- •Список сокращений
- •Введение
- •Глава 1. Химиотерапевтические препараты и их классификация
- •1.1.Химиотерапия, химиотерапевтические средства, химиотерапевтический индекс.
- •1.2. Классификация химиотерапевтических средств
- •Глава 2. Синтетические противомикробные препараты
- •2.1. Характеристика синтетических противомикробных препаратов
- •2.1.1. Сульфаниламиды.
- •2.1.2. Хинолоны/фторхинолоны
- •2.1.3. Нитроимидазолы
- •2.1.4. Имидазолы
- •2.1.5. Нитрофураны – синтетические нитрофуранальдегиды.
- •2.1.6. Оксазолидиноны
- •Глава 3. Антибиотики и их классификация
- •3.1.1. Классификация антибиотиков по способу получения.
- •3.1.4. Классификация антибиотиков по спектру действия.
- •3.1.5 Классификация антибиотиков по направленности действия:
- •3.1.6 Классификация антибиотиков по механизму антимикробного действия:
- •1) Ингибиторы синтеза клеточной стенки микроорганизмов
- •2) Антибиотики, нарушающие молекулярную организацию и функции цитоплазматической мембраны (цпм )
- •3) Антибиотики, подавляющие синтез белка на уровне рибосом
- •4) Ингибиторы синтеза нуклеиновых кислот
- •3.2 Антимикробная активность. Определение, единицы действия антибиотика. Требования к антибиотикам
- •3.2.2 Требования к антибиотикам
- •3.3. Характеристика основных групп антибиотиков.
- •3.3.1 Антибиотики группы пенициллинов
- •3.3.2 Антибиотики группы цефалоспоринов
- •3.3.3 Антибиотики группы гликопептидов
- •3.3.4. Антибиотики группы аминогликозидов
- •3.3.5. Антибиотики группы тетрациклинов
- •3.3.6. Антибиотики группы макролидов
- •3.3.7.Антибиотики группы линкозамидов
- •3.3.8. Антибиотики группы левомицетина
- •3.3.9. Антибиотики группы рифамицинов
- •3.3.10. Антибиотики группы полипептидов
- •3.3.11. Антибиотики группы полиенов (противогрибковые препараты – антимикотики)
- •3.3.12. Противоопухолевые антибиотики
- •Глава 4. Осложнения антибиотикотерапии.
- •4.1. Осложнения, возникающие при приеме антибиотиков.
- •4.2. Методы изучения чувствительности человека к антибиотикам.
- •Глава 5. Устойчивость микробов к антимикробным препаратам.
- •5.1. Устойчивость бактерий к лекарственным препаратам
- •5.1.1. Механизмы природной устойчивости бактерий
- •5.1.2. Механизмы приобретённой устойчивости бактерий
- •5.2. Устойчивость вирусов к химиотерапевтическим препаратам
- •5.3. Пути преодоления лекарственной устойчивости.
- •Глава 6. Методы определения чувствительности микробов к антибиотикам
- •6.1. Дискодиффузионный метод. Постановка метода.
- •Анализатор антибиотикограмм дискодиффузионный «Адажио»
- •Глава 6.2 Метод диффузии в агар.
- •Глава 6.3 Метод серийных разведений.
- •6.3.1. Метод серийных разведений в жидкой среде.
- •6.3.2. Метод серийных разведений в плотной питательной среде
- •Современные методы определения чувствительности бактерий к химиотерапевтическим препаратам
- •6.5.2. Система Alamar
- •6.5.3. Генотипические методы
- •Глава 7. Комбинированное применение антибиотиков
- •7.1. Основные показания для комбинированной терапии
- •7.2 Предупреждение лекарственной устойчивости.
- •7.3. Основные недостатки комбинированной терапии.
- •8. Противотуберкулезные препараты.
- •9. Противолепрозные препараты.
- •10. Противовирусные препараты.
- •Применение синтетических противовирусных препаратов
- •11. Противогрибовые препараты.
- •12. Противопротозойные препараты
- •Ситуационные задачи
- •Тестовые задания для контроля знаний
- •Литература
6.1. Дискодиффузионный метод. Постановка метода.
Используют для оценки эффективности препаратов в клинических условиях. Для определения чувствительности методом диффузии в агар берут 18-20-часовую чистую культуру бактерий, выросших на плотной питательной среде. Затем из 5-10 изолированных колоний данной культуры готовят суспензию в физиологическом растворе в концентрации 1,5 х 108 колониеобразующих единиц (КОЕ) в 1 см3. Концентрацию бактерий оценивают с помощью стандарта мутности по оптической плотности. Оптическая плотность бактерий с концентрацией 1,5 х 108 равна 5 или 10 единицам.
Далее 1-2 мл взвеси микробов сразу после приготовления сеют на поверхность агаровой среды, равномерно распределяя путем покачивания чашки. Избыток жидкости удаляют пипеткой. Чашки подсушивают приоткрытыми при комнатной температуре в течение 10-15 минут.
Затем на поверхность засеянной питательной среды стерильным пинцетом наносят диски, пропитанные антибиотиками, на одинаковом расстоянии друг от друга, приблизительно на расстоянии 2 см от края чашки (не более 6 дисков на чашку).
Использование распределителя дисков делает процедуру нанесения дисков менее трудоемкой, корректно располагает диски как по отношению друг к другу, так и к краям чашки Петри, а также исключает такие проявления «человеческого» фактора, как сдвигание диска, неравномерное прижатие и т.д. Для решения большинства прикладных задач лучше всего подходит 7-дисковый диспенсер, наносящий 6 дисков по периметру чашки диаметром 90 мм и один в центре.
Чашки ставят в термостат при 35-37 ˚С у дном, на 24 часа.
После инкубации измеряют диаметры зон задержки роста микробов вокруг дисков, включая диаметр дисков до 1 мм. Иногда в зоне задержки роста могут быть обнаружены очень мелкие колонии, которые выявляются при определенных условиях освещения. На них не следует обращать внимания.
Края зон могут быть не резко очерчены, зоны могут иметь двойные контуры. В этих случаях диаметр зоны измеряют по наиболее четкому контуру. Если по периферии зоны имеются большие колонии, то границы зоны определяются внутренним краем колоний этой группы.
Если крупные колонии имеются по всей зоне, то, возможно, культура загрязнена, и анализ надо повторить. Если культура чистая, то наличие таких колоний позволяет думать о гетерорезистентной популяции.
При определении чувствительности к антибиотикам протеев, обладающих ползучим ростом, зона задержки роста может быть покрыта тонкой пленкой, которая не мешает определению диаметра зоны.
Оценку результатов проводят по таблице, в которой приведены пограничные значения диаметров зон задержки роста для устойчивых, умеренно чувствительных и чувствительных микроорганизмов и значений МПК (минимальная подавляющая рост концентрация антибиотика) для устойчивых и чувствительных штаммов.
Полученные результаты по измерению диаметров зон задержки роста исследуемых культур сопоставляют с пограничными значениями в таблице и относят к соответствующей категории чувствительности.
В лабораторной практике используют современные автоматические приборы - анализаторы, предназначенные для учета и оценки результатов дискодиффузионного метода, такие как «Адажио» и BIOMIC V3.
