- •Раздел 1. Техника взятия крови у сельскохозяйственных животных…...5
- •Раздел 2. Cистема вакуумного забора крови…………………………………………..15
- •Раздел 3. Способы получения отдельных компонентов крови,
- •Раздел 1. Техника взятия крови у сельскохозяйственных животных
- •1.1 Техника взятия крови из капилляров уха
- •1.2 Техника взятия крови из мякишей палыцев (ступни)
- •1.3 Техника взятия крови из гребня взрослых кур
- •1.4 Техника взятия крови из крыловой (плечевой) вены у птицы
- •1.5 Техника взятия крови из цевочной вены
- •1.6 Техника взатия крови из хвоста (свиньи, пушные звери и грызуны)
- •1.7 Техника взятия крови из ушных вен
- •1.8 Взятие крови из нокожной вены предплечья или вены сафена (собаки) и плантарной вены (песцы, лисицы)
- •1.9 Техника взятия крови из яремной вены у крупного рогатого скота методом "удара"
- •1.10 Техника взятия крови из ярёмной вены у крупного рогатого скота методом "толчка"
- •1.11 Техника взятия крови из яремной вены у лошади
- •1.12 Техника взятия крови из ярёмной вены у овцы первый способ
- •Раздел 2. Система вакуумного забора крови
- •Процедура взятия крови с помощью вакуумных систем
- •Пробирки, используемые в системе вакуумного забора
- •1. Для гематологии
- •2. Пробирки для исследования сыворотки
- •3. Пробирки для исследования плазмы
- •4. Пробирки для коагулологии
- •5. Для диабетологии
- •7. Для определения групп крови и совместимости
- •Раздел 3. Способы получения отдельных компонентов крови, требования к хранению и транспортировке проб крови для исследования Получение сыворотки крови
- •Получение плазмы крови
- •Режимы хранения и правила транспортировки проб крови
- •Факторы, влияющие на результаты исследования крови
Процедура взятия крови с помощью вакуумных систем
1. Взять иглу и снять защитный колпачок со стороны, закрытой резиновой мембраной.
2. Вставить иглу в держатель и завинтить до упора. Подготовить все необходимые пробирки.
В
случае использования одноразового
держателя надеть иглу на люер-адаптер.
3. Снять защитный колпачок со второй стороны иглы, вставить выбранную пробирку крышкой в держатель
Не прокалывая резиновую заглушку в крышке пробирки, ввести систему держатель-игла в вену пациента, как это делается при обычной процедуре взятия крови шприцем.
В этот момент кровь не проходит по игле, так как второй ее конец закрыт резиновой мембраной.
4. Вставить пробирку в держатель до упора. При этом игла прокалывает резиновую мембрану и резиновую пробку в крышке пробирки - образуется канал между пробиркой с вакуумом и полостью вены. Кровь проходит в пробирку до тех пор, пока не компенсируется созданный в пробирке вакуум (если кровь не идет - это значит, что игла прошла вену насквозь - в этом случае нужно немного вытянуть иглу (но не вынимать!), пока кровь не пойдет в пробирку).
Если используете жгут – снимите его, как только кровь начнет поступать в пробирку.
5. После прекращения тока крови извлечь пробирку из держателя.
Резиновая мембрана возвращается в исходное положение, перекрывая ток крови по игле. При необходимости в держатель вставляется ряд других пробирок для получения нужного объема крови для различных исследований. Повторно вводить иглу для этого не нужно.
6. При использовании пробирок с добавками необходимо аккуратно перевернуть пробирку 8-10 раз для полного смешения крови с реагентами или активатором образования сгустка. После того как последняя пробирка заполнилась, вынуть держатель с иглой из вены.
7. Для полной безопасности рекомендуется аккуратно снять иглу с держателя, используя специальный контейнер.
Пробирки, используемые в системе вакуумного забора
(на примере системы Vacuette)
Вакуумные пробирки представляют собой основной компонент системы для взятия венозной крови. Пробирки изготовлены в заводских условиях и уже содержат все реагенты и добавки, необходимые для проведения анализа. Вакуум в пробирках обеспечивает взятие необходимого объема крови и, соответственно, позволяет гарантировать соблюдение правильного соотношения крови и реагента. Пробирки изготовлены изполиэтилен – терфталата – пластика, который отличается особой прочностью и хорошо препятствует газообмену.
ТИПЫ ПРОБИРОК
1. Для гематологии
Этилендиаминтетраацетат (ЭДТА) является предпочтительным антикоагу-лянтом для гематологических исследований. ЭДТА и его щелочные соли способны создавать хелатные соединения с ионами кальция с образованием растворимых высокостабильных комплексов. Наиболее эффективная концентрация ЭДТА – 1,2 мг/мл крови. Во всем мире используют три варианта солей ЭДТА: ЭДТА-К3, ЭДТА-К2 и ЭДТА-Na2. Наиболее предпочтительной и рекомендуемой Международной Комиссией по Стандартизации в Гемато-логииявляетсядвукалиевая соль ЭДТА:
ЭДТА-К3 показывает меньшую способность поддержания крови в жидком состоянии, также ЭДТА-К3 влияет на подсчет лейкоцитов, занижая их количество.
различия между ЭДТА-К2 и ЭДТА-Na2 в клиническом плане незначительны и ими можно пренебречь, но ЭДТА-Na2 хуже растворим.
Для получения качественного результата анализа необходимо:
немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта;
плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости цен-трифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин). При необходимости до-пускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.
Наиболее широко используются пробирки, содержащие 1,95 мг ЭДТА/1мл крови. Они нашли свое применение в таких областях лабораторной практики, как:
гематологические исследования – подсчет клеток крови, определение СОЭ и пр.
ПЦР-исследования (качественные и количественные методики).
Пробирки с образцами крови можно хранить до 6-10 часов при 4 ºС, хранение свыше 24 часов не рекомендуется из-за снижения числа эритроцитов и лей-коцитов.
