- •1. Предмет, задачи и цели молекулярной биологии.
- •2. Химический состав нуклеиновых кислот.
- •3. Первичная структура нк
- •4.Открытие двойной спирали днк
- •5.Вторичная структура днк, правило э.Чаргаффа
- •6. Физико-химические свойства днк
- •7. Строение и свойства рнк
- •8. Матричные процессы синтеза биополимеров
- •9. Общая характеристика репликации
- •10. Белки и ферменты, участвующие в репликации днк
- •11. Инициация репликации, Ori-последовательность.
- •12. Терминация репликации
- •13. Репликация кольцевых молекул днк
- •14. Репликация теломерных концов днк
- •15. Явление обратной транскрипции
- •16. Репликативное метилирование днк
- •17. Репарация повреждений днк
- •Дезаминирование азотистых оснований.
- •Алкилирование.
- •18. Рекомбинация днк
- •19. Sos репарация
- •20. Мобильные генетические элементы и их типы про- и эукариот (транспозиция)
- •21.Мини-транспозоны
- •22. Амплификация фрагментов днк с помощью полимеразной цепной реакции
- •23. Определение нуклеотидной последовательности молекул днк, метод секвенирования Максомома-Гилберта, метод Сэнгера, секвенаторы.
- •24. Общая схема процесса транскрипции и характеристика его отдельных элементов
- •25. Инициация, элонгация и терминация транскрипции, промотор и терминатор.
- •Вопрос 26. Транскрипция у прокариот, строение оперонов на примере lac-оперона.
- •Вопрос 27 транскрипция эукариот
- •29. Особенности организации генов у прокариот и эукариот
- •30. Строение м-рнк
- •31)Процессинг рнк
- •32. Сплайсинг общая характеристика и механизмы
- •33. Модификация 5'- и 3'-концов транскриптов, кэп и полиА-хвост
- •34. Этапы расшифровки генетического кода
- •35)Эксперименты Ниренберга и Маттеи
- •36. Основные свойства генетического кода и кодового словаря
- •37. Общая схема процесса трансляции и характеристика его отдельных элементов.
- •У эукариот
- •Селекция инициаторной метионил-тРнк (Met-tRnAiMet)
- •Элонгация
- •Терминация
- •Компартментализация у эукариот
- •38. ТРнк: строение и свойства
- •39. ТРнк-синтетазы их фунуции и образование тРнк
- •Аминоацилирования
- •Механизм аминоацилирования
- •Безошибочность узнавания аминокислот[
- •Классификация
- •Доменная организация[
- •Технологические перспективы
- •40. Строение рибосом прокариот и эукариот
- •41. РРнк: строение и свойства
- •42. Этапы трансляции (инициация , элонгация, терминация) и их характеристика
- •1. Инициация
- •2. Элонгация
- •3. Терминация
- •43. Посттрансляционная модификация полипептидных цепей
- •44. Структура белков (первичная, вторичная, третичная и чевертичная)
- •1. Вторичная структура белков
- •2. Третичная структура белков
- •3. Конформационная лабильность белков
- •4. Денатурация белков
- •5. Факторы, вызывающие денатурацию белков
- •6. Медицинские аспекты конформационной
- •7. Применение денатурирующих агентов в биологических исследованиях и медицине
- •1. Супервторичная структура типа ?-бочонка
- •2. Структурный мотив "?-спираль-
- •3. Супервторичная структура в виде "цинкового пальца"
- •4. Супервторичная структура в виде "лейциновой застёжки-молнии"
- •1. Количество протомеров в структуре олигомерных белков
- •2. Сборка протомеров в олигомерный белок.
- •45. Фолдинг белков
- •46 Секреция белков у прокариот
- •47 Деградация белков
- •48 Передача информации через клеточную мембрану
- •49 Белковые домены, узнающие специфические последовательности днк
- •50 Сенсорные механизмы бактерий
- •51. Сенсорные механизмы эукариот
- •52. Проект «Геном человека» его этапы и значение
- •53. Геномика. Размеры, структура и особенности организации геномов различных групп организмов
22. Амплификация фрагментов днк с помощью полимеразной цепной реакции
Метод полимеразной цепной реакции (ПЦР) был разработан Кэри Мюллисом и стал неотъемлемой процедурой, освоенной во всех генно-инженерных лабораториях мира. Использование ПЦР методики позволяет амплифицировать (размножать) ДНК или её фрагмент in vitro увеличивая количество копий в миллионы раз за несколько часов. ПЦР осуществляют в пробирке с помощью специального термостабильного фермента ДНК-полимераза (Tag-полимеразы), набора всех четырех нуклеотидов А, Т, Г и Ц и коротких олигонуклеотидных затравок – праймеров. Праймеры – это короткие, длиной в 20-30 нуклеотидов, одноцепочечные фрагменты ДНК, комплементарные 3’-концевым последовательностям копируемой ДНК-матрицы. Благодаря праймерам ограничивается фрагмент ДНК, который будет скопирован Tag-ДНК-полимеразой, присоединяющейся к 3’-концам праймеров и достраивающие их до заданной длины. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) протекает в три стадии.
1. Денатурация. Инкубационную смесь, в которой содержится образец нужной ДНК, нагревают до температуры 90С. При этом, в течении 15 секунд происходит разрушение слабых водородных связей между нитями ДНК, и из одной двухцепочечной молекулы образуется две одноцепочечные.
2. Гибридизация праймеров. Температуру снижают до 50С. При этом происходит гибридизация цепей ДНК с праймерами. Эта стадия обычно протекает 30 секунд.
3. Полимеризация. Инкубационную смесь нагревают до температуры 70С. При этой температуре Tag-полимераза удлиняет оба праймера с их 3’-концов. Праймеры дорастают до размеров матрицы. Этот процесс протекает в течении 90 секунд. В результате количество ДНК удваивается. Фермент Tag-полимераза была выделена из термофильных бактерий Thermus aquaticus, и отличается устойчивостью к высокой температуре. При температуре 70С гибрид праймер-ДНК не денатурирует, а Tag-полимераза способна работать с большой скоростью. За 20 циклов амплификации количество копий ДНК достигает величины 106.
В последние годы удалось создать специальный прибор–амплификатор, с помощью которого все три стадии размножения ДНК производятся автоматически, что превратило процесс ПЦР-амплификации конкретной последовательности ДНК в простую задачу.
За разработку метода полимеразной цепной реакции (ПЦР) в 1993г. Кэри Мюллис (K. Mullis) был удостоен звания лауреата Нобелевской премии. ПЦР технологии позволили ученым без огромных временных и материальных затрат получать точные данные по структуре генов и фрагментов ДНК при наличии самого минимального количества биологического материала. Одним из важнейших применений ПЦР стала диагностика наследственных заболеваний человека,
особенно на пренатальных стадиях развития при наличии малого количества ДНК из фетальных клеток. Вторым, не менее важным применением ПЦР технологий стала дактилоскопия и идентификация индивидуумов, используя материал ДНК, полученный из нескольких сперматозоидов, или одного волоса и, в некоторых случаях, даже из одного бластомера, выделенного из зародыша (пре-эмбриона) на стадии восьми зародышевых клеток.
