
- •Тема 1. Морфология микроорганизмов. Микроскопический метод исследования микроорганизмов. Простые и сложные методы окраски бактерий Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Этапы развития микробиологии
- •Предмет и задачи медицинской микробиологии.
- •Организация работы и оборудование микробиологической лаборатории, правила работы в ней.
- •Аппаратура, используемая в микробиологической лаборатории:
- •Правила работы в микробиологических лабораториях.
- •3. Освоение техники микроскопии с иммерсионным объективом:
- •Разрешающая способность иммерсионного микроскопа – 0,2 мкм.
- •5. Освоение техники приготовления мазка из агаровой культуры бактерий и окраски его простым способом.
- •Устройство светового микроскопа. Сущность и техника иммерсионной микроскопии. Правила работы с микроскопом.
- •Морфология бактерий
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 2. Морфология микроорганизмов. Структура бактериальной клетки. Сложные методы окраски бактерий. Окраска по граму. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Структура бактериальной клетки.
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 3. Морфология микроорганизмов. Капсулы, споры, жгутики бактерий Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов Микроскопия демонстрационных препаратов
- •Тема 3. Морфология и классификация бактерий, спирохет, риккетсий, хламидий, микоплазм и актиномицетов. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Методы микроскопического исследования
- •Самостоятельная работа студентов
- •3. Выявление подвижности протея методом «раздавленной капли».
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •2. Знакомство с методами асептики, антисептики, дезинфекции и стерилизации.
- •Тема 5. Физиология бактерий. Дыхание и размножение бактерий. Методы культивирования аэробов и анаэробов Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Рост и размножение микроорганизмов.
- •Дыхание бактерий
- •Самостоятельная работа студентов
- •2. Выделение чистой культуры анаэробных бактерий из почвы (демонстрация):
- •Тема 6. Физиология бактерий. Ферменты бактерий. Выделение чистых культур аэробных и анаэробных бактерий Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Ферменты бактерий и методы их определения
- •Самостоятельная работа студентов
- •2. Выделение чистой культуры анаэробных бактерий из почвы (демонстрация).
- •Тема 7. Ферменты бактерий. Бактериологический метод исследования. Итоговое занятие по теме "морфология и физиология микробов»
- •Самостоятельная работа студентов.
- •Тема 8. Вирусы бактерий (бактериофаги) Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 9. Генетика микроорганизмов. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Генетика микроорганизмов.
- •Молекулярно-генетические методы идентификации микроорганизмов
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 10. Экология микроорганизмов. Микр0флора организма человека. Микробиологические основы химиотерапии инфекционных болезней. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •8. Знакомство с количественным определением чувствительности бактерий к антимикробным препаратам с помощью е-теста. Педиатрические аспекты темы
- •Тема 11. Экология микроорганизмов. Микробиология воды, воздуха, почвы, пищевых продуктов Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Распространение микробов в природе
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 12. Учение об инфекции. Факторы патогенности бактерий. Роль макроорганизма, внешней среды и социальных условий в развитии инфекции. Формы инфекции Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Патогенность микроорганизмов. Экспериментальное воспроизведение инфекции
- •Самостоятельная работа студентов
- •1. Освоение биологического метода диагностики.
- •2. Изучение факторов патогенности микробов на примере St.Aureus.
- •3. Вскрытие лабораторных животных и взятие материала для бактериологического исследования
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 13. Учение об иммунитете. Виды иммунитета. Неспецифическая резистентность. Серологические реакции Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Понятие об иммунитете. Антигены и антитела Серологический метод исследования в микробиологии
- •Реакции иммунитета (серологические реакции).
- •Самостоятельная работа студентов
- •Продолжение работы по идентификации культуры, выделенной из органов зараженного животного в результате биопробы:
- •Постановка и учет развернутой реакции агглютинации с сывороткой крови больного при подозрении на бруцеллез (14 день заболевания).
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 14. Учение об иммунитете. Серологические реакции. Антигены и их характеристика. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 15. Учение об иммунитете. Клетки иммунной системы. Иммунный статус организма человека и методы его оценки. Современные иммунологические методы Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Серологический метод исследования. Методы оценки иммунного статуса организма человека. Иммуномодуляторы
- •Методы оценки иммунного статуса организма человека.
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 16. Учение об иммунитете. Специфическая профилактика и лечение инфекционных заболеваний. Диагностические биопрепараты. Аллергены Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Медицинские иммунобиологические препараты для профилактики и лечения инфекционных болезней
- •Иммунные сыворотки и иммуноглобулины
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 17. Учение об инфекции и иммунитете. Практические аспекты иммунологии. Контрольное занятие (тестовый контроль и устное собеседование) Рекомендуемая литература
- •Приложение – цветные вкладки
2. Изучение факторов патогенности микробов на примере St.Aureus.
а). Гемолизин. Произведен посев культуры стафилококка на кровяной МПА. Гемолизин определяют по образованию зон разрушения эритроцитов вокруг колоний.
б). Плазмокоагулаза. Чистая культура стафилококка внесена в 1 мл стерильной плазмы крови. Реакция учитывается после инкубации при 370 С в течение 2 часов. При наличии у штамма стафилококка плазмокоагулазы наблюдается коагуляция плазмы.
в). Дермонекротоксин. Кролику внутрикожно вводят 0,2 мл 2х-миллиардной взвеси стафилококка. При наличии некротоксина на месте инъекции образуется инфильтрат с последующим некрозом ткани.
г) Гиалуронидаза гидролизует гиалуроновую кислоту, которая перестает образовывать сгусток при добавлении уксусной кислоты. Для определения этого фермента в пробирку с гиалуроновой кислотой вносят суточную культуру бактерий или фильтрат бульонной культуры и инкубируют в течение 15 мин при 370 С. Затем добавляют 2—3 капли концентрированной уксусной кислоты. В пробах, где содержится гиалуронидаза, образования сгустка не происходит.
д). Лецитиназа выявляется при посеве золотистого стафилококка на желточно-солевой агар, содержащий лецитин. Вокруг колоний, выделяющих фермент, образуется зона помутнения с перламутровым блеском в виде радужного венчика.
е). Дермонекротоксин. Кролику внутрикожно вводят 0,2 мл двухмиллиардной взвеси стафилококка. При наличии у культуры дермонекротоксина на месте инъекции образуется инфильтрат с последующим некрозом ткани.
3. Вскрытие лабораторных животных и взятие материала для бактериологического исследования
Павшие или заболевшие животные должны быть вскрыты. Больных свинок и мышей усыпляют с помощью эфирного наркоза. Кроликов умерщвляют путем введения 5 см3 воздуха в ушную вену. Вскрытие делают на специальном столе, соблюдая правила асептики. Перед работой надевают халат и резиновые перчатки. На столе должны быть: доска мягкого дерева, два скальпеля, два пинцета (хирургический и анатомический), ножницы прямые и купферовские, бактериологическая петля, банка с ватой, стекла предметные, горелка, стакан со спиртом и ватой па дне для инструментов, 2% и 5% раствор лизола, а также стерильные пробирки, чашки Петри, ватные тампоны, пипетки пастеровские, физиологический раствор и набор готовых питательных сред в чашках и пробирках.
Перед вскрытием шерсть животного обмывают ватным тампоном, смоченным 2% раствором лизола, труп укладывают на доску, покрытую стерильной бумагой, животом вверх. Лапки широко раздвигают и прикалывают к доске иглами или привязывают к крючкам по углам доски. После фиксации животного осматривают наружные покровы и разрезают кожу от лобка до нижней челюсти. По направлению передних и задних лапок кожу рассекают боковыми надрезами. Скальпелем отсепаровывают кожу от подкожной клетчатки, осматривают паховые и подмышечные лимфатические узлы. Из измененных лимфатических узлов готовят четыре мазка-отпечатка и производят посев на питательные среды. После этого приступают к вскрытию грудной и брюшной полостей, остерегаясь попадания дезинфицирующего раствора внутрь.
Грудную полость вскрывают, подняв мечевидный отросток пинцетом, ножницами перерезают ребра в области хрящей. Осматривают грудную полость и при наличии изменений в органах из части их делают мазки-отпечатки и посевы на питательные среды. Из легких готовят три мазка-отпечатка. Обязательно исследуют кровь из сердца, для чего верхушку его прижигают раскаленным скальпелем и в этом месте, проколов мышцу стерильной пастеровской пипеткой, набирают кровь, готовят мазок и высевают на питательные среды.
Брюшную полость вскрывают, придерживая пинцетом переднюю брюшную стенку, и ножницами рассекают ткани от лобка до диафрагмы, а боковыми надрезами к паху и у диафрагмы широко открывают брюшную полость, сохраняя неповрежденным кишечник.
При осмотре органов брюшной полости особое внимание обращают на слизистые оболочки желудочно-кишечного тракта и печень. Из этих органов готовят мазки-отпечатки (из селезенки - 2, а из печени -1) и делают посевы в соответствующие среды.
Черепную коробку после удаления кожного покрова головы, вскрывают. Череп смазывают йодом и мелкой пилкой распиливают на уровне верхнего края глазницы, боковых затылочных костей и по наружному краю лобных костей.
Крышку черепной коробки удаляют и производят посев из мозга. Головной мозг извлекают после пересечения спинного мозга на уровне большого затылочного отверстия.
Во время вскрытия необходимо следить за тем, чтобы заразный материал не попадал на стол. Категорически запрещается класть на стол инструменты, применяющиеся для вскрытия трупа. После вскрытия рабочее место убирают и дезинфицируют. Труп животного помещают в дезинфицирующий раствор, сжигают или автоклавируют. Доску или кювету протирают спиртом и прожигают или заливают на сутки дезинфицирующим раствором. Инструменты стерилизуют кипячением или автоклавированием. Ход исследования оформляется протоколом.
После вскрытия труп животного сжигают или автоклавируют, а при невозможности это сделать заливают на сутки 5% лизолом или 5% карболовой кислотой. Инструменты тщательно очищают от крови и стерилизуют кипячением в течение 40 мин, а доску для вскрытия заливают дезинфицирующим раствором.
Мазки-отпечатки на предметных стеклах фиксируют в смеси Никифорова 10-15 мин, окрашивают и изучают. Посевы помещают в термостат.