- •Бийск 2014 введение
- •1 Цели и задачи лабораторных работ
- •2 Методика проведения лабораторных работ
- •3 Содержание лабораторных работ
- •3.1 Лабораторная работа № 1 подготовка и стерилизация посуды и сред
- •3.1.1 Подготовка посуды
- •3.1.2 Приготовление питательных сред
- •3.2 Лабораторная работа № 2 микробиологический контроль инокулята
- •3.2.1 Микробиологический контроль дрожжей методом микроскопирования
- •3.2.2 Определение процентного содержания сахаромицетов и
- •3.2.3 Определение общего количества микроорганизмов в закваске молочнокислых бактерий
- •3.2.4 Внесение инокулята в питательные среды
- •3.3 Лабораторная работа № 3 контроль производственной культуры
- •3.4 Лабораторная работа № 4 выделение биомассы методом центрифугирования
- •3.4.1 Контроль производственной культуры
- •3.4.2 Центрифугирование биомассы
- •3.5 Лабораторная работа № 5 количественный учёт результатов микробиологических испытаний
- •3.5.1 Микробиологический анализ молочнокислых микроорганизмов
- •3.5.2 Обработка результатов эксперимента
- •3.6 Лабораторная работа № 6 лабораторное получение эргостерина
3 Содержание лабораторных работ
3.1 Лабораторная работа № 1 подготовка и стерилизация посуды и сред
Цель работы: освоить подготовительные работы при проведении микробиологических анализов
Содержание работы: подготовить посуду, материалы и реактивы. Приготовить растворы и питательные среды. Ознакомление с методами стерилизации.
Материальное обеспечение: термостат, холодильник, автоклав, сушильный шкаф, рН-метр, микроскоп, бинокулярная лупа, спиртовка, пипетки, пробирки, предметные стёкла, бактериологические петли, вата, марля. На одну подгруппу студентов понадобятся: колба ёмкостью 1 л – 2 шт., колба ёмкостью 500-750 мл – 2 шт., колба ёмкостью 250 мл – 6 шт., чашки Петри 21 шт., пробирки – 24 шт., пипетки на 1 мл, шпатели Дригальского – 3 шт., кружки картонные – 9 шт.
3.1.1 Подготовка посуды
Мойка посуды. Новую посуду ополаскивают от пыли и грязи, кипятят в растворе хозяйственного мыла (200 г на 15 л воды) в течение 15 мин, ополаскивают водопроводной водой, выдерживают 48 ч в 2 % растворе соляной кислоты, ополаскивают водопроводной водой, затем дистиллированной водой. Посуду, бывшую в употреблении, обеззараживают стерилизацией в автоклаве (1,5 атм 30 мин) или кипячение в течение 1 ч, освобождают от остатков среды с помощью ершей и щеток под струей водопроводной воды, кипятят в растворе хозяйственного мыла (200 г на 15 л) в течение 15 минут промывают водопроводной водой с применением ершей и щеток и дважды ополаскивают дистиллированной водой. Для мытья нельзя применять дезинфицирующие растворы и стиральные порошки, так как их остатки могут ингибировать рост микроорганизмов.
Градуированные пипетки замачивают в воде в течение 1-2 ч при комнатной температуре, промывают струей водопроводной воде, ополаскивают водопроводной, затем дистиллированной водой.
Сушка и хранение. Чистую посуду сушат на воздухе при комнатной температуре или в сушильном шкафу при 100-105 °С, закрывают пробками или бумажными колпачками и хранят до использования в специальных шкафах.
Стерилизация. Пробирки, колбы и флаконы закрывают ватно-марлевыми пробками и бумажными колпачками. Чашки Петри заворачивают по 2 шт в бумагу. Стерилизают сухим жаром в сушильном шкафу в течение 2 ч при 160 °С или автоклавированием в течение 1 ч при 1,5 атм.
Стерильную посуду хранят в плотно закрывающихся шкафах или в ящиках с крышками. Срок хранения стерильной посуды не более 30 суток.
3.1.2 Приготовление питательных сред
Требования к питательным средам. Среда должна содержать основные питательные вещества, достаточное количество воды, обладать определенным осмотическим давлением, иметь оптимальную концентрацию ионов водорода, быть стерильной и желательно прозрачной. Ингредиенты растворяют согласно указанной последовательности, каждый последующий только после полного растворения предыдущего. рН среды доводят до требуемого уровня до внесения агара, иначе агар забивает электрод рН-метра. Агар вносят в холодную среду, выдерживают для набухания 20-30 мин, затем нагревают до полного растапливания агара и фильтруют через ватно-марлевый фильтр.
Стерилизация сред. Питательные среды разливают в чистую посуду (колбы, бутыли, пробирки) на 2/3 объёма. Агаровые среды разливают в круглые плоскодонные колбы (не конические) во избежание проблем при расплавлении. Физиологический раствор для приготовления разведений проб разливают в пробирки по 10 мл (с учётом того, что при стерилизации 1 мо раствора испрарится) или в колбы по 93 мл. Посуду закрывают ватно-марлевыми пробками и бумажными колпачками. На колпачках записывают название среды и дату приготовления. Среды, предназначенные для автоклавирования текучим паром или при давлении 0,5 атм, разливают в стерильную посуду.
Подготовленные среды стерилизуют в автоклаве при режиме, предписанном для той или иной среды в зависимости от её состава. Агаровые среды, не содержащие термолабильных соединений (углевода, белки и т.п.), стерилизуют при 0,5 атм в течение 20 мин.
Для насыщенного (сухого) пара температура стерилизации в зависимости от избыточного давления (таблица 1), а продолжительность стерилизации от объёма (таблица 2).
Таблица 1 – Зависимость температуры стерилизации от избыточного давления
Режим |
Температура, °С |
Текучий пар |
105 |
Избыточное давление 0,5 атм |
115 |
Избыточное давление 1,0 атм |
121 |
Избыточное давление 1,5 атм |
135 |
Таблица 2 – Зависимость продолжительности стерилизации от объёма среды
Объём среды, мл |
Время прогрева, мин |
500 |
8 |
1000 |
12 |
2000 |
20 |
Необходимо подготовить жидкую синтетическую питательную среду на основе сахарозы, 1500 мл, разливается в 2 колбы ёмкостью 1 л и в 2 колбы ёмкостью 500-750 мл.
Состав питательной среды, г/л:
– глюкоза – 50,0;
– NH4H2PO4 – 2,0;
– KCl – 0,5;
– MgSO4 7H2O – 0,25;
– FeSO4 – 0,15;
– MnSO4 – 0,015;
– дрожжевой экстракт – 5.
Среду стерилизовать 10 мин при 1 атм.
Необходимо приготовить твёрдые агаризованные питательные среды для контроля качества засевных дрожжей упрощенным методом. Для выявления общего количества бактерий – 75 мл питательной среды. В качестве среды можно использовать дрожжевой агар с 4 % сахарозы, либо сусло-агар с 12 % сухих веществ. Для выявления кислотообразующих бактерий – 75 мл такой же среды с добавлением 4 % мела. Для выявления спорообразующих бактерий – 75 мл среды.
Необходимо приготовить твёрдые агаризованные питательные среды для контроля численности молочнокислых бактерий, например среду для КМАФАнМ, 300 мл, разлить в 3 колбы ёмкостью 250 мл. В 24 пробирки наливают физиологический раствор (0,9 %-ный раствор хлорида натрия) по 10 мл (с учётом того, что при стерилизации 1 мо раствора испрарится).
