- •Лабораторная работа № 1-2.
- •Порядок выполнения работы
- •Ознакомление с рабочим местом лаборанта.
- •Лабораторная работа № 3-4
- •. Порядок выполнения работы
- •1 Окраска бактерий по методу Грама
- •Лабораторная работа №5
- •Порядок выполнения работы
- •Порядок выполнения работы
- •І. Краткие теоретические положения
- •Порядок выполнения работы
- •І. Краткие теоретические положения
- •Выделение чистой культуры анаэробов.
- •Порядок выполнения работы
Лабораторная работа № 1-2.
Тема: МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ЛАБОРАТОРИЯ. РАБОЧЕЕ МЕСТО ЛАБОРАНТА. ТЕХНИКА БЕЗОПАСНОСТИ. УСТРОЙСТВО МИКРОСКОПА И ПРАВИЛА РАБОТЫ С НИМ. ВИДЫ МИКРОСКОПИИ. ПРИГОТОВЛЕНИЕ ФИКСИРОВАННЫХ ПРЕПАРАТОВ БАКТЕРИЙ И ОКРАСКА ИХ ПРОСТЫМИ МЕТОДАМИ.
Цель работы: Знать правила поведения и технику безопасности в микробиологической лаборатории, уметь организовать рабочее место лаборанта. Изучить устройство светового биологического микроскопа и освоить правила работы с ним. Ознакомиться с различными видами микроскопии. Приобрести навыки по приготовлению фиксированных препаратов бактерий и освоить технику окраски препаратов бактерий простыми методами.
Оборудование, материалы: Микроскоп; бактериологические петли; предметные стекла; спиртовка; кристаллизационная чашка; чашки Петри; штатив с пробирками; иммерсионное масло; фильтровальная бумага; краска метиленовый синий; 96 %-ный этиловый спирт; лоток с рельсами для предметных стекол; чистые культуры бактерий, дисц. вода; пипетка; марлевые салфетки; муравьиный спирт; маркер по стеклу.
Порядок выполнения работы
На занятии студенты знакомятся с организацией рабочего места лаборанта, правилами поведения и техникой безопасности в микробиологической лаборатории. Знакомятся с устройством микроскопа и правилами работы с ним, видами микроскопии, основными особенностями их устройства и принципами их работы. Затем они осваивают технику отбора чистых культур микроорганизмов и методику приготовления фиксированных препаратов бактерий. Готовят фиксированные препараты из чистых культур (Staphylococcus albus, Sarsina flava) и естественных мест обитания (зубного налета). Далее окрашивают эти препараты простыми методами (чистые культуры и зубной налет – фуксином) и рассматривают их с использованием иммерсионной системы с объективом х90 или х100 при максимальном освещении.
Ознакомление с рабочим местом лаборанта.
Рабочие места в лаборатории должны быть постоянно оснащены всем необходимым для повседневной работы. Для работы необходимы спиртовка, бактериологическая петля, предметные и покровные стекла, банка с ватой и салфетками, пинцет, ножницы, скальпель; посуда с дезинфекционными растворами для пипеток и для отработанного материала, фиксаторы для мазков, спички маркеры, резиновые груши, 70% этиловый спирт для обработки рук, пробирки с изотоническим раствором натрия хлорида; микроскоп, иммерсионное масло, перчатки. Перед началом работы предметы на столе необходимо расположить так, чтобы середина стола была свободной. Дезинфекционные растворы, посуда для пипеток, посуда для отходов должны находиться справа от рабочего на расстоянии, которое позволяет работать с ними не вставая с рабочего места. Спиртовка должна находиться в центре стола на расстоянии 20-30 см от края стола. Объекты с посевами, незасеянные питательные среды располагают слева на одинаковом расстоянии со спиртовкой. Для окрашивания мазков создают специальное место, на котором необходимо иметь красители, спирт, песочные часы, промывалку с дисц. водой, лоток или кристаллизационную чашку с мостиком, пинцет, фильтровальную бумагу.
Правила поведения и техника безопасности в микробиологической лаборатории.
Во время выполнения работ в «заразной» или «условно заразной» зонах персонал должен работать в спецодежде: халат, шапочка, сменная обувь, перчатки; в боксе – в стерильной спецодежде: халат, шапочка, маска, бахилы, перчатки.
Рабочее место содержать в чистоте и порядке
На посуде с культурой должны быть четко написаны, название культуры, рег.номер, дата посева.
Запрещается переливать бульонных культур и материала, который исследуется, с одной посуды в другую, он переносится пипеткой так, чтобы не инфицировать горловину посуды.
В случае попадания патологического материала или культуры микроорганизмов на руки, стол их немедленно нужно обработать дез.средством.
Отработанный заразный материал, культуры микроорганизмов заливают дез.средством, обеззараживают в автоклаве или прожаривают на огне.
В лаборатории не допускают лишних движений и разговоров.
Все манипуляции проводят таким образом, чтобы избежать образования аэрозолей.
Категорически запрещается принимать пищу, пить воду, курить.
После завершения работы питательные среды с посевами помещают в термостат, культуру микроорганизмов в холодильник и опечатывают их; инструменты, приборы ставят на отведенные им места, стол протирают дез.средством, руки 70% этиловым спиртом и тщательно моют с мылом.
Персонал лаборатории должен иметь прививки против инфекций, возбудители которых могут быть в патологическом материале, который исследуется.
Техника отбора чистых культур микроорганизмов
Отбор проб чистых культур бактерий и дрожжей, которые вырастают на поверхности плотной среды в виде мазеобразного налета или в жидкой среде ведут в следующей последовательности:
Зажигают спиртовку.
Пробирку с культурой помещают в левую руку между большим и указательным пальцами в наклонном положении. Поверхность с налетом микроорганизмов должна быть обращена вверх и хорошо видна.
Петлю держат вертикально в пламени горелки и прокаливают докрасна, затем наклоняют и обжигают примыкающую к ней часть петледержателя.
Мизинцем и безымянным пальцем правой руки прижимают к ладони наружную часть ватной пробки, вынимают ее из пробирки и держа в таком положении, не касаясь окружающих предметов.
Края открытой пробирки обжигают в пламени горелки.
Осторожно вводят стерильную петлю в пробирку с культурой и охлаждают ее о стенки пробирки или прикоснувшись к питательной среде, свободной от микроорганизмов. Немного отстранив пробирку с культурой от пламени горелки, легким движением осторожно отбирают небольшое количество микробной массы с поверхности среды или каплю жидкости с клетками. Вынимая петлю из пробирки, следят за тем, чтобы отобранный материал не касался стенок и петля не оказалась над пламенем горелки.
Снова обжигают в пламени горелки край пробирки, затем, легким круговым движением, обжигают ватно-марлевую пробку и закрывают пробирку.
Пробирку с культурой ставят в штатив, а извлеченный материал используют для приготовления препарата.
Клетки микроорганизмов, оставшиеся не петле, сжигают в пламени горелки.
Отбор чистых культур микроскопических грибов ведут с использованием препаровальной иглы в той же последовательности, что и отбор одноклеточных организмов. Из пробирки отбирают кусочек мицелия, слегка погружая иглу в питательную среду таким образом, чтобы не нарушить структуру мицелия.
Приготовление препаратов фиксированных клеток
Фиксированными считают клетки микроорганизмов, в которых прерваны жизненные процессы, но полностью сохранена тонкая структура. Для получения фиксированных препаратов важно правильно подготовить предметные стекла. Они должны быть чистыми и тщательно обезжиренными. Для этого стекла, бывшие в употреблении, выдерживают 1-2 часа в хромовой смеси (в 1 л воды вносят 50 г бихромата калия и 100 г технической серной кислоты), после чего ополаскивают теплой водой и спиртом. Можно также кипятить стекла в течение 15 мин. в растворе соды или мыльной воды. Для проверки чистоты стекла на его поверхность наносят каплю воды. При достаточном обезжиривании капля растекается равномерно и не собирается в выпуклые, медленно высыхающие пузырьки. Берут стекла пинцетом или аккуратно за грани, так как пальцы оставляют на поверхности жирные пятна.
Приготовление фиксированных препаратов ведут в следующей последовательности:
На середину чистого обезжиренного предметного стекла стерильной петлей наносят небольшую каплю воды. В нее вносят исследуемый материал, отобранный по методике. Полученную суспензию равномерно распределяют по поверхности стекла тонким слоем таким образом, чтобы препарат распределился на площади примерно 2…3 см2.
Полученный мазок высушивают при комнатной температуре на воздухе.
Производят фиксацию мазка. Для этого стекло с высохшим мазком проводят 3-4 раза над пламенем горелки той стороной, где мазок отсутствует.
Цель фиксации:
умертвить клетки микроорганизмов и сделать их безопасными (что особенно важно при работе с патогенными микроорганизмами);
зафиксировать (закрепить) мазок на стекле (чтобы они не смывались при окрашивании);
улучшить окрашивание, поскольку мертвые клетки лучше адсорбируют на своей поверхности различные красители.
Приготовление фиксированных препаратов из естественных мест обитания микроорганизмов проводится так же, как и из чистых культур. Помимо термической обработки, применяют также фиксацию химическими веществами: погружают предметное стекло с мазком в мензурку с 96 %-ным этанолом на 15-20 мин, с ацетоном на 5 мин, со смесью 96 % -ного этанола и 40%-ного формалина (соотношение 95:5) на 2 мин. и др.
Окраска фиксированных препаратов микроорганизмов простыми методами
Фиксированные препараты нельзя рассмотреть под микроскопом, так как они являются бесцветными и пропускают световые лучи. Поэтому их окрашивают, используя простые или сложные методы. При окрашивании фиксированных мазков простыми методами используют один краситель (фуксин, краска Муромцева, генцианвиолет, метиленовая синь и др.). Последовательность окрашивания мазка простыми методами следующая:
На фиксированный препарат наносят несколько капель красителя таким образом, чтобы он покрывал всю поверхность мазка и выдерживают в течение определенного времени. Так, при окраске фуксином на мазок наносят несколько капель красителя и выдерживают его на мазке 2…3 мин.
Краску смывают с мазка слабой струей до бесцветной смывной воды. При этом стекло держат в наклонном положении над лотком.
Мазок подсушивают фильтровальной бумагой, которую осторожно прикладывают к стеклу, и досушивают на воздухе.
На окрашенный мазок наносят каплю иммерсионного масла и рассматривают препарат с объективом х90 или х100.
Оформление и анализ результатов исследований.
В отчете студенты должны кратко законспектировать теоретических материал. Наблюдаемые под микроскопом картины нужно зарисовать и сделать заключение о морфологии исследованных чистых культур, а так же микрофлоры кефира и зубного налета. Под рисунками необходимо указать увеличение и подписать название изучаемого объекта.
Зарисовать формы бактерий определенных при микроскопировании:
____________________________________ _______________________________________ _________________________________________
_______________________________________ _______________________________________ _______________________________________
____________________________________ _______________________________________ _________________________________________
_______________________________________ _______________________________________ _______________________________________
