- •Введение
- •Раздел «Цитология» Занятие 1. Гистологическая техника
- •Правила техники безопасности в учебном процессе
- •Организация рабочего места студента – гистолога
- •Гистологическая техника для приготовления гистологических препаратов
- •Приготовление тотальных препаратов
- •Приготовление парафиновых и целлоидиновых срезов
- •Материалы и оборудование:
- •Техника изготовления препарата - мазка спермы:
- •Изготовление гистопрепаратов из эпителиальных клеток слизистой щеки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 2. Микроскопическая техника
- •Методы исследования
- •Механическая часть:
- •Оптическая часть:
- •Правила пользования микроскопом:
- •Типы микроскопов
- •Правила выполнения лабораторной работы
- •Материалы
- •Приготовление раствора гематоксилина
- •Приготовление эозина
- •Приготовление карбол-ксилола
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 3. Фиксаторы. Парафиновая, целлоидиновая, желатиновая проводки.
- •Фиксирующие средства и их применение
- •Простые фиксаторы
- •Фиксирующие смеси (сложные фиксаторы) и их применение
- •Промывание, обезвоживание и заливка гистологического материала
- •Промывание
- •Обезвоживание
- •Пропитывание и заливка
- •Заливка в парафин
- •Методика пропитывания
- •Заливка
- •Приготовление комбинированных парафиновых блоков
- •Заливка в целлоидин
- •Заливка в целлоидин - парафин
- •Заливка в желатину
- •Заливка в поливакс (карбовакс)
- •Подготовка гистологического материала и приготовление парафиновых срезов
- •Окрашивание срезов гематоксилин-эозином
- •Методика окрашивания гематоксилином и эозином целлоидиновых срезов
- •Окрашивание срезов для обзорных целей
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 4. Неклеточные структуры живого вещества
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 5. Формы клеток. Органоиды клеток.
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 6. Органеллы временного значения - включения.
- •Окрашивание жиров и липидов
- •Приготовление раствора красителя
- •Приготовление рабочих растворов
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 7. Практическое занятие
- •Техника приготовления ацетоорсеина или ацетокармина.
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 8. Деление клетки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 9. Коллоквиум по цитологии.
- •Вопросы к коллоквиуму №1 «Цитология»
- •Список основных терминов к разделу «Цитология»
- •Раздел «Общая гистология» Занятие 10. Эпителиальная ткань
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 11. Практическое занятие
- •Методы исследования крови и кроветворения
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 12-13. Ткани внутренней среды
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 14. Опорные ткани
- •Практическое задание
- •Окрашивание эластических волокон резорцин-фуксином Вейгерта
- •Обработка и окрашивание костной ткани
- •Декальцинация
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 15. Мышечные ткани.
- •Практическое задание Методы исследования мышечной ткани
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 16. Нервная ткань
- •Практическое задание
- •Окрашивание хроматофильной субстанции по методу Ниссля в модификации Майера
- •Импрегнация нейрофибрилл серебром по Бильшовскому - Грос в модификации Лаврентьева
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 17. Коллоквиум по общей гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму № 2 «Ткани»
- •Список основных терминов Тема «Эпителиальные ткани. Железы»
- •Тема «Соединительные ткани»
- •Тема «Мышечные ткани»
- •Тема «Нервная ткань»
- •Занятие 18. Зачет по цитологии и общей гистологии.
- •Занятие 19. Пищеварительная система.
- •Спланхнология
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 20. Дыхательная система.
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 21. Мочевыделительная система.
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 22. Системы органов размножения
- •Микропрепарат для изучения и зарисовки
- •Анатомический состав системы органов размножения самок:
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 23. Коллоквиум по частной гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму №1 по частной гистологии
- •Занятие 24. Сердечно-сосудистая система
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 25. Нервная система и органы чувств
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 26. Эндокринная система (железы внутренней секреции). Кожа и её производные.
- •Эндокринные железы и их гормоны
- •Микропрепараты для изучения и зарисовки
- •Вопросы для самопроверки
- •Занятие 27. Коллоквиум по частной гистологии
- •Вопросы к коллоквиуму № 2 по частной гистологии
- •Экзаменационные вопросы
- •Перечень экзаменационных препаратов
- •Список основной и дополнительной литературы
- •Содержание
- •Раздел «Цитология»
- •Раздел «Общая гистология»
- •Раздел «Частная гистология»
Заливка в поливакс (карбовакс)
Для гистохимического изучения активности и гистотопографии ферментов в тканях общераспространенные методы заливки материала в парафин или целлоидин часто оказываются совершенно непригодными. Высокая температура, необходимая для заливки в парафин, вызывает сильное уплотнение материала и, кроме того, инактивацию многих ферментов. Длительное пропитывание объекта целлоидином также обусловливает инактивацию ферментов и значительное вымывание их из исследуемого материала. Во избежание этих недостатков в гистохимии ферментов в последнее время используют заливку тканей в поливакс или полиэтиленгликоль.
В качестве фиксатора лучше использовать формалин. После промывки материала на 30 минут помещают в 50% водный раствор поливакса с молекулярным весом 550. Затем его переносят в 75% раствор поливакса на 30 минут и, наконец, в его насыщенный раствор. Выдерживать материал в насыщенном растворе поливакса необходимо в термостате при 37°.
В дальнейшем материал на 20-30 минут помещают в поливакс с молекулярным весом 1000 при температуре 37°. После этого исследуемый объект переносят в смесь равных объемов поливакса и «Нонекса».
Из указанной выше смеси материал переносят в «Нонекса» на 20 минут, после чего заливают. В летнее время рекомендуется использовать поливакс с молекулярным весом 4000.
Задание 1. Изучить различные методы окраски гистологических срезов.
Подготовка гистологического материала и приготовление парафиновых срезов
1. Фиксировать небольшие (0,5×0,5×1,0см) кусочки органов в 10% водном растворе формалина (или жидкости Буэна: 15 объемов насыщенного водного раствора пикриновой кислоты + 5 объемов формалина + 1 объем ледяной уксусной кислоты) - 24 часа. (Величина кусочка не должна превышать указанную, так как фиксатор за сутки проникает на глубину не более 0,2 см. Объем фиксатора должен превышать объем кусочка в 30-50 раз).
Промыть кусочки в проточной воде - 24 часа.
Обезводить кусочки (и частично уплотнить) в спиртах возрастающей крепости – 70°, 80°, 90°, 96° и 100° (в зависимости от характера материала от 6 до 24 часов).
Выдержать в ксилоле – 2 часа (в хлороформе – 24 часа) – это связано с тем, что парафин не соединяется со спиртом.
Выдержать в насыщенном растворе ксилола (или хлороформа) с парафином при температуре 37°С (в термостате) – 2 часа (можно до суток), чтобы избежать большого перепада температур.
Выдержать в чистом парафине (или содержащем до 5% пчелиного воска) при температуре 56-60 °С.
7. Залить материал парафином в бумажных или металлических формочках. Охладить в воде.
8. Вырезать кусочки и наклеить на деревянные кубики.
9. Изготовить тонкие (5-6 мкм) срезы на микротоме (санном или роторном).
Поместить срезы на предметные стекла, смазанные яичным белком с глицерином.
Расправить срезы на капле дистиллированной воды при легком подогревании.
Подсушить срезы в термостате при температуре 37°С.
Окрашивание срезов гематоксилин-эозином
Депарафинировать в ксилоле - 2 мин.
Удалить ксилол 96° спиртом - 2 мин. Затем стекло со срезами поместить в дистиллированную воду - 2 мин (можно дольше).
Окрашивание: на срез нанести каплю раствора гематоксилина на 2-З мин.
Срез поместить в водопроводную воду на 5- 10 мин (можно на сутки, тогда гематоксилин лучше "вызреет" и окраска будет лучше).
Срез ополоснуть дистиллированной водой и нанести каплю раствора эозина - 1 мин.
Сполоснуть в 2-3 порциях дистиллированной воды по 0,5-1 мин в каждой.
Обезводить в двух порциях 96° спирта по 1 мин в каждом (лучше капать из капельницы).
Окончательно обезводить в 100° спирте или карбол-ксилоле – 1 мин.
Просветлить срез ксилолом - 2 мин.
Заключить срез в бальзам и покрыть покровным стеклом.
После этого препарат подсушивают, чтобы бальзам затвердел. Хранят препараты в защищенном от света месте.
