- •Введение
- •Раздел «Цитология» Занятие 1. Гистологическая техника
- •Правила техники безопасности в учебном процессе
- •Организация рабочего места студента – гистолога
- •Гистологическая техника для приготовления гистологических препаратов
- •Приготовление тотальных препаратов
- •Приготовление парафиновых и целлоидиновых срезов
- •Материалы и оборудование:
- •Техника изготовления препарата - мазка спермы:
- •Изготовление гистопрепаратов из эпителиальных клеток слизистой щеки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 2. Микроскопическая техника
- •Методы исследования
- •Механическая часть:
- •Оптическая часть:
- •Правила пользования микроскопом:
- •Типы микроскопов
- •Правила выполнения лабораторной работы
- •Материалы
- •Приготовление раствора гематоксилина
- •Приготовление эозина
- •Приготовление карбол-ксилола
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 3. Фиксаторы. Парафиновая, целлоидиновая, желатиновая проводки.
- •Фиксирующие средства и их применение
- •Простые фиксаторы
- •Фиксирующие смеси (сложные фиксаторы) и их применение
- •Промывание, обезвоживание и заливка гистологического материала
- •Промывание
- •Обезвоживание
- •Пропитывание и заливка
- •Заливка в парафин
- •Методика пропитывания
- •Заливка
- •Приготовление комбинированных парафиновых блоков
- •Заливка в целлоидин
- •Заливка в целлоидин - парафин
- •Заливка в желатину
- •Заливка в поливакс (карбовакс)
- •Подготовка гистологического материала и приготовление парафиновых срезов
- •Окрашивание срезов гематоксилин-эозином
- •Методика окрашивания гематоксилином и эозином целлоидиновых срезов
- •Окрашивание срезов для обзорных целей
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 4. Неклеточные структуры живого вещества
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 5. Формы клеток. Органоиды клеток.
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 6. Органеллы временного значения - включения.
- •Окрашивание жиров и липидов
- •Приготовление раствора красителя
- •Приготовление рабочих растворов
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 7. Практическое занятие
- •Техника приготовления ацетоорсеина или ацетокармина.
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 8. Деление клетки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 9. Коллоквиум по цитологии.
- •Вопросы к коллоквиуму №1 «Цитология»
- •Список основных терминов к разделу «Цитология»
- •Раздел «Общая гистология» Занятие 10. Эпителиальная ткань
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 11. Практическое занятие
- •Методы исследования крови и кроветворения
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 12-13. Ткани внутренней среды
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 14. Опорные ткани
- •Практическое задание
- •Окрашивание эластических волокон резорцин-фуксином Вейгерта
- •Обработка и окрашивание костной ткани
- •Декальцинация
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 15. Мышечные ткани.
- •Практическое задание Методы исследования мышечной ткани
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 16. Нервная ткань
- •Практическое задание
- •Окрашивание хроматофильной субстанции по методу Ниссля в модификации Майера
- •Импрегнация нейрофибрилл серебром по Бильшовскому - Грос в модификации Лаврентьева
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 17. Коллоквиум по общей гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму № 2 «Ткани»
- •Список основных терминов Тема «Эпителиальные ткани. Железы»
- •Тема «Соединительные ткани»
- •Тема «Мышечные ткани»
- •Тема «Нервная ткань»
- •Занятие 18. Зачет по цитологии и общей гистологии.
- •Занятие 19. Пищеварительная система.
- •Спланхнология
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 20. Дыхательная система.
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 21. Мочевыделительная система.
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 22. Системы органов размножения
- •Микропрепарат для изучения и зарисовки
- •Анатомический состав системы органов размножения самок:
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 23. Коллоквиум по частной гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму №1 по частной гистологии
- •Занятие 24. Сердечно-сосудистая система
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 25. Нервная система и органы чувств
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 26. Эндокринная система (железы внутренней секреции). Кожа и её производные.
- •Эндокринные железы и их гормоны
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 27. Коллоквиум по частной гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму № 2 по частной гистологии
- •Экзаменационные вопросы
- •Перечень экзаменационных препаратов
- •Список основной и дополнительной литературы
- •Содержание
- •Раздел «Цитология»
- •Раздел «Общая гистология»
- •Раздел «Частная гистология»
Обработка и окрашивание костной ткани
Костная ткань по физическим свойствам занимает особое место среди тканей организма. Наличие в ее межклеточном веществе солей кальция придает ткани твердость, значительно затрудняющую приготовление гистологических препаратов, поэтому обработка костной ткани имеет свои особенности. Существует два основных способа получения гистологических препаратов:
1) приготовление срезов после специальной предварительной подготовки объекта, суть которой сводится к растворению и удалению из костной ткани неорганических солей (де кальцинация);
2) приготовление тонких костных пластинок (шлифов) из кусочков нефиксированной компактной кости путем стачивания последних.
Декальцинация
Прежде чем приступить к декальцинации, кость, как и любую ткань, необходимо подвергнуть фиксации. Выбор фиксатора зависит от целей и характера исследования. Так, для обзорных препаратов и выявления фибриллярных компонентов костной ткани применяют чистый формалин (15-20% раствор), в то время как для цитологических исследований предпочтительней сложные фиксаторы, также содержащие формалин, ибо он уменьшает степень набухания волокнистых структур при последующей обработке ткани (например, фиксатор Штиве: насыщенный водный раствор сулемы - 76 мл, формалин - 20 мл, ледяная уксусная кислота - 4 мл).
Для фиксации следует выпиливать лобзиком небольшие кусочки кости (толщиной 0,5-1 см), так как из-за высокой плотности ткани фиксатор проникает медленно. Срок фиксации зависит от толщины кусочка (не менее 48 часов).
По окончании фиксации объект тщательно промывают в проточной водопроводной воде или спирте (например, после сложных фиксаторов, содержащих сулему), так как при последующей обработке кислотами могут образоваться труднорастворимые осадки. После этого в целях обезжиривания препарат проводят через ряд спиртов повышающейся концентрации (50, 70 и 96°), а затем доводят до воды через спирты нисходящей концентрации.
Декальцинация достигается обработкой костной ткани с помощью декальцинирующих жидкостей, обладающих свойствами растворять неорганические соли, не повреждая структурные элементы кости.
При декальцинации следует придерживаться следующих основных правил:
1) применять большое количество декальцинирующей жидкости и сменять ее ежедневно (объем жидкости должен превышать объем объекта не менее чем в 50-70 раз);
декальцинируемый объект помещать в верхнем слое жидкости, чтобы обеспечить опускание на дно растворяющихся солей (подвешивание кусочков на нитке или в стеклянном сите);
проводить декальцинацию до полного удаления минеральных солей (но не передерживать материал в жидкостях, так как это приводит к набуханию фибрилл и ухудшению окрашиваемости структур).
Декальцинация считается полной тогда, когда объект становится мягким и режется ножом легко и без хруста. Ход процесса можно проверять по степени погружения и объект препаровальной иглы. Сгибать препарат и надавливать на него не рекомендуется, так как это приводит к повреждению тонких структур кости.
Декальцинация в водном растворе азотной кислоты (5-7,5%) является наиболее распространенным способом. Для приготовления рабочего раствора в мерную посуду наливают 5-7,5 мл химически чистой концентрированной азотной кислоты (удельный вес 1,40) и доливают до 100 мл дистиллированной водой (раствор можно готовить впрок в больших количествах, рассчитав общую потребность). Применять более низкие или более высокие концентрации раствора для декальцинации кости не рекомендуется, так как первые вызывают набухание, а вторые повреждение клеточных структур. Более высокие концентрации (до 10%) используют лишь для декальцинации зубов.
Налив нужное количество жидкости в подходящий стеклянный сосуд, в нее подвешивают подготовленный к декальцинации кусочек кости. Раствор сменяют ежедневно до наступления полной декальцинации. Срок декальцинации зависит от свойств объекта (плотность, величина) и концентрации азотной кислоты. Средняя –продолжительность декальцинации небольших кусочков компактной костной ткани 10-12 суток.
По окончании декальцинации для устранения набухания волокнистых структур препарат подвешивают на 24 часа в 5% раствор сернокислого натрия или лития (в случае отсутствия таких солей кость следует поместить в 96° спирт) и лишь после этого тщательно промывают в течение 1-2 суток в проточной водопроводной воде.
Можно сократить срок получения декальцинированной кости, поместив выпиленный кусочек непосредственно в 5% раствор трихлоруксусной кислоты, содержащей 10-20% формалина. Эта смесь одновременно фиксирует и декальцинирует. Маленький кусочек средней плотности можно декальцинировать за 3-5 дней. После декальцинации промывают в спирте (ни в коем случае не в воде!).
Существует ряд других способов декальцинации, но все они основаны на одном и том же принципе и требуют соблюдения вышеизложенных общих правил.
После декальцинации костную ткань можно резать на замораживающем микротоме, а также заливать в целлоидин или целлоидин-парафин обычным путем. Заливка я парафин не рекомендуется, так как он плохо пропитывает декальцинированную кость.
