- •Введение
- •Раздел «Цитология» Занятие 1. Гистологическая техника
- •Правила техники безопасности в учебном процессе
- •Организация рабочего места студента – гистолога
- •Гистологическая техника для приготовления гистологических препаратов
- •Приготовление тотальных препаратов
- •Приготовление парафиновых и целлоидиновых срезов
- •Материалы и оборудование:
- •Техника изготовления препарата - мазка спермы:
- •Изготовление гистопрепаратов из эпителиальных клеток слизистой щеки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 2. Микроскопическая техника
- •Методы исследования
- •Механическая часть:
- •Оптическая часть:
- •Правила пользования микроскопом:
- •Типы микроскопов
- •Правила выполнения лабораторной работы
- •Материалы
- •Приготовление раствора гематоксилина
- •Приготовление эозина
- •Приготовление карбол-ксилола
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 3. Фиксаторы. Парафиновая, целлоидиновая, желатиновая проводки.
- •Фиксирующие средства и их применение
- •Простые фиксаторы
- •Фиксирующие смеси (сложные фиксаторы) и их применение
- •Промывание, обезвоживание и заливка гистологического материала
- •Промывание
- •Обезвоживание
- •Пропитывание и заливка
- •Заливка в парафин
- •Методика пропитывания
- •Заливка
- •Приготовление комбинированных парафиновых блоков
- •Заливка в целлоидин
- •Заливка в целлоидин - парафин
- •Заливка в желатину
- •Заливка в поливакс (карбовакс)
- •Подготовка гистологического материала и приготовление парафиновых срезов
- •Окрашивание срезов гематоксилин-эозином
- •Методика окрашивания гематоксилином и эозином целлоидиновых срезов
- •Окрашивание срезов для обзорных целей
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 4. Неклеточные структуры живого вещества
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 5. Формы клеток. Органоиды клеток.
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 6. Органеллы временного значения - включения.
- •Окрашивание жиров и липидов
- •Приготовление раствора красителя
- •Приготовление рабочих растворов
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 7. Практическое занятие
- •Техника приготовления ацетоорсеина или ацетокармина.
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 8. Деление клетки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 9. Коллоквиум по цитологии.
- •Вопросы к коллоквиуму №1 «Цитология»
- •Список основных терминов к разделу «Цитология»
- •Раздел «Общая гистология» Занятие 10. Эпителиальная ткань
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 11. Практическое занятие
- •Методы исследования крови и кроветворения
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 12-13. Ткани внутренней среды
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 14. Опорные ткани
- •Практическое задание
- •Окрашивание эластических волокон резорцин-фуксином Вейгерта
- •Обработка и окрашивание костной ткани
- •Декальцинация
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 15. Мышечные ткани.
- •Практическое задание Методы исследования мышечной ткани
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 16. Нервная ткань
- •Практическое задание
- •Окрашивание хроматофильной субстанции по методу Ниссля в модификации Майера
- •Импрегнация нейрофибрилл серебром по Бильшовскому - Грос в модификации Лаврентьева
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 17. Коллоквиум по общей гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму № 2 «Ткани»
- •Список основных терминов Тема «Эпителиальные ткани. Железы»
- •Тема «Соединительные ткани»
- •Тема «Мышечные ткани»
- •Тема «Нервная ткань»
- •Занятие 18. Зачет по цитологии и общей гистологии.
- •Занятие 19. Пищеварительная система.
- •Спланхнология
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 20. Дыхательная система.
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 21. Мочевыделительная система.
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 22. Системы органов размножения
- •Микропрепарат для изучения и зарисовки
- •Анатомический состав системы органов размножения самок:
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 23. Коллоквиум по частной гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму №1 по частной гистологии
- •Занятие 24. Сердечно-сосудистая система
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 25. Нервная система и органы чувств
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 26. Эндокринная система (железы внутренней секреции). Кожа и её производные.
- •Эндокринные железы и их гормоны
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 27. Коллоквиум по частной гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму № 2 по частной гистологии
- •Экзаменационные вопросы
- •Перечень экзаменационных препаратов
- •Список основной и дополнительной литературы
- •Содержание
- •Раздел «Цитология»
- •Раздел «Общая гистология»
- •Раздел «Частная гистология»
Методика окрашивания гематоксилином и эозином целлоидиновых срезов
Окрасить в гематоксилине в течение 2-3 мин.
Промыть сначала в водопроводной, а затем в дистиллированной воде по 2-5 мин.
Окрасить в эозине в течение 1-2 мин.
Промыть в дистиллированной воде в течение 0,5-1 мин.
Обезводить в спиртах восходящей концентрации (70 %, 96 %, 100 %) по 1-2 мин.
Просветлить в карбол-ксилоле и ксилоле по 2-3 мин.
Заключить окрашенные срезы в бальзам.
Окрашивание срезов для обзорных целей
Различают методы окраски для обзорных целей, применяемые для получения общего представления о морфологии ткани или органа, и специальные, предназначенные для выявления определенных элементов клетки или ткани (например, комплекса Гольджи, митохондрий, эластических волокон соединительной ткани и т.д.). Ниже рассматриваются лишь некоторые методы окрашивания для обзорных целей. Суть их обычно заключается в том, что при этом окрашиваются ядра и каким-то контрастным красителем – цитоплазма.
Ядерные (основные) красители. Для окрашивания ядер используются гематоксилин, кармин, сафранин и другие основные красители. Существует несколько способов приготовления растворов гематоксилина. Наиболее распространенным является гематоксилин Эрлиха.
Гематоксилин Эрлиха. Для его приготовления 2,0 г гематоксилина растворяют в 100 мл 96% спирта и к полученному раствору добавляют 100 мл дистиллированной воды, 100 мл глицерина, 3,0 г калийных квасцов и 10 мл ледяной уксусной кислоты. Все ингредиенты нужно добавлять в указанной последовательности. Полученный раствор необходимо поставить на свету и при доступе воздуха не менее чем на 15 дней с тем, чтобы гематоксилин успел окислиться в гематеин, который и является красящим веществом. Банку с раствором при этом накрывают бумажным колпачком или сложенной в несколько раз марлей. Гематоксилин Эрлиха окрашивает ядра в синий цвет. Его используют при окрашивании срезов гематоксилин-эозином (см. ниже).
Железный гематоксилин Гейденгайна окрашивает в черный цвет не только ядра, но и митохондрии, темные диски скелетной и сердечной мышечной ткани и другие структуры. Для его приготовления 1 г гематоксилина растворяют в 10 мл 96% спирта, добавляют 90 мл дистиллированной воды и оставляют созревать на срок не менее 4 недель. Перед окрашиванием срезы протравливают в течение 2-12 ч в 2,5% растворе железоаммиачных квасцов. Раствор квасцов получают за счет 4-кратного разведения исходного 10% раствора, для приготовления которого используются кристаллы квасцов только фиолетового цвета. После промывания в дистиллированной воде срезы окрашивают в течение 1-36 ч раствором гематоксилина, разведенным вдвое по сравнению с исходным. В зависимости от исследуемого материала можно использовать и большие разведения красителя. Окрашенный срез ополаскивают дистиллированной водой и дифференцируют под контролем микроскопа в растворе железоаммиачных квасцов. После этого срезы промывают в водопроводной воде не менее 30 мин при частой смене воды.
Железный гематоксилин Вейгерта готовят в виде двух основных растворов - раствора Вейгерта I и раствора Вейгерта II. Раствор Вейгерта I представляет собой 1% раствор
гематоксилина в 90% спирте (1 г гематоксилина на 100 мл спирта). Раствор Вейгерта II имеет следующий состав: официнальный раствор полуторахлористого железа 4 мл, 1 мл концентрированной хлористоводородной кислоты (плотность 1,15-1,19) и 95 мл дистиллированной воды. Официнальный раствор полуторахлористого железа – это 50% раствор водного хлорного железа (FеСl3, 6Н20). Перед употреблением смешивают равные объемы основных растворов. Основные растворы хранятся 3-4 мес. Смешанный раствор можно применять лишь несколько дней. Время окрашивания 1-5 мин. Затем следует промывка водопроводной водой. Срезы можно дифференцировать 0,1% раствором хлористоводородной кислоты в 70% спирте, после чего их тщательно промывают водопроводной водой. Железный гематоксилин Вейгерта должен окрашивать ядра в черный цвет. Если они приобретают коричневый цвет, то это свидетельствует о порче красителя.
Квасцовый кармин приготовляют, растворяя 3-5 г аммиачных квасцов в 100 мл дистиллированной воды при нагревании, и добавляют 1 г кармина. Раствор кипятят 15 мин, охлаждают, фильтруют и добавляют 1 мл формалина. Время окрашивания – 0,5-24 ч, дифференцировка в дистиллированной воде проводится до прекращения отдачи красителя. Ядра окрашиваются в ярко-красный цвет. Окраску кармином можно проводить после импрегнации серебром или при выявлении железа.
Сафранин является прекрасным ядерным красителем, особенно для материала, фиксированного в растворах, содержащих осмий или хром. 10 г чистого сафранина или сафранина «С-ехtrа» (качество красителя имеет очень большое значение) растворяют в смеси 155 мл 96% спирта со 145 мл дистиллированной воды. Из полученного таким образом основного раствора перед употреблением берут 20 мл и добавляют 80 мл 50% спирта. Время окрашивания 24 ч. После ополаскивания в дистиллированной воде срезы дифференцируют, контролируя под микроскопом в 0,1% растворе хлористоводородной кислоты в абсолютном спирте. Затем следует промывка абсолютным спиртом, просветление в ксилоле, заключение в бальзам.
Кислые красители. Эти красители не являются избирательно цитоплазматическими. Красители для цитоплазмы подбирают таким образом, чтобы их цвет хорошо контрастировал с окраской ядер. Для докрашивания цитоплазмы после окраски ядер гематоксилином чаще всего используется 1% водный раствор эозина. Для срезов, окрашенных кармином, используют раствор пикриновой кислоты, полученный путем разведения водой насыщенного раствора пикриновой кислоты в отношении 1:3 (при комнатной температуре в 100 мл воды растворяется примерно 1,2 г пикриновой кислоты, следовательно, для получения насыщенного раствора следует взять чуть больше этого количества пикриновой кислоты). Время окрашивания 2-5 мин. Цитоплазма клеток и эритроциты красятся в желтый цвет.
Методика окрашивания срезов гематоксилин-эозином. Эта методика наиболее часто применяется и поэтому должна быть описана более детально. Этим методом можно окрашивать целлоидиновые срезы, депарафинированные, парафиновые или замороженные срезы. Замороженные срезы перед окрашиванием следует обезжирить, поместив их на 20-30 мин или на ночь в 96% спирт. Далее срезы переносят в дистиллированную воду. Целлоидиновые срезы переносят из одного бюкса в другой с помощью препаровальной иглы с загнутым концом. Депарафинированные и замороженные срезы можно окрашивать на предметном стекле, наливая или сливая соответствующие растворы. Растворы красителей при этом можно сливать обратно для повторного использования.
Порядок окрашивания срезов гематоксилин-эозином следующий: 1) срезы переносят в дистиллированную воду;
2) окрашивают гематоксилином Эрлиха 2-5 мин;
3) промывают в дистиллированной воде;
4) затем промывают в водопроводной воде 3-5 мин;
5) осуществляют контроль под микроскопом;
6) дифференцируют 1% раствором хлористоводородной кислоты в 70° спирте 1-2 с;
7) быстро переносят срезы в водопроводную воду на 30 мин при частой смене; в водопроводной воде вишневая окраска ядер сменяется синей;
8) осуществляют контроль под микроскопом; если хроматин и ядрышко видны недостаточно четко, то дифференцировку следует повторить (срезы можно смотреть под большим увеличением, накрыв их покровным стеклом);
9) промывают в дистиллированной воде;
10) 1% водный раствор эозина 0,5-1 мин;
11) промывают в дистиллированной воде (и дифференцируют, так как вода смывает эозин); время промывки контролируют по цвету среза;
12) проводят обезвоживание, осветляют в ксилоле, заключают в бальзам. В спиртах эозин также отмывается, так что проводить срезы по спиртам следует быстро. Время окрашивания в гематоксилине нужно установить на первых 2-3 срезах и затем все срезы данного блока окрашивать одинаково. Дифференцировку в растворе хлористоводородной кислоты в спирте можно не проводить, но в этом случае структуры ядра будут менее четкими, и в цитоплазме может быть синеватый фон.
Методика окрашивания азур-2-эозином. Эта методика также вполне пригодна для обзорных целей. Прогрессивный метод окрашивания азур-2-эозином довольно ненадежен, но регрессивный дает стабильные результаты. Основными растворами являются 0,1% водный раствор азура и 0,1% водный раствор эозина. Для приготовления рабочего раствора на 100 мл дистиллированной воды добавляют 100 капель основного раствора азура и 100-120 капель раствора эозина. Срезы помещают в раствор красителя на 12-24 ч. Затем срезы дифференцируют. Методы дифференцировки могут быть разными в зависимости от того, насколько интенсивно окрасились срезы. Дифференцировку можно проводить в подкисленной дистиллированной воде, затем промывать в чистой дистиллированной воде, обезвоживать в спиртах, просветлять в ксилоле и заключать в бальзам. При этом следует учесть, что в спиртах дифференцировка продолжается. Можно дифференцировать срезы прямо в 96% спирте. Ход дифференцировки контролируют под микроскопом. Окрасив несколько срезов, можно контролировать на глаз по цвету среза, время от времени выборочно проверяя качество окраски под микроскопом.
В качестве обзорной окраски можно рекомендовать также железный гематоксилин-пикрофуксин по Ван-Гизону.
Методика окрашивания железным гематоксилин-пикрофуксином по Ван-Гизону. Срез окрашивают железным гематоксилином Вейгерта в течение 2-5 мин. Вместо гематоксилина Вейгерта можно использовать гематоксилин Эрлиха. Дифференцировки не требуется, так как срезы дифференцируются в пикрофуксине. Для приготовления раствора пикрофуксина к 100 мл насыщенного водного раствора пикриновой кислоты добавляют 10 мл 1% водного раствора кислого фуксина. Раствор пикрофуксина хранится длительное время. После окрашивания железным гематоксилином срезы ополаскивают в дистиллированной воде и переносят в пикрофуксин на 3-5 мин. Затем промывают дистиллированной водой, обезвоживают в спиртах, начиная с 96%, проводят через ксилол и заключают в бальзам. В воде смывают фуксин. Если пропустить промывку в воде – обсушить срез фильтровальной бумагой, что иногда делают, мышечная ткань может быть окрашена в розовый цвет, а не в желтый, как полагается. Если промывать в воде слишком долго, фуксин смывается полностью. Пикриновая кислота смывается в спирте, поэтому обезвоживать нужно быстро. В результате окрашивания ядра клеток должны быть темно-коричневыми (или темно-фиолетовыми при окрашивании гематоксилином Эрлиха), коллагеновые волокна – красными, мышечная ткань, цитоплазма различных клеток и эритроциты – желтыми.
Рис.19. Этапы изготовления гистологического препарата.
