- •1. Предмет, задачи и цели молекулярной биологии.
- •2. Химический состав нуклеиновых кислот.
- •3. Первичная структура нк
- •4.Открытие двойной спирали днк
- •5.Вторичная структура днк, правило э.Чаргаффа
- •6. Физико-химические свойства днк
- •7. Строение и свойства рнк
- •8. Матричные процессы синтеза биополимеров
- •9. Общая характеристика репликации
- •10. Белки и ферменты, участвующие в репликации днк
- •11. Инициация репликации, Ori-последовательность.
- •12. Терминация репликации
- •13. Репликация кольцевых молекул днк
- •14. Репликация теломерных концов днк
- •15. Явление обратной транскрипции
- •16. Репликативное метилирование днк
- •17. Репарация повреждений днк
- •Дезаминирование азотистых оснований.
- •Алкилирование.
- •18. Рекомбинация днк
- •19. Sos репарация
- •20. Мобильные генетические элементы и их типы про- и эукариот (транспозиция)
- •21.Мини-транспозоны
- •22. Амплификация фрагментов днк с помощью полимеразной цепной реакции
- •23. Определение нуклеотидной последовательности молекул днк, метод секвенирования Максомома-Гилберта, метод Сэнгера, секвенаторы.
- •24. Общая схема процесса транскрипции и характеристика его отдельных элементов
- •25. Инициация, элонгация и терминация транскрипции, промотор и терминатор.
- •Вопрос 26. Транскрипция у прокариот, строение оперонов на примере lac-оперона.
- •Вопрос 27 транскрипция эукариот
- •29. Особенности организации генов у прокариот и эукариот
- •30. Строение м-рнк
- •31)Процессинг рнк
- •32. Сплайсинг общая характеристика и механизмы
- •33. Модификация 5'- и 3'-концов транскриптов, кэп и полиА-хвост
- •34. Этапы расшифровки генетического кода
- •35)Эксперименты Ниренберга и Маттеи
- •36. Основные свойства генетического кода и кодового словаря
- •37. Общая схема процесса трансляции и характеристика его отдельных элементов.
- •У эукариот
- •Селекция инициаторной метионил-тРнк (Met-tRnAiMet)
- •Элонгация
- •Терминация
- •Компартментализация у эукариот
- •38. ТРнк: строение и свойства
- •39. ТРнк-синтетазы их фунуции и образование тРнк
- •Аминоацилирования
- •Механизм аминоацилирования
- •Безошибочность узнавания аминокислот[
- •Классификация
- •Доменная организация[
- •Технологические перспективы
- •40. Строение рибосом прокариот и эукариот
- •41. РРнк: строение и свойства
- •42. Этапы трансляции (инициация , элонгация, терминация) и их характеристика
- •1. Инициация
- •2. Элонгация
- •3. Терминация
- •43. Посттрансляционная модификация полипептидных цепей
- •44. Структура белков (первичная, вторичная, третичная и чевертичная)
- •1. Вторичная структура белков
- •2. Третичная структура белков
- •3. Конформационная лабильность белков
- •4. Денатурация белков
- •5. Факторы, вызывающие денатурацию белков
- •6. Медицинские аспекты конформационной
- •7. Применение денатурирующих агентов в биологических исследованиях и медицине
- •1. Супервторичная структура типа ?-бочонка
- •2. Структурный мотив "?-спираль-
- •3. Супервторичная структура в виде "цинкового пальца"
- •4. Супервторичная структура в виде "лейциновой застёжки-молнии"
- •1. Количество протомеров в структуре олигомерных белков
- •2. Сборка протомеров в олигомерный белок.
- •45. Фолдинг белков
- •46 Секреция белков у прокариот
- •47 Деградация белков
- •48 Передача информации через клеточную мембрану
- •49 Белковые домены, узнающие специфические последовательности днк
- •50 Сенсорные механизмы бактерий
- •51. Сенсорные механизмы эукариот
- •52. Проект «Геном человека» его этапы и значение
- •53. Геномика. Размеры, структура и особенности организации геномов различных групп организмов
23. Определение нуклеотидной последовательности молекул днк, метод секвенирования Максомома-Гилберта, метод Сэнгера, секвенаторы.
Первый прямой метод определения последовательности ДНК был предложен Ф. Сэнгером в 1975 г. Он основан на элонгации ДНК при помощи фермента ДНК-полимеразы. Этим способом была быстро сиквенирована короткая ДНК фага х174,
длиной 5,4 кб. Столь же мощный метод сиквенса ДНК был разработан А. Максамом и У. Гилбертом в 1977 г. в Гарвардском университете. С его помощью менее чем за год удалось установить последовательность ДНК для вируса sv-40 (5,2 кб) плазмиды рBR322 (4,3 кб).
Метод сиквенирования ДНК по Максамому-Гилберту заключается в следующем. Один из концов фрагмента ДНК, последовательность которого нужно прочитать (се-
квенировать) метят с помощью 32Р. Препарат меченой ДНК делят на четыре порции и каждую из них обрабатывают реагентом, специфически разрушающим одно
из четырех оснований ДНК. Условия реакции подбирают таким образом, чтобы на каждую молекулу ДНК приходилось лишь несколько повреждений. Когда эти повреждённые молекулы обрабатывают пиперидином, в ДНК образуется разрыв в том месте, где находилось разрушенное основание. В результате получается набор меченых фрагментов, длины которых определяются расстоянием от разрушенного основания до конца молекулы. Например, если остатки Г находятся на расстоянии
2, 6, 11 и 16 нуклеотидов от меченого конца, как в случае рассмотренном на рисунке выше, то обработка данной цепи ДНК реагентами, разрушающими Г, приведёт к образованию меченых фрагментов длиной 2, 6, 11 и 16 нуклеотидов (при этом, естественно образуются еще и фрагменты длинной 3 и 4 нуклеотида, но эти фрагменты расположенные между остатками Г будут не меченными). Наборы
меченых фрагментов, образующихся при каждой из четырёх реакций подвергают электрофорезу в соседних дорожках полиакриламидного геля, при этом происходит разделение фрагментов ДНК в соответствии с их размерами. Затем проводят радиоавтографию геля. Набор полос, регистрируемых на рентгеновской плёнке, «читают», определяя таким образом нуклеотидную последовательность ДНК.
Для анализа последовательностей ДНК широко используется также метод Сэнгера основанный на использовании дидезокси нуклеотидов. Для примера приводят радиоавтографию полиакриламидного геля, полученного в результате сиквенирования по методу Сэнгера небольшого фрагмента ДНК важного гена человека длиной 50 нуклеотидных пар. Исходя из электрофоретического спектра ДНК можно легко определить нуклеотидную последовательность данного фрагмента уже рассмотренным нами способом. В последние годы вместо радиоактивных меток
при анализе последовательностей ДНК используются флюорисцентное окрашивание.
Флюорисцентные красители разного цвета применяются для каждого из четырёх нуклеотидов и четыре смеси электрофорезируются вместе. Флюорисцентный анализ позволяет определять последовательность ДНК автоматически, что даёт возможность прочитывать более 1000 нуклеотидных пар за одну операцию.
