- •Реферат
- •Содержание:
- •1) Введение
- •2) Общее описание
- •3) Классификация герпесвирусов Систематическое положение герпесвирусов
- •3.1) Подсемейство Alprraherpesvirinae
- •3.1.1) Род Simplexvirus
- •3 Рис. 2. Герпесвирус кошек .1.2) Род Varicellavirus
- •3.2) Подсемейство Betaherpesvirinae
- •3.2.1) Род Cytomegalovirus
- •3.2.2) Род Muromegalovirus
- •3.3) Подсемейство Gammaherpesvirinae
- •3.3.1) Род Lymphocryptovirus
- •3.3.2) Род Rhadinovirus
- •4) Строение вируса
- •5) Механизм инфицирования
- •5.1) Прикрепление
- •5.2) Проникновение капсида в зараженную клетку
- •5.3) Выход вирусной днк из капсида
- •5.4) Синтез вирусной днк, сборка и выход вируса из зараженной клетки
- •5.4.1) Репликация вирусной днк
- •5.4.2) Созревание (процессинг) днк и сборка вирионов
- •5.5) Выход вируса из клетки
- •6) Пути заражения
- •7) Эпидемиологический статус
- •8) Лечение
- •9) Заключение
- •10) Перечень использованной литературы
- •11) Приложения
5) Механизм инфицирования
Выделяют следующие стадии заражения:
Прикрепление
Проникновение капсида в зараженную клетку
Выход вирусной ДНК из капсида
Синтез вирусной ДНК, сборка и выход вируса из зараженной клетки
Выход вируса из клетки
5.1) Прикрепление
Герпесвирусы прикрепляются к специфическим рецепторам на клеточной поверхности, которые еще не идентифицированы. Все представления о специфичности клеток в этом отношении основываются на исследованиях, подобных тому, что лишь часть клеток человека (например, только В-лимфоциты) содержат рецепторы для EBV. Попытки найти клетки животных, не содержащие рецепторов для HSV, успеха не дали; тем не менее кроме человека «естественному» заражению этим вирусом подвержены только шимпанзе. Ничего не известно и об антирецепторах— тех компонентах поверхности вирусной частицы, которые связываются с рецепторами.
5.2) Проникновение капсида в зараженную клетку
Прикрепление вируса активирует белок, находящийся на поверхности вируса и вызывающий слияние оболочки вируса с плазматической мембраной. Предполагают, что происходит именно слияние оболочки с плазматической мембраной, а не фагоцитоз. Это согласуется с обнаружением на клеточной поверхности Fc-рецепторов оболочки вириона, в том числе и в тех случаях, когда проникновение вируса не приводит к экспрессии вирусных генов.
Присутствие в оболочке вируса активируемого компонента, вызывающего ее слияние с клеточной мембраной, подтверждается также тем, что температурочувствительный мутант HSV-1 по гликопротеину В адсорбируется на клеточной поверхности, не проникая внутрь клетки. Если после такой адсорбции химически индуцировать слияние оболочки вируса с плазматической мембраной, происходит заражение и вирус дает потомство. Утрата чувствительности к нейтрализации, обусловленная проникновением адсорбированного вируса в клетку, происходит очень быстро.
5.3) Выход вирусной днк из капсида
После проникновения в клетку капсид транспортируется к порам в ядерной мембране, а затем под контролем вирусных факторов вирусная ДНК выходит в нуклеоплазму. Капсиды температурочувствительного мутанта HSV-1 (HFEM) tsB7 скапливаются у ядерных пор, и выход вирусной ДНК наблюдается только после понижения температуры до пермиссивного уровня. На ранних стадиях заражения вирусом дикого типа у ядерных пор легко обнаруживаются пустые капсиды. Следуя аналогии с заражением аденовирусом, можно предположить, что транспорт капсидов герпесвирусов к ядерным порам осуществляется при участии цитоскелета. Родительская вирусная ДНК накапливается в ядре.
5.4) Синтез вирусной днк, сборка и выход вируса из зараженной клетки
5.4.1) Репликация вирусной днк
Отличительной особенностью герпесвирусов, которой нет ни у каких других ядерных ДНК-содержащих вирусов, является необычно большое число кодируемых ими ферментов, вовлеченных в синтез молекулы ДНК. Хотя последовательность событий при репликации вирусной ДНК в общих чертах известна, многие детали этого процесса еще предстоит изучить. В клетках, зараженных HSV, синтез вирусной ДНК обнаруживается примерно через 3 ч после заражения и продолжается по меньшей мере 9—12 ч.
В клетках, зараженных HSV-1, репликации подвергается лишь небольшая часть всей ДНК родительского вируса.
HSV-1 и, вероятно, HSV-2 содержат три начальные точки репликации ДНК. Две из них попадают в инвертированную C-последовательность S-компонента, тогда как третья находится в середине L-компонента вблизи генов, кодирующих главный ДНК-связывающий белок и ДНК-полимеразу.
Секвенирование начала репликации свидетельствует о том, что все функции начала репликации сосредоточены в отрезке ДНК длиной 90 bр, в состав которого входит почти идеально палиндромная АТ-богатая последовательность длиной 45 bр. Поскольку участки начала репликации в составе S-компонента содержатся внутри повторов, можно ожидать, что они идентичны.
Относительно нуклеотидной последовательности начала репликации в составе L-компонента известно очень немного, однако никакой гомологии фрагментов, содержащих начальные точки репликации в S- и L-компонентах, не обнаружено. Практически ничего не известно о том, как функционируют эти участки. Особенно важно установить, функционируют ли какие-то из них или все они непосредственно в процессе репликации вирусной ДНК и насколько они эквивалентны или подчинены друг другу. В некоторых случаях петли в реплицирующейся ДНК HSV не совпадают с расположением начальных точек репликации. Начальные точки репликации в составе S-компонента располагаются выше сайтов инициации транскрипции альфа-генов и в то же время отличаются от главных последовательностей, регулирующих экспрессию этих генов.
