- •© БашГу, 2013 содержание
- •Введение
- •Выделение нуклеиновых кислот
- •Выделение днк
- •Этап подготовки пробы биологического материала
- •Методы выделения днк
- •Основные этапы методов выделения днк
- •Выделение днк фенол-хлороформной экстракцией
- •Методика выделения днк методом фенол-хлороформной экстракции из лейкоцитов крови (Mathew c.C., 1984).
- •Выделение днк с помощью сорбента
- •Выделение днк с помощью бумажных фильтров
- •Выделение рнк
- •Выделение рнк из цельной крови
- •Методика выделения рнк из цельной крови (с использованием набор реагентов ооо нпф «Литех»):
- •Выделение рнк из тканей с использованием тризола
- •Количественный и качественный анализ нк
- •Полимеразная цепная реакция синтеза днк и ее модификации
- •Механизм, компоненты и методика проведения пцр Механизм пцр
- •Этапы пцр
- •Компоненты реакционной пцр-смеси
- •Основные принципы работы пцр-лаборатории
- •Рекомендации по оборудованию лаборатории
- •Рекомендации по подготовке к постановке пцр
- •Стандартная методика для проведения пцр
- •Методика проведения пцр
- •Проблема контаминации
- •2.2. Пцр в режиме реального времени
- •Принципы пцр в «реальном времени»
- •Различные типы пцр «в реальном времени»
- •Использование интеркалирующих агентов
- •Использование меченых флуоресцентными агентами олигонуклеотидных проб, комплементарных участку пцр-продукта
- •Выщепление 5' концевой метки (TaqMan Assay).
- •Использование зондов с комплементарными концевыми последовательностями (molecular beacons)
- •Применение 2-х зондов с резонансным переносом энергии (LightCycler assay)
- •Сравнение методов sybr Green и TagMan
- •Материально-техническое обеспечение (Используемое оборудование и материалы для проведения пцр «в реальном времени»)
- •Основные этапы работ
- •Базовые параметры реакции
- •Базовый протокол TaqMan амплификации
- •Проведение полимеразной цепной реакции в реальном времени
- •Способ учета результатов
- •Анализ результатов
- •Пример протокола реакции для амплификатора Bio-Rad cfx 96
- •Пцр с обратной транскрипцией
- •Протокол проведения процедуры обратной транскрипции
- •Электрофорез днк
- •Методика заливки агарозного геля
- •Определение концентрации и качества днк/мРнк в агарозном геле
- •Полиморфизм длины рестрикционных фрагментов (пдрф-анализ)
- •5. Анализ конформационного п олиморфизма однонитевой днк (sscp-анализ)
- •6. Секвенирование
- •Порядок подготовки образцов днк к секвенированию.
- •1Мкл буфер BigDye
- •Современные методы полногеномного секвенирования днк
- •5. Метод биочипов
- •Основные технологии производства днк-микрочипов
- •Оценка экспрессии генов с помощью днк микрочипов (на примере Affymetrix GeneChip)
- •Полногеномное генотипирование полиморфных локусов с помощью микрочипов высокой плотности (на примере Illumina Human610-Quad BeadChip)
- •Список использованной литературы
- •Приготовление рективов для выделения днк Приготовление лизирующего буфера
- •Приготовление Трис-нСl 2 m (pH 7,6)
- •Приготовление 0,5 м эдта (рН 8,0)
- •Приготовление Soline (эдта)
- •Приготовление 5 м NaCl
- •Приготовление 10% sds (додецил сульфат натрия)
- •Приготовление фенола
- •Компоненты и реактивы для прведения электрофореза днк
- •Приготовление реактивов, неоходимых при проведении sscp-анализа
- •Триплетный генетический код
- •Биолоические базы данных
Выделение днк
Для подготовки пробы к постановке ПЦР используют различные методики в зависимости от поставленных задач. Их суть заключается в экстракции (извлечении) ДНК из биопрепарата и удалении или нейтрализации посторонних примесей для получения препарата ДНК с чистотой, пригодной для постановки реакции амплификации. В качестве источника матричной ДНК может быть использован любой, даже деструктурированный биологический материал, сохранивший в своем составе достаточно полный набор фрагментов исходных молекул ДНК. Для специфической амплификации, наряду с очищенной ДНК, используют высушенные на фильтровальной бумаге пятна крови, небольшие кусочки тканей, например, такие как ворсины хориона, соскобы букальных клеток и смывы из полости рта, луковицы корней волос, культуры клеток и сливы среды с клеточных культур, содержащие неприкрепившиеся и не давшие роста клетки, соскобы с цитогенетических препаратов и длительно хранившиеся фиксированные ткани, полученные при паталогоанатомическом анализе. Иногда бывает достаточно прокипятить образец в течение 5-10 минут, однако в большинстве случаев требуются более трудоемкие методы.
Этап подготовки пробы биологического материала
На данном этапе должны выполняться общие требования, предъявляемые к взятию биологического материала и его транспортировке, строго соблюдаться температурный режим.
- кровь собирается в пробирки с антикоагулянтом (ЭДТА-этилендиаминтетрауксусная кислота, глюгицир), после взятия образца, пробирки необходимо перемешать, чтобы не допустить свертывания образца. Не встряхивать!
- цельная кровь должна быть охлаждена, но не заморожена;
- если ДНК из образцов ткани не может быть экстрагирована в ближайшие 48 часов, биологический образец должен быть заморожен до температуры -20оС…-80оС, либо подвергнут криозаморозке;
- повторение циклов замораживания-оттаивания не рекомендуется из-за возможности разрушения ДНК;
- исключить вероятность контаминации (загрязнения) собранного биологического материала.
Методы выделения днк
- экстракция с помощью органических растворителей (фенол-хлороформная экстракция);
- экстракция с помощью силики (диоксид кремния);
- экстракция с помощью гель-фильтрации;
- экстракция с помощью магнитных частиц;
- экстракция на микроцентрифужных колонках;
- экстракция с помощью ионной смолы (Chelex);
- экстракция на бумажных фильтрах.
Выбор методики зависит от поставленной задачи, времени анализа и степени очистки.
Основные этапы методов выделения днк
- лизис клеток;
- лизис ядра;
- удаление из полученного материала ингибиторов, инактивация клеточных нуклеаз;
- отделение искомых НК от клеточной массы;
- очистка и концентрирование ДНК.
Процедура лизиса включает:
- механическое разрушение (например, применение пестика, применение ультразвука, осмотическим шоком);
- химическая обработка (например, лизис с помощью детергентов, хаотропных агентов (веществ, способствующих нарушению трехмерной структуры макромолекул и их денатурации), или тиоловое восстановление).
- ферментативное расщепление белков (например, с помощью протеиназы К);
В зависимости от типа биологического материала лизис клеток осуществляется различными способами. Механическое разрушение наиболее часто используемый способ разрушения клеток биоматериала. В случае работы с растительными и бактериальными клетками возникает необходимость применения дополнительных компонентов для избавления от клеточной стенки (лизирующие ферменты, детергенты и т. д.). После разрушения образца возникает необходимость очистки нуклеиновых кислот от других компонентов клеток. Для этого существуют различные методы, основанные на специфических свойствах нуклеиновых кислот (НК). Наиболее часто используется очистка НК методом фенол-хлороформной экстракции, основанной на различной растворимости НК в растворителях разной природы.
