- •Введение
- •Раздел «Цитология» Занятие 1. Гистологическая техника
- •Правила техники безопасности в учебном процессе
- •Организация рабочего места студента – гистолога
- •Гистологическая техника для приготовления гистологических препаратов
- •Приготовление тотальных препаратов
- •Приготовление парафиновых и целлоидиновых срезов
- •Материалы и оборудование:
- •Техника изготовления препарата - мазка спермы:
- •Изготовление гистопрепаратов из эпителиальных клеток слизистой щеки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 2. Микроскопическая техника
- •Методы исследования
- •Механическая часть:
- •Оптическая часть:
- •Правила пользования микроскопом:
- •Типы микроскопов
- •Правила выполнения лабораторной работы
- •Материалы
- •Приготовление раствора гематоксилина
- •Приготовление эозина
- •Приготовление карбол-ксилола
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 3. Фиксаторы. Парафиновая, целлоидиновая, желатиновая проводки.
- •Фиксирующие средства и их применение
- •Простые фиксаторы
- •Фиксирующие смеси (сложные фиксаторы) и их применение
- •Промывание, обезвоживание и заливка гистологического материала
- •Промывание
- •Обезвоживание
- •Пропитывание и заливка
- •Заливка в парафин
- •Методика пропитывания
- •Заливка
- •Приготовление комбинированных парафиновых блоков
- •Заливка в целлоидин
- •Заливка в целлоидин - парафин
- •Заливка в желатину
- •Заливка в поливакс (карбовакс)
- •Подготовка гистологического материала и приготовление парафиновых срезов
- •Окрашивание срезов гематоксилин-эозином
- •Методика окрашивания гематоксилином и эозином целлоидиновых срезов
- •Окрашивание срезов для обзорных целей
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 4. Неклеточные структуры живого вещества
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 5. Формы клеток. Органоиды клеток.
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 6. Органеллы временного значения - включения.
- •Окрашивание жиров и липидов
- •Приготовление раствора красителя
- •Приготовление рабочих растворов
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 7. Практическое занятие
- •Техника приготовления ацетоорсеина или ацетокармина.
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 8. Деление клетки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 9. Коллоквиум по цитологии.
- •Вопросы к коллоквиуму №1 «Цитология»
- •Список основных терминов к разделу «Цитология»
- •Раздел «Общая гистология» Занятие 10. Эпителиальная ткань
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 11. Практическое занятие
- •Методы исследования крови и кроветворения
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 12-13. Ткани внутренней среды
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 14. Опорные ткани
- •Практическое задание
- •Окрашивание эластических волокон резорцин-фуксином Вейгерта
- •Обработка и окрашивание костной ткани
- •Декальцинация
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 15. Мышечные ткани.
- •Практическое задание Методы исследования мышечной ткани
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 16. Нервная ткань
- •Практическое задание
- •Окрашивание хроматофильной субстанции по методу Ниссля в модификации Майера
- •Импрегнация нейрофибрилл серебром по Бильшовскому - Грос в модификации Лаврентьева
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 17. Коллоквиум по общей гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму № 2 «Ткани»
- •Список основных терминов Тема «Эпителиальные ткани. Железы»
- •Тема «Соединительные ткани»
- •Тема «Мышечные ткани»
- •Тема «Нервная ткань»
- •Занятие 18. Зачет по цитологии и общей гистологии.
- •Занятие 19. Пищеварительная система.
- •Спланхнология
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 20. Дыхательная система.
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 21. Мочевыделительная система.
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 22. Системы органов размножения
- •Микропрепарат для изучения и зарисовки
- •Анатомический состав системы органов размножения самок:
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 23. Коллоквиум по частной гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму №1 по частной гистологии
- •Занятие 24. Сердечно-сосудистая система
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 25. Нервная система и органы чувств
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 26. Эндокринная система (железы внутренней секреции). Кожа и её производные.
- •Эндокринные железы и их гормоны
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 27. Коллоквиум по частной гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму № 2 по частной гистологии
- •Экзаменационные вопросы
- •Перечень экзаменационных препаратов
- •Список основной и дополнительной литературы
- •Содержание
- •Раздел «Цитология»
- •Раздел «Общая гистология»
- •Раздел «Частная гистология»
Практическое задание
Для исследования нервной ткани чаще всего используются методы выявления хроматофильной субстанции, импрегнация серебром и суправитальное окрашивание метиленовым синим. Для фиксации нервной ткани обычно применяют 4% (разведение 1:10) нейтральный формальдегид.
Окрашивание хроматофильной субстанции по методу Ниссля в модификации Майера
Приготовление раствора: 2,0г тионина и 1,0 г борной кислоты растворяют в 1000 мл дистиллированной воды, затем прибавляют несколько кристаллов тимола. Перед употреблением раствор фильтруют.
Методика окрашивания: 1) расправленные парафиновые срезы без наклейки на предметное стекло и без депарафини-рования переносят в раствор тионина на 24 ч, при этом срезы должны плавать на поверхности красителя; 2) срезы вылавливают на предметное стекло, затем высушивают в термостате при 37° С. Депарафинируют срезы и заключают в канадский бальзам.
Результат: ядрышко и хроматофильная субстанция цитоплазмы сине-фиолетового цвета.
Импрегнация нейрофибрилл серебром по Бильшовскому - Грос в модификации Лаврентьева
Этим методом выявляются клетки нервных ганглиев, нервные волокна и нервные окончания.
Приготовление растворов. 1. 20% раствор нитрата cеребра готовят из кристаллического серебра на бидистиллированной (дважды дистиллированной) воде. Раствор может быть приготовлен заранее и храниться в темном месте. Потемневший раствор не годен к употреблению.
Аммиачное серебро готовят перед употреблением. Для этого в чашечку (часовое стекло) наливают 5 мл 20% раствора нитрата серебра, добавляют по каплям 25% раствор аммиака при постоянном помешивании. Раствор аммиака добавляют до тех пор, пока образовавшийся вначале осадок не растворится.
Аммиачная вода готовится путем добавления 1 части аммиака к 2 частям дистиллированной воды.
20% раствор кислого формалина готовят на водопроводной воде.
Раствор хлорида золота получают, добавляя 1-2 капли 1% раствора хлорного золота к 1 мл дистиллированной воды.
Методика
импрегнации:
1) из фиксированного в нейтральном
формалине материала приготавливают в
криостате замороженные срезы толщиной
12-15 мкм и помещают в дистиллированную
воду; 2) срезы стеклянной палочкой с
загнутым концом (металлические
использовать нельзя) переносят из
дистиллированной поды в 20% раствор
нитрата серебра на 2-30 мин и более (время
устанавливают для каждого данного
объекта опытным путем); 3) проводят срезы
через 3-4 порции 20% раствора кислого
формалина до исчезновения помутнения;
4) прикоснувшись срезом (не снимая его
со стеклянной палочки) к фильтровальной
бумаге, удаляют лишнюю жидкость и
переносят срезы в раствор аммиачного
серебра. Пользуясь малым увеличением
микроскопа, непосредственно па часовом
стекле наблюдают, как в срезах, погруженных
в аммиачное серебро, выявляются
нервные элементы; 5) переносят срезы в
аммиачную воду на 10-15 мин; 6) промывают
срезы в нескольких порциях дистиллированной
воды до исчезновения запаха аммиака
(до нескольких часов); 7) далее следуют
обезвоживание в спиртах, помещение в
ксилол, заключение в бальзам. Нервные
элементы при
этом имеют темно-коричневый или черный
цвет, окружающие ткани - желтый или
золотисто-коричневый. При необходимости
убрать фон срезы после промывки в
дистиллированной воде помещают в
раствор хлорного золота до тех пор, пока
они не приобретут серый цвет. Затем их
переносят в 5% раствор гипосульфита и
промывают в нескольких порциях
дистиллированной воды. Нейрофибриллы
в результате становятся черными, а фон
– прозрачным.
При импрегнации серебром лабораторная посуда должна быть абсолютно чистой. Если фон импрегнируется слишком сильно, необходимо добавить 1-2 капли аммиака в аммиачное серебро, а в том случае, если срезы в аммиачном серебре быстро темнеют, следует уменьшить продолжительность обработки срезов 20% формалином.
Суправитальное окрашивание метиленовым синим. Этот метод применяется для окрашивания нервных волокон и нервных окончаний, а также нервных ганглиев.
Приготовление растворов. 1. Раствор Рингера-Локка. Для тканей млекопитающих используют раствор следующего состава: хлорид натрия (NaCl) – 6 г, хлорид калия (КСl) – 0,25 г, хлорид кальция (СаС12) – 0,25 г, бикарбонат натрия (Na2C03) – 0,25 г, глюкоза – 1,0 г, дистиллированная вода – до 1000 мл.
1% раствор метиленового синего. 1 г химически чистого мети-ленового синего растворяют в 100 мл раствора Рингера-Локка. Раствор может храниться.
Фиксирующий раствор молибдата аммония. Непосредственно перед употреблением 5-7 г молибдата аммония растворяют в 100 мл дистиллированной воды. Раствор фильтруют.
Методика окрашивания.
Введение раствора может осуществляться различными способами:
1) инъекцией в кровяное русло;
2) введением раствора в полость тела (в плевральную или брюшную);
3) инъекцией красящего раствора в соединительную ткань исследуемого органа;
4) помещением кусочка ткани непосредственно в раствор красителя. В зависимости от исследуемого объекта 1% раствор метиленового синего перед употреблением разводят в 2, 4, 6, 8 или 16 раз. Оптимальную концентрацию красителя для данного объекта следует найти эмпирически (на основе собственного опыта).
При проведении окрашивания путем инъекции красителя в кровяное русло предварительно раствором Рингера-Локка тщательно вымывают из сосудов кровь. Для этого подогретый до 37° С раствор вводят через канюлю либо в аорту (у мелких животных), либо непосредственно в артерию органа. 0,25-0,125% раствор метиленового синего, подогретый до 37° С, вводят в сосуд вплоть до появления в поверхностных частях органа микроскопически выявляемой окраски нервных элементов. Обычно инъекция продолжается 30- 40 мин. Затем, если объект плотный, маленькие кусочки органа помещают для докраски в чашку Петри, на дне которой находится фильтровальная бумага, смоченная 0,125% раствором метиленового синего, и наносят на поверхность объекта по каплям раствор красителя. Ход окрашивания контролируют при малом увеличении микроскопа, зажав небольшой кусочек органа между двумя предметными стеклами.
Окрашивание погружением объекта в краситель производится так же, как докрашивание, описанное выше. Метод погружения в краситель используют для окрашивания тонких объектов, например стенок полых органов.
Фиксация объекта производится немедленно после окрашивания м растворе молибдата аммония, охлажденного до 1-3° С. Фиксация проводится в холодильнике в течение 2-5 ч. Затем следует промывка в дистиллированной воде в течение 1-2 ч, причем воду сменяют несколько раз.
Перед заключением в бальзам пленочные препараты проводят через 96% и 100% спирты и ксилол. При необходимости приготовить срезы материал после окрашивания заливают в целлоидин.
Как пленочные препараты, так и срезы можно докрасить каким-либо ядерным красителем, например квасцовым кармином.
