнозии
- •6 Практикум по фармакогнозии
- •Условные сокращения
- •8 Введение
- •1 0 Введение
- •Монография на лекарственное растительное сырье в PhEur.
- •1 2 Введение
- •1 4 Введение
- •Фармакогностические методы анализа
- •Общие требования к фармакогностическому анализу
- •1 6 Введение
- •1 8 Введение
- •Растворители, часто применяемые в фитохимическом анализе
- •2 2 Введение
- •Хроматографические методы фармакогностического анализа
- •2 6 Введение
- •2 8 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Работа в лаборатории
- •Листья — Folia (гф хi, вып.1, с. 252)
- •Цветки — Flores (гф хi, вып. 1, с. 257)
- •Контрольные вопросы
- •Микроскопический анализ лрс
- •3 2 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •3 4 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Работа в лаборатории
- •3 6 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
- •Контрольные вопросы
- •Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •4 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •4 4 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Контрольные вопросы
- •Макро? и микроскопический анализ лрс, содержащего полисахариды
- •Корни алтея — Radices Althaeae
- •4 8 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Основные отличия алтея лекарственного и алтея армянского
- •5 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Трава алтея лекарственного — Herba Althaeae officinalis
- •Листья подорожника большого — Folia Plantaginis majoris
- •Семена подорожника блошного — Semina Psyllii
- •Листья мать?и?мачехи — Folia Farfarae (Folia Tussilaginis farfarae)
- •5 8 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Семена льна — Semina Lini (Semina Lini usitatissimi)
- •6 0 Тема 2. Соединения с гликозидной связью: полисахариды и гликозиды
- •Слоевища ламинарии (морская капуста) — Thalli Laminariae
- •Ные, волнистые.
- •Контрольные вопросы
- •Анализ жирных масел
- •6 6 Тема 3. Липиды
- •7 2 Тема 3. Липиды
- •7 4 Тема 3. Липиды
- •Приготовление смеси веществ, применяемых для калибровки*
- •7 6 Тема 3. Липиды
- •Контрольные вопросы
- •8 0 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Листья брусники — Folia Vitis idaeaе
- •Трава фиалки — Herba Violae
- •8 8 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Корневища и корни родиолы розовой — Rhizomata et radices Rhodiolae roseae
- •9 0 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Кора ивы — Cortex Salicis
- •9 2 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Трава эхинацеи пурпурной — Herba Echinaceae purpureae
- •Корневища щитовника мужского (папоротника мужского) — Rhizomata Filicis maris
- •9 4 Фенольные соединения. Тема 4. Простые фенолы и их производные
- •Контрольные вопросы
- •Кумарины
- •9 8 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Химический анализ лрс, содержащего кумарины
- •1 0 2 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Плоды амми большой — Fructus Ammi majoris
- •1 0 4 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Плоды пастернака — Fructus Pastinacae sativae
- •Корневища с корнями дудника обыкновенного — Rhizomata cum radicibus Angelicae
- •1 0 6 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Листья смоковницы обыкновенной (инжира) — Folia Fici caricae
- •1 0 8 Фенольные соединения. Тема 5. Кумарины
- •Хромоны
- •1 1 0 Фенольные соединения. Тема 6. Хромоны
- •1 1 2 Фенольные соединения. Тема 6. Хромоны
- •25 Мл раствора фильтруют и измеряют оптическую плотность на фото-электроколориметре в кювете с толщиной слоя 10 мм при длине волны 465 нм.
- •Контрольные вопросы к темам «кумарины и хромоны»
- •Ксантоны и лигнаны
- •1 1 6 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •1 1 8 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •5 Мл элюата прибавляют 5 мл спиртового раствора алюминия хлорида
- •Плоды расторопши — Fructus Silybi
- •1 2 0 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •Корневища и корни элеутерококка — Rhizomata et radices Eleutherococci
- •Корневища с корнями подофилла — Rhizomata cum radicibus Podophylli
- •1 2 4 Фенольные соединения. Тема 7. Ксантоны и лигнаны
- •Контрольные вопросы
- •Флавоноиды
- •1 2 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •1 2 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •1 3 0 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Контрольные вопросы
- •Макро? и микроскопический анализ лрс, содержащего флавоноиды
- •Бутоны софоры японской — Alabastrae Sophorae japonicae
- •Отличительные признаки софоры японской и сходных видов
- •Плоды софоры японской — Fructus Sophorae japonicae
- •1 См, шириной 0,4—0,7 см; большая часть семян недоразвита. Запах отсут-ствует. Вкус горький.
- •Цветки василька синего — Flores Centaureae cyani
- •1 3 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Плоды аронии черноплодной свежие — Fructus Aroniae melanocarpae recentes
- •Трава пустырника — Herba Leonuri
- •1 3 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Отличительные признаки видов пустырника и сходных видов
- •Трава горца перечного (водяного перца) — Herba Polygoni hydropiperis
- •Отличительные признаки горца перечного и сходных с ним видов
- •Трава горца почечуйного — Herba Polygoni persicariae
- •Трава горца птичьего (спорыша) — Herba Polygoni avicularis
- •1 4 6 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Трава сушеницы топяной — Herba Gnaphalii uliginosi
- •1 4 8 Фенольные соединения. Тема 8. Флавоноиды
- •Цветки бессмертника песчаного — Flores Helichrysi arenarii
- •Цветки пижмы — Flores Tanaceti
3 6 Тема 1. Определение подлинности растительного сырья
Методика. 1. Поперечный срез или порошок сухого сырья помещают на предметное стекло, прибавляют один из реактивов и накрывают покровным стеклом. 2. Препарат помещают на предметное стекло, накрывают его по-кровным стеклом, а реактив капают рядом с покровным стеклом. Затем под-носят фильтровальную бумагу к противоположному углу стекла. При этом жидкость засасывается под стекло, а элементы клеток или клеточное содер-жимое вступает в химическое взаимодействие с реактивом. При использо-вании второго метода под микроскопом можно наблюдать за ходом реакции.
Природу клеточной оболочки можно установить реакциями на целлюло-зу и на лигнин (одревеснение).
Опыты 1—4. Целлюлоза (клетчатка). Поперечный срез или порошок (со-скоб) сухого сырья помещают на предметное стекло и прибавляют один из следующих реактивов:
а) хлор-цинк-йод — окрашивает клетчатку в сине-фиолетовый цвет; проб-ка и кутикула могут принимать окраску от желтой до коричневой;
б) йод с кислотой серной — окрашивает целлюлозу в синий цвет; окрас-ка интенсивнее, когда в клеточной оболочке больше целлюлозы и меньше других компонентов (лигнина, кутиноподобных веществ и др.);
в) аммиачный раствор меди (II) оксида — под его влиянием клетчатка медленно разбухает и растворяется, кутикула остается нерастворенной;
г) раствор Люголя (0,5 %-ный раствор йода в 1 %-ном растворе калия йодида) — окрашивает целлюлозу в желтый цвет.
Опыт 5. Одревесневшие или лигнифицированные клеточные стенки. Срез корня алтея помещают на предметное стекло в 1 %-ный спиртовый раствор флороглюцина. Реактив удаляют фильтровальной бумагой, а на срез наносят каплю кислоты хлористоводородной концентрированной и через 1 мин при-бавляют каплю глицерина. Срез накрывают покровным стеклом и изучают под микроскопом при м/у. Одревесневшие оболочки клеток приобретают вишневое окрашивание.
Опыт 6. Крахмал. Поперечный срез корня алтея помещают на предмет-ное стекло и добавляют 1—2 капли раствора Люголя.
Крахмальные зерна окрашиваются в сине-фиолетовый цвет. Для опреде-ления формы, типа и размеров крахмальных зерен препарат готовят в воде или 30 %-ном растворе глицерина.
Опыты 7—9. Слизь. Поперечный срез корня алтея или порошок семян льна помещают на предметное стекло и прибавляют один из перечисленных ниже реактивов.
Реакция с метиленовым синим. Срез помещают на несколько минут в спир-товый раствор метиленового синего (1:5000), затем переносят в глицерин. Слизь окрашивается в голубой цвет.
меди сульфатом и щелочью. Срез помещают на 5—10 мин в насыщен-ный раствор меди сульфата, промывают водой и переносят в 50 %-ный ра-створ калия гидроксида. Слизь окрашивается в голубой цвет (растения сем. мальвовых) или в зеленый (растения сем. лилейных), что указывает на раз-личие в химическом составе слизи.
Реакция с тушью. Порошок сырья помещают на предметное стекло в каплю свежеприготовленного раствора туши (1:10) и перемешивают иголкой. На темно-сером фоне выделяются беловатые клетки со слизью, не окрашенные тушью (слизь препятствует проникновению туши).
Опыт 10. Инулин. Реакция Молиша является общей на углеводы, но ею пользуются для обнаружения инулина в отсутствие крахмала (в основном
растений семейства сложноцветных). Обработка микропрепарата спиртом
Микроскопический анализ ЛРС |
3 7 |
|
|
|
|
|
|
|
усиливает формирование сферокристаллов инулина. Поперечный срез корня одуванчика или девясила помещают в 1—2 капли раствора α-нафтола (или тимола) и вводят 1 каплю кислоты серной концентрированной; появляется розово-фиолетовое окрашивание (α-нафтол) или карминово-красное (ти-мол). Крахмал вступает в указанные реакции, поэтому его присутствие надо исключить, проведя предварительно реакцию с йодом.
Опыт 11. Эфирное масло. Поперечный срез аира помещают на 2—3 мин
раствор судана III, а затем просматривают в воде или 30 %-ном растворе глицерина. Клетки, содержащие эфирное масло, окрашиваются в зеленый цвет.
Опыт 12. Жирное масло. Срез семян льна помещают на 2—3 мин в рас-твор судана III, затем реактив удаляют фильтровальной бумагой, а срез про-мывают 50 %-ным спиртом и переносят в глицерин. Капельки жирного масла окрашиваются в оранжево-красный цвет.
Опыт 13. Гидроксиантрахиноны. Поперечный срез коры крушины поме-щают на предметное стекло в каплю 5 %-ного раствора натрия гидроксида или аммония гидроксида, прибавляют каплю глицерина, накрывают покров-ным стеклом и наблюдают под микроскопом красное или фиолетово-крас-ное окрашивание тканей, в которых локализуются антраценпроизводные.
Опыт 14. Дубильные вещества. Поперечный срез коры дуба или ко-ры калины помещают в каплю 1 %-ного раствора железа (III) хлорида или 1 %-ного раствора железоаммониевых квасцов, реактив удаляют фильтро-вальной бумагой, на предметное стекло наносят каплю воды, глицерина или хлоралгидрата, накрывают покровным стеклом и наблюдают окрашивание препарата под микроскопом. Ткани, содержащие дубильные вещества, окра-шиваются в черно-синий или черно-зеленый цвет.
?
