- •Міністерство охорони здоров’я україни
- •Завідуючий Сектором із забезпечення діяльності Міністра р.Й.Василишин
- •Методичні вказівки
- •Listeria monocytogenes у харчових продуктах та продовольчій сировині”
- •Загальні положення
- •2. Коротка характеристика мікроорганізмів роду Listeria
- •3. Організація контролю продукції на Listeria monocytogenes
- •4. Організація лабораторних досліджень на Listeria monocytogenes
- •5. Сутність методу
- •6. Апаратура, матеріали, лабораторний посуд, реактиви, поживні середовища
- •6.1. Апаратура та інструментарій
- •6.2. Лабораторний посуд та матеріали
- •7. Підготовка до дослідження
- •7.1. Приготування розчинів та реактивів
- •7.2. Приготування поживних середовищ
- •8. Відбір і підготовка проб харчових продуктів для дослідження
- •8.1. Загальні положення по відбору і підготовці проб
- •8.2. Відбір і підготовка проб молока, молочних продуктів, сирів, морозива
- •8.3. Відбір і підготовка проб м'яса, м'ясних напівфабрикатів, м'яса птахів і птахопродуктів, ковбасних виробів і інших м'ясопродуктів
- •8.4. Відбір і підготовка проб плодоовочевої продукції
- •8.5. Відбір і підготовка проб риби, нерибних об'єктів промислу і продуктів, що з них вироблені
- •8.6. Відбір і підготовка проб продуктів дитячого, лікувального харчування і їх компонентів
- •9. Порядок проведення дослідження
- •10. Виявлення Listeria monocytogenes у реакції наростання титру фага (рнф)
- •11. Визначення Listeria monocytogenes за допомогою автоматичного імуноаналізатора типу “miniVidas”
- •12. Біологічні, серологічні та молекулярно-генетичні дослідження
- •13. Вимоги безпеки
- •14. Нормативні посилання
- •Додаток до методичних вказівок
- •Поживні середовища промислового виробництва, зареєстровані в Україні, рекомендовані для виділення Listeria monocytogenes Для культивування ізолятів
- •Дріжджовий триптон-соєвий агар / бульйон - Tryptone Soya Yeast Extract Agar / Broth (m1214 / m1263)
- •Середовища селективного збагачення Основа бульйону Фрейзера - Fraser Broth Base (m1327)
- •Бульйон збагачення для лістерій - Listeria Enrichment Broth (м569
- •Середовище збагачення для лістерій (uvm) –
- •Бульйон збагачення для лістерій, модифікований –
- •Основа бульйону вторинного збагачення для лістерій –
- •Основа селективного бульйону для лістерій –
- •Диференційно-діагностичні селективні середовища Агар для ідентифікації лістерій (palcam) –
- •Основа Оксфордського середовища для лістерій –
- •Селективний агар для лістерій (двокомпонентне середовище) –
- •Основа агару МакБрайда для лістерій / Основа агару МакБрайда для лістерій модифікована –
- •Основа селективного агару lpm для лістерій - lpm Agar Base (m1228)
- •Нітратний агар / Нітратний бульйон –
- •Бульйон для визначення цукролітичної активності лістерій –
- •Основа бульйону з бромкрезоловим пурпурним для лістерій –
Диференційно-діагностичні селективні середовища Агар для ідентифікації лістерій (palcam) –
Listeria Identification Agar (PALCAM) (M1064) Поліміксин (Polymyxin) – Акрифлавін (Acriflavine) – Літій (Lithium-chloride) – Цефтазідім (Ceftazidime) Ескулін (Esculin) – Маніт (Mannitol) агар з добавкою FD061 рекомендований для виділення лістерій з харчових продуктів
Склад: |
грам/дм3 |
Пептон Крохмаль Натрію хлорид Маніт Заліза амонійного цитрат Ескулін Глюкоза Літію хлорид Феноловий червоний Агар-агар Кінцеве значення рН ( при 250С) 7,00,2 |
23,00 1,00 5,00 10,00 0,50 0,80 0,50 15,00 0,08 13,00
|
Приготування. Розмішати 34,5 г порошку в 500 см3 дистильованої води. Прокип'ятити до повного розчинення середовища. Стерилізувати автоклавуванням при 1,1 атм (1210С) протягом 15 хв. Охолодити до 500С і асептично додати розчинений в дистильованій воді вміст 1 флакона з Селективною добавкою для лістерій (PALCAM) (FD061). Ретельно перемішати і розлити середовище в стерильні чашки Петрі. Готове середовище має червоне забарвлення, прозоре, із злегка опалесцуючою поверхнею.
Принцип і оцінка результату. Середовище є високо селективним через наявність в ньому хлориду літію, цефтазідіму, поліміксину і акрифлавіну. PALCAM агар - диференційно-діагностичне середовище. Використовуються 2 індикаторні системи: ескулінова і манітна.
Listeria monocytogenes гідролізує ескулін на ескулетин і глюкозу. Реагуючи з цитратом заліза, ескулетин утворює коричнево-чорний комплекс, що приводить до потемніння середовища навкруги колоній. Лістерії не ферментують маніт, тому зброджуючі маніт ентерококи і стафілококи формують кольорові колонії (від червоного до жовтого). Мікроаерофільні умови обмежують ріст аеробів, наприклад, представників родів Bacillus і Pseudomonas.
Введення до складу середовища яєчного жовтка (2,5%) сприяє відновленню пошкоджених клітин. Додавання середовища з кров'ю поверх PALCAM агару дозволяє диференціювати і підрахувати кількість гемолітичних лістерій.
Залежно від типу аналізованого зразка перед висівом на PALCAM агар повинне бути проведено збагачення в різних бульйонах для селективного збагачення.
Основа Оксфордського середовища для лістерій –
Listeria Oxford Medium Base (M1145)
Рекомендовано для виділення Listeria monocytogenes з клінічного матеріалу і зразків харчових продуктів.
Склад: |
грам/дм3 |
Пептон спеціальний Літію хлорид Крохмаль кукурудзяний Ескулін Заліза амонійного цитрат Агар-агар Кінцеве значення рН ( при 250С) 7,00,2 |
23,00 15,00 1,00 1,00 0,50 10,00
|
Приготування. Розмішати 27,75 г порошку в 500 см3 дистильованої води. Прокип'ятити до повного розчинення середовища. Стерилізувати автоклавуванням при 1,1 атм (1210С) протягом 15 хв. Охолодити до 500С і асептично додати розчинений в 5 см3 50%-го етанолу вміст 1 флакона з селективною добавкою для виділення лістерій (FD172). Ретельно перемішати і розлити середовище в стерильні чашки Петрі. Готове середовище має темно-бурштинове забарвлення з блакитним відблиском.
Принцип і оцінка результату. Хлорид літію і антибіотики пригнічують ріст грамнегативної мікрофлори і більшості грампозитивних мікроорганізмів (окремі штами Staphylococcus утворюють ескулін-негативні колонії). Listeria monocytogenes гідролізує ескулін на ескулетин і глюкозу. Реагуючи з цитратом заліза, ескулетин утворює коричнево-чорний комплекс, що приводить до потемніння середовища навкруги колоній.
Методика виділення лістерій залежить від досліджуваних зразків. Для всіх зразків рекомендується селективне і холодове збагачення.
Для зразків харчових продуктів і матеріалу з об’єктів довкілля звичайно використовують селективне збагачення.
