- •3 Из истории изучения нуклеиновых кислот
- •Методы выделений днк
- •Нуклеотиды
- •6 Определение нуклеотидной последовательности (секвенирование) днк
- •Метод Маскама и Гилберта (химический)
- •Метод Сэнгера (ферментативный)
- •7 Вторичная структура днк
- •Денатурация (плавление) днк
- •9 Третичная структура днк (суперспирализация днк)
- •Негистоновые белки хроматина
- •10 Виды рнк
- •10 Распад нуклеиновых кислот
- •13 Биосинтез пуриновых нуклеотидов
- •14 Биосинтез пиримидиновых нуклеотидов
- •15 Распад белков
- •17 Биосинтез аминокислот: общие сведения
- •18 Биосинтез днк
- •21 Обратная транскрипция
- •24 Физико-химические свойства белков
- •Белки как амфотерные макромолекулы
- •Коллоидные и осмотические свойства белков
- •Гидратация белков и факторы, влияющие на их растворимость
- •Высаливание
- •Денатурация (денативация) и ренатурация (ренативация)
- •25 Влияние рН на заряд белка
- •26 Методы количественного определения белков
- •2. Классификация аминокислот по химическому строению радикалов
- •3. Классификация аминокислот по растворимости их радикалов в воде
- •4. Изменение суммарного заряда аминокислот в зависимости от рН среды
- •5. Модифицированные аминокислоты,присутствующие в белках
- •6. Химические реакции, используемые для обнаружения аминокислот
- •30 Аминокислотный состав белков
- •31 Первичная структура
- •32 Третичная структура
- •Общие свойства катализаторов
- •Строение ферментов
- •Классификация ферментов
- •3. Витамин а (ретинол, антиксерофтальмический) Необходимо знать формулу витамина а.
- •4. Витамин д (холекальциферол, антирахитный) Сам витамин д не обладает витаминной активностью, но он служит предшественником 1,25-дигидрокси-холекальциферола (1,25-дигидроксивитамина д3).
- •44 Активация аминокислот
- •51 52 Ликогенолиз, фосфоролиз, гидролиз гликогена
- •Регуляция скорости β-окисления
- •Пептидные гормоны, используемые для оценки функционального состояния спортсменов (по в.А. Рогозкину, 1989)
- •Стероидные гормоны, используемые для оценки функционального состояния спортсменов (по в.А. Рогозкину, 1990)
- •Эффекты катехоламинов в организме человека
- •59 Иерархия регуляторных систем
- •60 Взаимосвязь обмена веществ в организме
4. Изменение суммарного заряда аминокислот в зависимости от рН среды
При нейтральных значениях рН все кислотные (способные отдавать Н+) и все основные (способные присоединять Н+) функциональные группы находятся в диссоциированном состоянии.
Поэтому в нейтральной среде аминокислоты, содержащие недиссоциирующий радикал, имеют суммарный нулевой заряд. Аминокислоты, содержащие кислотные функциональные группы, имеют суммарный отрицательный заряд, а аминокислоты, содержащие основные функциональные группы, - положительный заряд (табл. 1-3).
Изменение рН в кислую сторону (т.е. повышение в среде концентрации Н+) приводит к подавлению диссоциации кислотных групп. В сильно кислой среде все аминокислоты приобретают положительный заряд.
Напротив, увеличение концентрации ОН- групп вызывает отщепление Н+ от основных функциональных групп, что приводит к уменьшению положительного заряда. В сильно щелочной среде все аминокислоты имеют суммарный отрицательный заряд.
5. Модифицированные аминокислоты,присутствующие в белках
Непосредственно в синтезе белков организма человека принимают участие только 20 перечисленных аминокислот. Однако в некоторых белках имеются нестандартные модифицированные аминокислоты - производные одной из этих 20 аминокислот. Например, в молекуле коллагена (фибриллярного белка межклеточного матрикса) присутствуют гидроксипроизводные лизина и пролина - 5-гидроксилизин и 4-гидроксипролин.
Модификации аминокислотных остатков осуществляются уже в составе белков, т.е. только
Модифицированные
аминокислоты, найденные в составе белков
после окончания их синтеза. Введение дополнительных функциональных групп в структуру аминокислот придаёт белкам свойства,
Схема. Структура полярных заряженных аминокислот в диссоциированной форме
Таблица 1-3. Изменение суммарного заряда аминокислот в зависимости от рН среды
необходимые для выполнения ими специфических функций. Так, ?-карбоксиглутаминовая кислота входит в состав белков, участвующих в свёртывании крови, и две близко лежащие карбоксильные группы в их структуре необходимы для связывания белковых факторов с ионами Са2+. Нарушение карбоксилирования глутамата приводит к снижению свёртываемости крови.
Значение гидроксильных групп в составе лизина и пролина описано в разделе 15.
6. Химические реакции, используемые для обнаружения аминокислот
Способность аминокислот вступать в те или иные химические реакции определяется наличием в их составе функциональных групп. Так как все аминокислоты, входящие в состав белков, содержат у ?-углеродного атома амино- и карбоксильную группы, они могут вступать в характерные для всех аминокислот химические реакции. Наличие каких-либо функциональных групп в радикалах индивидуальных аминокислот определяет их способность вступать в специфичные для данных аминокислот реакции.
Нингидриновая реакция на ?-аминокислоты
Для обнаружения и количественного определения аминокислот, находящихся в растворе, можно использовать нингидриновую реакцию.
Эта реакция основана на том, что бесцветный нингидрин, реагируя с аминокислотой, конденсируется в виде димера через атом азота, отщепляемый от ?-аминогруппы аминокислоты. В результате образуется пигмент красно-фиолетового цвета. Одновременно происходит декарбоксилирование аминокислоты, что приводит к образованию СО2 и соответствующего альдегида. Нингидриновую реакцию широко используют при изучении первичной структуры белков (см. схему ниже).
Так как интенсивность окраски пропорциональна количеству аминокислот в растворе, её используют для измерения концентрации ?-аминокислот.
Нингидриновая реакция, используемая для определения ?-аминокислот
Специфические реакции на отдельные аминокислоты
Качественное и количественное определение отдельных аминокислот возможно благодаря наличию в их радикалах особенных функциональных групп.
Аргинин определяют с помощью качественной реакции на гуанидиновую группу (реакция Сакагучи), а цистеин выявляют реакцией Фоля, специфичной на SH-группу данной аминокислоты. Наличие ароматических аминокислот в растворе определяют ксантопротеиновой реакцией (реакция нитрования), а наличие гидроксильной группы в ароматическом кольце тирозина - с помощью реакции Миллона.
