- •Міністерство охорони здоров’я україни
- •Завідуючий Сектором із забезпечення діяльності Міністра р.Й.Василишин
- •Методичні вказівки
- •Listeria monocytogenes у харчових продуктах та продовольчій сировині”
- •Загальні положення
- •2. Коротка характеристика мікроорганізмів роду Listeria
- •3. Організація контролю продукції на Listeria monocytogenes
- •4. Організація лабораторних досліджень на Listeria monocytogenes
- •5. Сутність методу
- •6. Апаратура, матеріали, лабораторний посуд, реактиви, поживні середовища
- •6.1. Апаратура та інструментарій
- •6.2. Лабораторний посуд та матеріали
- •7. Підготовка до дослідження
- •7.1. Приготування розчинів та реактивів
- •7.2. Приготування поживних середовищ
- •8. Відбір і підготовка проб харчових продуктів для дослідження
- •8.1. Загальні положення по відбору і підготовці проб
- •8.2. Відбір і підготовка проб молока, молочних продуктів, сирів, морозива
- •8.3. Відбір і підготовка проб м'яса, м'ясних напівфабрикатів, м'яса птахів і птахопродуктів, ковбасних виробів і інших м'ясопродуктів
- •8.4. Відбір і підготовка проб плодоовочевої продукції
- •8.5. Відбір і підготовка проб риби, нерибних об'єктів промислу і продуктів, що з них вироблені
- •8.6. Відбір і підготовка проб продуктів дитячого, лікувального харчування і їх компонентів
- •9. Порядок проведення дослідження
- •10. Виявлення Listeria monocytogenes у реакції наростання титру фага (рнф)
- •11. Визначення Listeria monocytogenes за допомогою автоматичного імуноаналізатора типу “miniVidas”
- •12. Біологічні, серологічні та молекулярно-генетичні дослідження
- •13. Вимоги безпеки
- •14. Нормативні посилання
- •Додаток до методичних вказівок
- •Поживні середовища промислового виробництва, зареєстровані в Україні, рекомендовані для виділення Listeria monocytogenes Для культивування ізолятів
- •Дріжджовий триптон-соєвий агар / бульйон - Tryptone Soya Yeast Extract Agar / Broth (m1214 / m1263)
- •Середовища селективного збагачення Основа бульйону Фрейзера - Fraser Broth Base (m1327)
- •Бульйон збагачення для лістерій - Listeria Enrichment Broth (м569
- •Середовище збагачення для лістерій (uvm) –
- •Бульйон збагачення для лістерій, модифікований –
- •Основа бульйону вторинного збагачення для лістерій –
- •Основа селективного бульйону для лістерій –
- •Диференційно-діагностичні селективні середовища Агар для ідентифікації лістерій (palcam) –
- •Основа Оксфордського середовища для лістерій –
- •Селективний агар для лістерій (двокомпонентне середовище) –
- •Основа агару МакБрайда для лістерій / Основа агару МакБрайда для лістерій модифікована –
- •Основа селективного агару lpm для лістерій - lpm Agar Base (m1228)
- •Нітратний агар / Нітратний бульйон –
- •Бульйон для визначення цукролітичної активності лістерій –
- •Основа бульйону з бромкрезоловим пурпурним для лістерій –
Основа селективного агару lpm для лістерій - lpm Agar Base (m1228)
Агар LPM (з літієм, фенілетанолом і моксалактамом) рекомендують для виділення і культивування Listeria monocytogenes з молочних і інших харчових продуктів.
Склад: |
грам/дм3 |
Гідролізат казеїну Пептичний перевар тваринної тканини М'ясний екстракт Гліциновий ангідрид Літію хлорид Натрію хлорид Фенілетанол Агар-агар Кінцеве значення рН (при 250С) 7,3 ± 0,2 |
5,00 5,00 3,00 10,00 5,00 5,00 2,50 15,00
|
Приготування. Розмішати 50,5 г порошку в 1000 см3 дистильованої води. Підігріти до кипіння для повного розчинення частинок. Стерилізувати автоклавуванням при 1,1 атм (1210С) протягом 12 хв. Охолодити до 500С і асептично додати добавку FD151. Ретельно перемішати і розлити в чашки Петрі. Готове середовище має жовте забарвлення, прозоре або з легкою опалесценцією.
Принцип і оцінка результату. Гідролізат казеїну, м'ясний екстракт і пептичний перевар тваринної тканини є джерелом необхідних поживних речовин для росту. Гліциновий ангідрид, хлорид літію і фенілетанол пригнічують ріст грампозитивних коків і грамнегативних паличок. Моксалактам пригнічує ріст грампозитивних і грамнегативних бактерій, включаючи стафілококи, протеї і псевдомонади. При косому освітленні колонії Listeria monocytogenes виглядають веселковими блакитно-зеленими.
Нітратний агар / Нітратний бульйон –
Nitrate Agar / Broth (M072 / M439)
Ці середовища рекомендують для визначення нітратредуктази у бактерій.
Склад: |
М072 грам/дм3 |
М439 грам/дм3 |
Пептичний перевар тваринної тканини М'ясний екстракт Калію нітрат Агар-агар Кінцеве значення рН (при 250С) |
5,00 3,00 1,00 12,00 6,8 ± 0,2 |
5,00 3,00 1,00 – 7,0 ± 0,2 |
Приготування. Розмішати 21,0 г порошку М072 або 9,0 г порошку М439 в 1000 см3 дистильованої води. Прокип'ятити для повного розчинення частинок. Розлити в пробірки. Стерилізувати автоклавуванням при 1,1 атм (1210С) протягом 15 хв. Охолодити пробірки з середовищем в нахиленому стані. Готове середовище має світло-бурштиновий колір, прозоре або з легкою опалесценцією.
Принцип і оцінка результату. Здатність відновлювати нітрат є варіабельною ознакою і може використовуватися для диференціації і ідентифікації бактерій, зокрема представників родини ентеробактерій. Неферментуючі бактерії і ряд інших грамнегативних паличок варіюють за здібністю до редукції нітратів. Деякі з них здатні до денітрифікації з відновленням нітрату до газоподібного азоту. Утворення азоту з нітрату є важливим диференціальним тестом для ферментуючих глюкозу грамнегативних бактерій. Відновлення нітрату звичайно відбувається в анаеробних умовах, коли мікроорганізми «відщеплюють» кисень з нітрату. Представники Enterobacteriaceae, зазвичай, відновлюють нітрат до нітриту, який реагує з сульфаніловою кислотою і N,N-диметил-1-нафтиламіном, внаслідок чого розвивається червоне забарвлення (реакція Гріса). Якщо мікроорганізм активно редукує нітрат, тест треба проводити раніше, поки утворений нітрит повністю не перейшов в газоподібний азот.
Приготування реактивів для нітратного тесту:
1.Сульфанілова кислота: розчинити 8,0 г сульфанілової кислоти в 1 дм3 5N оцтової кислоти.
2.Альфа-Нафтиламіновий реактив: розчинити 5,0 г –нафтиламіну в 1 дм3 5N оцтової кислоти.
УВАГА: реактиви токсичні, вимагають обережного обігу; уникати піпетування ротом, утворення аерозолів, попадання реактивів на шкіру.
Проведення тесту: Внести декілька крапель кожного реактиву в пробірку з досліджуваною культурою. На відновлення нітрату указує поява червоного або рожевого кольору середовища. Як негативний контроль ставлять тест з незасіяним середовищем. За відсутності почервоніння середовища, в пробірку додають щіпку порошку цинку, щоб переконатися у присутності нітрату в середовищі. Цинк відновлює нітрат, що супроводжується появою червоного забарвлення (у присутності тест-реактиву). Слід мати на увазі, що внесення дуже великої кількості цинку може привести до хибнонегативної реакції. Нітратний тест не є вирішальним для ідентифікації. Остаточну ідентифікацію проводять з урахуванням морфологічних ознак, фарбування за Грамом, біохімічних і серологічних характеристик мікроорганізму.
