- •Міністерство охорони здоров’я україни
- •Завідуючий Сектором із забезпечення діяльності Міністра р.Й.Василишин
- •Методичні вказівки
- •Listeria monocytogenes у харчових продуктах та продовольчій сировині”
- •Загальні положення
- •2. Коротка характеристика мікроорганізмів роду Listeria
- •3. Організація контролю продукції на Listeria monocytogenes
- •4. Організація лабораторних досліджень на Listeria monocytogenes
- •5. Сутність методу
- •6. Апаратура, матеріали, лабораторний посуд, реактиви, поживні середовища
- •6.1. Апаратура та інструментарій
- •6.2. Лабораторний посуд та матеріали
- •7. Підготовка до дослідження
- •7.1. Приготування розчинів та реактивів
- •7.2. Приготування поживних середовищ
- •8. Відбір і підготовка проб харчових продуктів для дослідження
- •8.1. Загальні положення по відбору і підготовці проб
- •8.2. Відбір і підготовка проб молока, молочних продуктів, сирів, морозива
- •8.3. Відбір і підготовка проб м'яса, м'ясних напівфабрикатів, м'яса птахів і птахопродуктів, ковбасних виробів і інших м'ясопродуктів
- •8.4. Відбір і підготовка проб плодоовочевої продукції
- •8.5. Відбір і підготовка проб риби, нерибних об'єктів промислу і продуктів, що з них вироблені
- •8.6. Відбір і підготовка проб продуктів дитячого, лікувального харчування і їх компонентів
- •9. Порядок проведення дослідження
- •10. Виявлення Listeria monocytogenes у реакції наростання титру фага (рнф)
- •11. Визначення Listeria monocytogenes за допомогою автоматичного імуноаналізатора типу “miniVidas”
- •12. Біологічні, серологічні та молекулярно-генетичні дослідження
- •13. Вимоги безпеки
- •14. Нормативні посилання
- •Додаток до методичних вказівок
- •Поживні середовища промислового виробництва, зареєстровані в Україні, рекомендовані для виділення Listeria monocytogenes Для культивування ізолятів
- •Дріжджовий триптон-соєвий агар / бульйон - Tryptone Soya Yeast Extract Agar / Broth (m1214 / m1263)
- •Середовища селективного збагачення Основа бульйону Фрейзера - Fraser Broth Base (m1327)
- •Бульйон збагачення для лістерій - Listeria Enrichment Broth (м569
- •Середовище збагачення для лістерій (uvm) –
- •Бульйон збагачення для лістерій, модифікований –
- •Основа бульйону вторинного збагачення для лістерій –
- •Основа селективного бульйону для лістерій –
- •Диференційно-діагностичні селективні середовища Агар для ідентифікації лістерій (palcam) –
- •Основа Оксфордського середовища для лістерій –
- •Селективний агар для лістерій (двокомпонентне середовище) –
- •Основа агару МакБрайда для лістерій / Основа агару МакБрайда для лістерій модифікована –
- •Основа селективного агару lpm для лістерій - lpm Agar Base (m1228)
- •Нітратний агар / Нітратний бульйон –
- •Бульйон для визначення цукролітичної активності лістерій –
- •Основа бульйону з бромкрезоловим пурпурним для лістерій –
10. Виявлення Listeria monocytogenes у реакції наростання титру фага (рнф)
Реакція наростання титру фага - швидкий специфічний метод виявлення лістерій, що забезпечує виявлення збудника в досліджуваному матеріалі без виділення культури і може бути використана як додатковий метод для виявлення L. monocytogenes у харчових продуктах (при проведенні протиепідемічних заходів і при епідрозслідуванні).
РНФ заснована на властивості індикаторного бактеріофага строго специфічно розмножуватися в клітинах гомологічного мікроба. Розмноження бактеріофага супроводжується збільшенням кількості його часток і підвищенням титру.
У реакції застосовують лістеріозні бактеріофаги L2A і L4A. Штами L.monocytogenes I (9-127) і II (9-72) серогруп. Поживні середовища з 0,5 % глюкози: 1,5 % МПБ, і 0,7 % МПА.
При постановці РНФ із пробами харчових продуктів зважують 25 г досліджуваного матеріалу, подрібнюють, поміщають у колбу ємністю 1 дм3 і додають 250 см3 МПБ. Суміш протягом 5-10 хв. струшують, потім 9 см3 переносять у бактеріологічну пробірку № 1 (дослід).
Бактеріофаги використовують у робочому розведенні (10 000 фагових корпускул у 1 см3). Для цього їх розчиняють у МПБ до вихідного об’єму, зазначеного на етикетці ампули, а потім на МПБ окремими піпетками роблять п'ять послідовних десятикратних розведень (в останньому розведенні титр бактеріофага складе 1 х 104).
Суміш фагів готують шляхом змішування рівних об’ємів фагу L2A і L4A у робочому розведенні.
Для контролю титру бактеріофага, (ставлять один на групу аналізів), проведених одночасно, у пробірку № 2 (контроль) вносять 9 см3 МПБ.
У пробірки № 1 і 2 вносять по 1 см3 суміші фагів в робочому розведенні і витримують їх протягом 16-24 год. при кімнатній температурі, після чого в пробірки додають по 1 см3 хлороформу. Вміст ретельно струшують і залишають при кімнатній температурі на 30-40 хв. Хлороформ осідає на дно, надосадову рідину піддають подальшим дослідженням.
При використанні суміші фагів з дослідної і контрольної пробірок (№ 1 і 2) беруть по 0,2 см3 і переносять по 0,1 см3 у дві пробірки, що містять по 0,9 см3 МПБ (один ряд для виявлення фагу L2A, а другий - L4A), а потім з кожної пробірки готують ще одне десятикратне розведення.
Готують суспензії штамів I і II серогруп за стандартом мутності 10 од. шляхом розведення добової агарової культури у фізіологічному розчині. В усі пробірки з розведеним матеріалом додають по 0,1 см3 суспензії штаму 1 серогрупи для виявлення фагу L2A або штаму II серогрупи для виявлення фагу L4A.
Вміст пробірок засівають методом агарових шарів за Граціа. Для цього напередодні дня дослідження в чашки Петрі розливають по 10 см3 1,5 % МПА; Якщо МПА розливають у день дослідження, то поверхню агару попередньо підсушують протягом 40-50 хв. при (37±1)0С або 2 год. при кімнатній температурі. Для другого шару використовують розплавлений і охолоджений до (48-50) °С 0,7% МПА, який варто використовувати протягом години, тому що пізніше він набуває желеподібної консистенції і непридатний для дослідження. У пробірки піпеткою вносять по 2,5-3 см3 розплавленого й охолодженого до 48-50 °С 0,7 % МПА. Вміст швидко і ретельно перемішують обертанням пробірки між долонями і виливають у чашку Петрі. Суміш легким погойдуванням чашки рівномірно розподіляють другим шаром на поверхні 1,5%-ного МПА. Чашки залишають на рівному місці на 20-30 хвилин (до застигання 0,7 % МПА), потім перевертають і інкубують при кімнатній температурі.
Облік реакції проводять через 16—24 год. інкубації посівів.
У дослідних пробах і контролі титру фага підраховують число негативних колоній у всіх чашках. Негативні колонії - округлі, добре помітні на тлі бактеріального росту, прозорі ділянки, що утворяться в результаті лізису бактерій.
При обліку результатів порівнюють кількість негативних колоній на чашках відповідних розведень.
Результати реакції оцінюють за збільшенням титру бактеріофага (кількості негативних колоній):
• збільшення кількості негативних колоній у пробі, що досліджується, відносно контролю в 5 і більше разів (хоча б по одному з розведень) оцінюється як позитивний результат, менше, ніж у 5 разів - негативний;
• суцільний лізис або лізис з острівцями оцінюється як позитивний результат.
При одержанні позитивного результату РНФ дають висновок, що в досліджуваному матеріалі (пробі) виявлені бактерії роду Listeria.
