3. Внутрибольничная (нозокомиальная) инфекция.

Понятие "нозокоминальные инфекция" впервые предложено Европейским региональным бюро ВОЗ в 1979 Это инфекционные заболевания, которые возникают у пациентов вследствие их инфицирования в лечебных учреждениях, или любое инфекционное заболевание работника больницы, которое развилось вследствие его работы в данном лечебном учреждении.

Внутрибольничные инфекции представляют одну из важных проблем современного здравоохранения и считаются одними из частых осложнений при госпитализации больных. Наиболее частыми возбудителями внутрибольничной инфекции являются резистентные к антибиотикам штаммы золотистого стафилококка, палочки синего гноя, протея, кишечной палочки, клебсиелы, грибки а также их ассоциаций. Основными факторами передачи внутрибольничной инфекции является воздух, руки, многочисленные предметы внешней среды (инструментарий, аппаратура, перевязочный материал, белье и др.). Для профилактики и борьбы с внутрибольничной инфекцией проводят комплекс санитарно-гигиенических мероприятий, направленных на выявление и изоляцию источника инфекции и ликвидации путей ее проникновения. С этой целью в каждом лечебном учреждении создается комиссия по инфекционному контролю (КИК), в состав которой входит: председатель (один из заместителей главного врача по лечебной работе), госпитальный врач-эпидемиолог или его помощник, главная медицинская сестра, врач-микробиолог, инфекционист , хирург и терапевт.

4. Асептика и ее принципы

Асептика (a - без, sepsis - гниение) была разработана в XIX столетии немецким хирургом Э. Бергманом и его учеником Э. Шимельбушем. В 1890 на конгрессе хирургов в Берлине Э. Бергман доложил о новом методе борьбы с раневой инфекцией и продемонстрировал больных, оперированных в асептических условиях.

Здесь же был официально принят основной постулат асептики: "Все, что контактирует с раной, должно быть чистым и свободным от микробов (стерильным)".

  Введение асептики открыло новую эру в развитии хирургии. Благодаря асептики у хирургов появилась возможность расширить диапазон оперативных вмешательств, проводить пересадку органов и тканей.

  Под асептикой следует понимать комплекс профилактических методов, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану, создание безмикробных, стерильных условий для хирургической работы посредством использования организационных мер, технических средств, химических и физических факторов.

Сегодня асептический метод хирургической работы сочетается с использованием различных антисептических препаратов.

  Основной целью асептики является уничтожение микробов на всех предметах, инструментах, перевязочном материале и др., Которые могут контактировать с раной при обследовании или лечении.

Источники и пути распространения инфекции в хирургии.

4.1. Воздушно-капля инфекция и ее профилактика Сегодня доказано, что количество нагноений операционных ран находится в прямой пропорциональной зависимости от степени микробного загрязнения воздуха операционной.

Под воздушной инфекцией следует понимать микроорганизмы, находящиеся в воздухе и могут попадать в рану. Количество микробов в воздухе пропорциональна его загрязненности. Борьба с запыленностью и загрязненностью воздуха в операционных и перевязочных является основой профилактики воздушной инфекции. Большое значение в борьбе с инфекционным загрязнением имеет своевременную уборку операционной, кондиционирования воздуха, облучения ультрафиолетовыми лампами, соблюдение противомикробного режима.

Под капельной инфекцией следует понимать микроорганизмы, распространяются и передаются другому человеку при разговоре, кашле, чихании. Для защиты раны от капельной инфекции применяют маски. Следует помнить, что при разговоре капельки слюны могут разлетаться на расстояние 1,5-2 м и медицинский персонал может быть источником заражения больных. В слюну попадает инфекция при наличии кариозных зубов, тонзиллита, нагноительных процессов рта, носа.

  Для профилактики воздушно-капельно инфекции проводится комплекс мероприятий:

1. Все больные, в том числе и медицинские работники, с повышенной температурой тела, катаральными явлениями со стороны дыхательных путей в операционную не допускаются. Все работники, принимающие участие в операциях, независимо от занимаемой должности должны периодически обследоваться у ЛОР-врача с обязательным бактериологическим контролем рото- и носоглотки. (1 раз в квартал)

2. При наличии у обследованных в посевах патогенных микробов (бациллоносители) проводят соответствующее лечение (санация).

3. Обязательным является ношение маски, закрывающей рот и нос. Сегодня доказано, что маска из четырех слоев марли задерживает 90-94% микроорганизмов. Маска из шести слоев задерживает до 97% бактерий. Для уменьшения проникновения капель слюны между слоями марли дополнительно следует помещать прокладки из ваты.

4.2. Профилактика контактной инфекции в хирургии. Основным путем инфицирования ран в операционной есть контактный (около 90%): перчатки, инструменты, иглы, перевязочный материал, руки хирурга и помощников. Для предупреждения контактного инфицирования необходимо, чтобы все, что контактирует с раной, было чистым и свободным от микробов.

  Основными способами профилактики контактной хирургической инфекции (деконтаминации) являются: дезинфекция, предстерилизационной обработки инструментов и стерилизация.

А. Дезинфекция. Под дезинфекцией следует понимать комплекс мероприятий направленных на уничтожение патогенных и потенциально патогенных для человека микроорганизмов (исключением спор) на инструментах, белье, предметах пользования и др., Которые могут вызывать инфекционные заболевания.

Целью дезинфекции является полное уничтожение или уменьшение популяции микроорганизмов на всех объектах внешней среды, окружающих больного. Различают: механическую дезинфекцию (влажная уборка, проветривание помещений, стирка белья и др.); физическую дезинфекцию (ультрафиолетовое облучение, прокаливания инструментов, сжигание перевязочного материала и т.д.); химическую дезинфекцию. С этой целью наиболее часто используют (различные химические средства - дезинфектанты) 0,2-1% раствор хлорной извести, 0,2-3% раствор хлорамина, 3-10% раствор крезола, 1-5% раствор дегмициду, корзолина т. При проведении дезинфекции следует учитывать не только их эффективность, но и переносимость дезинфектантов людьми и материалами (белье, одежда и т.д.).

  Согласно приказов Министерства ОС Украины № 120 от 25. 05. 2000 по профилактике внутрибольничного и профессионального заражения ВИЧ - инфекцией и приказа по № 408 от 12.07.89 года "О мерах по сниженной заболеваемости вирусным гепатитом" все медицинские изделия, инструментарий и др ., используемые для операции и различных манипуляций, должны подвергаться дезинфекции, предстерилизационной обработке и стерилизации. С этой целью все инструменты (канюли, пинцеты, скальпели, катетеры, кровоостанавливающие зажимы, ножницы и др.) После каждого их использования, разбирают и погружают в 3% раствор хлорамина на 60 мин или 3-10% раствор крезола т.

Если инструментарий загрязненный кровью, его погружают в 1% раствор бензоата натрия на 1 час или в 4% раствор пероксида водорода на 90 мин. Дезинфицирующий раствор применяют однократно. При загрязнении дезинфектанта кровью его дезинфицирующие свойства снижаются, в связи с чем необходимо иметь вторую емкость для дезинфекции после предварительного промывания и очистки инструментов в дезинфицирующем растворе. Если инструменты изготовлены из коррозионестийкого металла и не выдерживают контакта с дезинфектантом, то их промывают в емкости с водой. Промывные воды обеззараживают кипячением в течение 30 мин или засыпают сухой хлорной известью в соотношении 1: 5, перемешивают и оставляют для обеззараживания в течение 1 ч в емкости с крышкой. Отходы крови (сгустки, сыворотка,) отработанный перевязочный материал, загрязненный кровью, гнойными выделениями и др. высыпают в емкости с крышками, засыпают сухой хлорной известью в соотношении 1: 5, перемешивают и выдерживают 1 ч.

Белье, загрязненное кровью, гноем, погружают в дезинфектант из расчета 5 л раствора на 1 кг сухого белья (3% раствор хлорамина, сульфохлортаин 0,5%) - на 2 часа. Затем прополаскивают в воде и стирают.

Б. предстерилизационной обработка инструментов

После дезинфекции, одившы резиновые перчатки, медицинский инструментарий промывают в проточной воде над раковиной до полного удаления загрязнений и дезинфицирующего средства. Мыть инструментарий лучше в холодной воде, так как горячая вода может вызвать коагуляцию биологических материалов (кровь, мокрота и др.) Что затрудняет их последующее удаление. Промытый и продезинфицированный медицинский инструментарий замачивают в горячем (50-550С) моющем растворе (моющее средство "Биолот", "Лотос" или "Ариэль" - 5 г порошка, 170 мл 3% раствора пероксида водорода на 825 мл воды) на 15 мин. После этого каждый инструмент тщательно очищают, снова промывают, сначала под проточной водой в течение 3 мин, а затем ополаскивают в течение 30-40 с в дистиллированной воде. Наиболее простым и эффективным методом очистки инструментов является мытье их щетками. Наряду с ручной очисткой инструментов и других орудий в больших операционных блоках используют моющие машины с ультразвуковой или механической очисткой. Промытый инструментарий помещают в сушильный шкаф и сушат при температуре 80 - 85 ° С до полного исчезновения влаги.

Следует помнить, что согласно приказу №120 Министерства здравоохранения от 25 мая 2000 по профилактике внутрибольничного и профессионального заражения ВИЧ-инфекцией разборка, очистка, промывка, полоскания медицинского инструментария, приборов, аппаратов и другого медицинского орудия после его предыдущей дезинфекции необходимо проводить только в резиновых перчатках и использовать другие средства индивидуальной защиты ..

Медицинские работники обязаны быть осторожными во время проведения манипуляций с режущими и колющими инструментами (иглы, скальпели, ножницы и т.п.).

Проверка предстерилизационной обработки инструментария. Качество очистки изделий от биологического загрязнения в последнее время, вместо бензидиновой, ортотолуидинового и амидопириновой проб, проверяют с помощью пробы с "Гемотест-М", "Делатестом", препарата "Факел-2" или с реактивом азопирама. Контролю подлежит 1% одновременно обработанных инструментария. Наличие остатков моющих, дезинфицирующих средств на инструментах (изделиях) определяют путем постановки азопирамовой или фенолфталеиновой пробы.

Проба с "Гемотест-М". Сначала готовят рабочий раствор, состоящий из смеси щелочного раствора хромогена (реактив 1) и пероксида водорода (реактив 2). На исследуемый инструмент наносят несколько капель рабочего раствора или протирают поверхность изделия салфеткой смоченной раствором. При наличии остатков крови возникает фиолетово-синюю окраску.

  Проба с препаратом "Факел-2". Препарат представляет собой порошок белого цвета, выпускается в пластмассовых ампулах (1000 проб). Для проведения пробы на остатки крови готовят рабочий раствор. Открывают крышку ампулы, которая служит дозатором и на нее насыпают препарат (0,02), который растворяют в 10 мл кипяченой воды. При этом получают 0,2% раствор реактива "Факел - 2". К этому раствору добавляют 1 мл 3% раствора пероксида водорода (соотношение 1:10). На исследуемый предмет (инструмент) наносят несколько капель раствора или его протирают смоченной салфеткой. При наличии следов крови раствор препарата "Ф-2" приобретает розовый или вишневого окраску. Время наблюдения - 5 мин. Рабочий раствор используют в течение 30 мин.

Проба с азопирамом. Перед проверкой качества очистки инструментария готовят рабочий раствор, смешивая азопирам с 3% раствором перекиси водорода (1: 1). Рабочий раствор должен быть использован в течение 1-2 ч, при появлении спонтанного розовой окраски его меняют. На исследуемый инструмент наносят несколько капель рабочего раствора или протирают поверхность изделия салфеткой смоченной в растворе. При наличии следов крови на загрязненных участках инструментов (изделий) появляется фиолетовая окраска, которая в течение нескольких секунд превращается в розово-синее или бурый. С помощью азопирама проявляют также наличие пероксидаз растительного происхождения, окислителей (хлорамин, хлорная известь, моющие средства, ржавчина, кислоты и т.п.). Исследования осуществляют при комнатной температуре (не выше 25 ° С).

Фенолфталеиновой проба. Готовят 1% раствор фенолфталеина и наносят на вымытую предмет 2-3 капли раствора. При наличии моющего раствора появляется розовая окраска.

В. Стерилизация

Стерилизация (sterilis - знеплиднення, лат.), Это процесс полного уничтожения всех форм микробной жизни, включая бактерии, их споры, вирусы и грибки в растворах, на белье, инструментах, приборах, аппаратах и другом орудии медицинского назначения.

Для осуществления стерилизации используют комплекс различных физических и химических методов.

Методы стерилизации. Для этого в основном используют термические методы (прокаливания, пастеризацию, кипячение, автоклавирование, воздушную (сухожаровой), лучевую и газовую стерилизацию.

Прожарки. Этот метод стерилизации можно только использовать в ургент¬них ситуациях, когда срочно необходимо приготовить отдельные инст¬рументы: иглодержатель, иглы, зажимы и т. Однако следует помнить, что при прокаливании открытым пламенем достичь надежного обеззараживания невозможно, тем более, что этот способ стерилизации портит инструментарий.

Пастеризация - метод обеззараживания органических жидкостей с помощью температуры + 60-1000С, при которой погибают только вегетативные формы микробов. Ее используют в основном при изготовлении белковых препаратов, питательных сред путем повторного нагрева до + 55-60 ° С в течение 30 мин.

Кипячение применяют теперь очень редко, только в небольших лечебных учреждениях. (Кипячение шприцев и игл в медицинских учреждениях допускается только в исключительных (экстремальных) ситуациях. В повседневной жизни теперь используют только одноразовые шприцы. Медицинские работники должны помнить, что такой вид стерилизации, как кипячение, не совсем надежным, поскольку вирусы ВИЧ-инфекции, гепатита и споры отдельных бактерий могут выдерживать даже длительное кипячение.

Автоклавирования - стерилизация паром под давлением. Этот метод является наиболее распространенным и используется для стерилизации перевязочного материала, белья, инструментария. Действующим агентом при автоклавировании является водяной пар под высоким давлением (1 - 2 атм) и температуре (+120 - 132 С). Стерилизацию паром под давлением проводят в специальных аппаратах-автоклавах. Давление пара в автоклаве контролируется манометром и специальным предохранительным клапаном, через который автоматически сбрасывается пар позволяет поддерживать соответствующее давление и температуру внутри автоклава Каждый паровой стерилизатор состоит из трех частей: парообразователя-нагревателя, стерилизационной камеры и кожуха - для защиты обслуживающего персонала от возможных ожогов . Теперь выпускают специальные автоматизированные системы для стерилизации паром под давлением.

При давлении пара 1 атм стерилизация происходит при температуре +120 0С, срок стерилизации - 45 минут.

  При давлении пара 1,5 атм температура в автоклаве повышается до +127 0С, срок стерилизации сокращается до 30 мин.

При давлении 2 атм температура достигает внутри аппарата + 1320С, а срок стерилизации при этом равна 20 мин.

Материал для стерилизации укладывают в специальные коробки, которые используются для стерилизации различных предметов и последующего их хранения. К ручке замка бикса прикрепляют специальную бирку, на которой указывают дату стерилизации, материал и его владельца.

Существует три основных режима стерилизации: 1) при давлении 1,1 атм (tо 119,6) - 1 ч; 2) при давлении 1,5 атм (tо 126,8) - 45 мин; 3) при давлении 2 атм (tо 132,9) - 30 мин.

По окончании стерилизации биксы на 20 - 30 мин оставляют в горячем автоклаве для просушки, при слегка при открытых дверцах. После выемки боксов с автоклава закрывают отверстия в стенках боксов и отмечают время и дату стерилизации. Содержание Бикс (материал) считается стерильным в течение 72 часов. Однако в последнее время выпускают специальные стерилизационные коробки (биксы) с антибактериальными фильтрами (КСПФ), в которых срок хранения стерильного материала продолжается до 1 месяца.

Следует отметить, что температура и продолжительность стерилизации зависит от типа стерилизации и материала.

Так стерилизацию инструментария, шприцев проводят под давлением пара 1,5 атм в течение 45 мин.

Резиновые трубки, катетеры, дренажи перед стерилизацией выдерживают в течение 1 ч в 1% растворе хлорамина или хлорациду, диоксидина, затем промывают проточной водой и высушивают, заворачивают в марлю и стерилизуют при давлении 1 атм в течение 45 мин.

Однако в последнее время используют резиновые изделия только одноразового пользования (дренажи, трубки, катетеры, перчатки), которые стерилизуют в заводских условиях.

Следует помнить: если стерильный бокс открывается, его надо использовать в течение одного дня.

Контроль стерильности материала в автоклаве осуществляют с помощью механических индикаторов (запись времени, температуры, давления); стандартных химических индикаторов - трубок и специального Термоиндикаторная бумаги, которые меняют свой цвет в зависимости от температуры и экспозиции; химических веществ, изменяющих свои физические свойства при температуре 120-1320С (порошок серы - 1170С, антипирин, амидопирин - 1100С, резорцин - 1190С, бензойная кислота - 1210С, мочевина - 1320С). Вещество насыпают в небольшую пробирку, затыкают куском ваты или марлевым шариком и помещают среди предметов, подлежащих стерилизации. Если индикатор не изменился (не расплавился, не изменил цвета), то стерилизация не состоялась и материалом пользоваться нельзя. В последнее время для контроля качества стерилизации в автоклаве используют биологические индикаторы (полоски с бактериальными спорами Bacillus stearothermophilus)

Стерилизация сухим жаром (воздушная стерилизация). Действующим агентом при этом методе является нагретый воздух. Стерилизацию осуществляют в специальных - сухожаровых шкафных стерилизаторах, которые работают от электричества. Этот метод в основном используют для стерилизации хирургического инструментария. Металлический инструментарий, предварительно подготовлен и отобран для соответствующей операции, укладывают на металлические сетки и помещают в стерилизатор и сначала высушивают в течение 30 мин при температуре 80 ° С при открытой дверце. Затем шкаф закрывают и начинают стерилизацию.

 

       За 10-15 мин температура внутри шкафа дося¬гае + 1600С. С помощью регулятора ее можно поднять до +200 ˚С. Продолжительность сте¬рилизации зависит от температуры: при +160 С - 150 мин;

  +180 С - 60 мин;

  +200 С - 15 мин.

Стерилизацию хирургического инструментария преимущественно осуществляют при температуре 180 ° С в течение 60 мин.

По истечении срока стерилизации и остывания шкафа-стерилизатора до 60 - 70 ° С дверку приоткрывают и при окончательном его остывании осуществляют выемку инструментария.

Для контроля стерилизации в сухожаровых шкафах викорис¬товують механические индикаторы (запись параметров каждого цикла); химические индикаторы - левомицетин (температура плавления + 150-160 оС); сахарозу и винную кислоту (+180 С); гидрохинон, тиомочевина (более +180 С). Наиболее удобным является промышленный индикатор, представляет собой запаянную трубку с порошком сахарозы и винной кислоты; при температуре + 1800С порошок превращается в жидкость. Кроме того, один раз в неделю контроль качества стерилизации осуществляют с помощью биологических индикаторов с использованием спор Bacillus subtilis).

В современных стационарах стерилизацию различных материалов и хирургического инструментария осуществляют в специальных центральных стерилизационных отделениях (СВ.) Довольно часто сухожаровые шкафы устанавливают в стерилизационный комнатах рядом с операционной. В таких шкафах можно стерилизовать несколько наборов различного инструментария.

Лучевая стерилизация. При этом методе стерилизации викорис¬товують ультрафиолетовое облучение или β- и g-лучи. Для этого используют изотопы Со60 и Сs138. Доза лучевой радиации должна составлять 20 - 25 мкГр, что требует строгих мер безопасности. В связи с чем лучевую стерилизацию проводят в специальных помещениях и она заводским методом (в лечебных учреждениях она не проводится). С помощью g-про¬менив стерилизуют шовный материал, эндопротезы, катетеры и т.д.. Лучевая стерилизация достаточно надежна. Предметы могут храниться в герметичной упаковке стерильными в течение многих месяцев.

В последнее время в практику стали входить низкотемпературные методы стерилизации с использованием раствора 40% надуксусной кислоты, бактерицидные свойства которой обусловлены сильной окислительной действием. Чаще всего используется препарат надуксусной кислоты - "Дезоксон - 1".

Химические методы стерилизации. К химическим методам относят газовую стерилизацию и стерилизацию растворами антисептиков.

Газовая стерилизация. Применяют в основном для стерилизации изделий из полимерных материалов (эндоскопы, изделия из пластмассы). Наиболее распространенным газом, который используется для стерилизации, является оксид этилена. Этот газ опасен, может взрываться, а потому его проще использовать в смеси с двуокисью углерода, бромидом метила. Оптические устройства и детали к ним можно стерилизовать в парах формалина. Для этого в специальный герметичный стеклянный или пластмассовый цилиндр (камеры) дно кладут 2-3 формалиновые таблетки (параформ) или наливают 10-20 мл формалина. Стерилизацию проводят в течение суток.

Промышленность выпускает специальные газовые стерилизаторы. По окончании стерилизации материал помещают в вентиляционную камеру.

Для контроля газовой стерилизации используют механические и химические индикаторы, свидетельствующие о содержании оксида этилена в воздухе (для охраны здоровья работников и пациентов), а также биологические индикаторы - споры Bacillus subtilis (1 раз в неделю).

Стерилизация растворами антисептиков. Режущий инструментарий (скаль¬пели, ножи, ножницы, лезвия, иглы), а также резиновые изделия, портятся при нагревании, можно стерилизовать в растворах. Для стерилизации в основном используют три растворы тройной раствор (20 г формалина, 10 г карболовой кислоты, 30 г соды и дистиллированная водо (до 1 литра), 96о этиловый спирт. Подготовки инструментария, как правило, используют 960 этиловый спирт и 6% раствор перекиси водорода. в последнее время для химической стерилизации используют спиртовой раствор хлоргекседина, первомур, Корзолин, бодефен и др. Инструменты в разобранном виде заливают одним из названных растворов за 2 - 3 часа до начала операции.

В отдельных случаях для стерилизации резиновых изделий (перчаток, катетеров, дренажей) ви¬ко¬ристовують диоцид (1: 3000), 2% раствор хлорамина, новосепт, рокал т.

Контроль стерильности.

Контроль за стерильностью материала, инструментария осуществляется бактериологическим методом, который является наиболее достоверным и с помощью которого можно определить вид микробов.

Посевы на стерильность, взятые из хирургического инструментария. Хирургический инструментарий небольшого размера получают из бикса или мягкой упаковки с помощью стерильного пинцета и погружают в пробирки с питательной средой. Как исключение, в отдельных случаях, если все простерилизованные инструменты в одной упаковке есть больших размеров (иглодержатели, Ранорасширители и т.д.), то проводят смыв с поверхности инструмента стерильной салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или стерильной проточной водой, и помещают в пробирку с тиогликолевой средой. Аналогичные смывы с других инструментов высевают в пробирки со средой Хоттингера и Сабуро.

Посев на стерильность, взятые из катетеров, резиновых перчаток и других изделий из резины и пластикатов. Контроль за стерильностью зондов, катетеров, резиновых перчаток и других изделий из резины производят путем полного погружения мелких изделий в питательную среду, от больших отрезают небольшие кусочки (1-2 см) и помещают в такое же среду.

Результаты посева получают через 48-72 ч. Такой контроль за стерильностью инструментария и других изделий, используемых в хирургии, необходимо проводить 1-2 раза в месяц с соответствующей регистрацией в журналах. Важное значение для профилактики контактной инфекции имеют: подготовка и обработка рук перед операцией, надевания стерильной белья и обработка операционного поля.

Г. Подготовка и обработка рук перед операцией

В обычных условиях на коже человека постоянно живет и размножается нормальная, автохтона микрофлора, 10-20% которой может находиться в глубоких слоях кожи, в том числе, в сальных и потовых железах, волосяных фолликулах); резидентная флора, которая преимущественно представлена коагулазоотрицательные кокками и дифтероиды и транзиторная микрофлора, которую медицинский персонал получает в процессе работы, контактируя с инфицированными пациентами или загрязненными объектами внешней среды. Поэтому медицинские работники должны тщательно следить за своими руками: их надо держать в надлежащей чистоте. Хирурги, операционные сестры должны избегать загрязнения рук. При наличии ссадин, царапин, а тем более гнойных заболеваний участвовать в операциях категорически запрещается. Не допускается маникюр, ногти должны быть коротко подрезаны. При огрубевшей или сухой коже рекомендуют на ночь смазывать руки вазелином, ланолином или специальным кремом. Традиционно различают три уровня обработки рук (табл. 1).

Таблица 1.

Уровни обработки рук

№ п / п Вид обработки Цель обработки

1. Бытовой уровень (механическая обработка рук) Удаление грязи и транзиторной флоры, контаминуючои кожу рук медицинского персонала в результате контакта с инфицированными или колонизированными пациентами и / или объектами окружающей среды

2. Гигиенический уровень (обработка рук с применением антисептиков) Удаление или уничтожение транзиторной микрофлоры рук

3. Хирургическая антисептика (помет-вна обработка рук с одиванням стерильных перчаток) Полное уничтожение транзиторной, резидентной, контаминуючои микрофлоры.

 

Механическая обработка рук. Это обычное мытье рук с мылом. Его осуществляют: перед и после обследования пациентов; после посещения туалета; перед приготовлением и раздачей пищи, перед едой и во всех случаях, когда руки явно загрязнены. С помощью обычного мытья рук с мылом удаляют большую часть (до 99%) транзиторной микрофлоры с умеренно загрязненных рук. Для этого лучше использовать мыло в дозаторах однократного применения. Для высушивания кожи рук следует использовать одноразовые салфетки. Использование полотенца (даже индивидуального) нецелесообразно, поскольку он быстро загрязняется и инфицируется микробами.

Гигиеническая обработка рук. Ее проводят по механическую обработку рук, только для удаления или уничтожения транзиторной микрофлоры применяют еще антисептические растворы или кремы. Гигиеническую антисептику осуществляют: перед выполнением инвазивных (внутривенных, внутримышечных и др.) Процедур; перед и после манипуляций с ранами; перед и после манипуляций с катетерами; после контакта с биологическими выделениями, предметами, которые содержат кровь или является вероятно инфицированными (например, после осмотра инфицированного пациента, измерение ректальной температуры и др.).

Хирургическая обработка рук. Целью хирургической обработки рук является полное уничтожение (транзиторной, резидентной, контаминуючои) микрофлоры для минимизации риска нарушения операционной стерильности в случае повреждения перчаток. Ее осуществляют перед каждым оперативным вмешательством и выполнением инвазивных манипуляций (спинномозговая пункция, плевральной полости, крупных сосудов и др.).

Существует несколько традиционных (классических) и современных методов хирургической обработки рук. Однако классические методы обработки рук Спасокукоцкого-Кочергина, Альфельда, Фюрбрингера и др. на сегодня представляют лишь исторический интерес и теперь не используются.

Современная хирургическая обработка рук (европейский стандарт, ЕN - 1500) состоит из трех этапов:

1) механической очистки рук;

2) дезинфекции рук кожным антисептиком; 3) одивання стерильных одноразовых перчаток.

Перед мытьем рук необходимо снять кольца и другие украшения, очистить и подрезать ногти. Под умеренным струей теплой воды следует сполоснуть, хорошо намылить руки и тереть друг о друга не менее 10 с. Каждое движение повторяют не менее 5 раз, особое внимание следует уделять кончикам пальцев и их внутренним поверхностям. Механическую обработку рук осуществляют в течение 30 с - 1 мин

   Правила обработки рук (европейский стандарт, ЕN - 1500): 1 стадия (ладоней к ладони, включая запястья);

2 стадия (права ладоней на левую тыльную поверхность кисти и левую ладонь на права тыльную поверхность кисти);

  3 стадия (ладоней к ладони с перекрещиванием пальцев);

  4) стадия (внешняя поверхность пальцев на противоположной ладони с перекрещенными пальцами);

  5 стадия (коловидне растирание правого большого пальца в закрытой ладони левой руки и на оборот);

  6 стадия (коловидне втирание вперед и назад сомкнутыми кончиками пальцев правой руки и левой ладони и на оборот).

 

Щетки использовать не обязательно. Если они используются, то они повини быть стерильными, мягкими, одноразового использования и ими обрабатывают только околоногтевые участка.

После последнего ополаскивания, руки насухо вытирают стерильными салфетками и на кисти рук наносят порциями по 3 мл антисептик и, не допуская высыхания, втирают его в кожу рук до середины предплечий, соблюдая вышеприведенной схемы (рис. ...). Нанесение антисептика повторяют не менее двух раз, общий расход антисептика составляет 10 мл. Для нанесения антисептика используют различные устройства и дозаторы. После обработки рук антисептиком одивають халат и стерильные перчатки (см стр. ... ..). Перчатки одивають только на сухие руки Общий срок хирургической обработки рук должен составлять - 5 мин.

При продолжительности работы в перчатках более 3:00 обработку рук повторяют с последующей заменой перчаток. По данным различных исследователей проницаемость инфекции через латексные перчатки составляет 52%, из виниловые - 63%. Поэтому следует помнить, что использование перчаток не является альтернативой митя и антисептической обработки рук. После окончания операции перчатки снимают, руки протирают салфеткой, смоченной антисептиком, моют с мылом и увлажняют смягчающим кремом.

Для хирургической антисептики рук используют различные современные антисептики (бонадерм, хлоргеседин, дегмицид, первамур, Стерилиум, Кутасепт и др.).

Обработка рук хлоргексидином (гибитан). Гибитан выпускают в виде 20% водного раствора по 500 мл. Для мытья рук используется 0,5% спиртовой раствор. Для этого препарат разводится в 700 этиловом спирте в соотношении 1:40. После механической очистки рук теплой водой с мылом руки вытирают стерильной салфеткой, а затем два раза обрабатывают в течение 3 мин салфетками, смоченными в растворе.

Обработка дегмицидом. Применяется 1% раствор дегмициду в концентрации 1:30 (1 часть препарата и 29 дистиллированной воды). Обрабатывается, как хлоргексидином.

Обработка рук раствором С-4 (первамур). Способ приготовления: берут 30% раствор пероксида водорода (172 мл) и 85% муравьиной кислоты (81 мг) поочередно сливают в стеклянную бутылку, перемешивают и помещают в кастрюлю с холодной водой на 1-1,5 ч. После охлаждения этот раствор разводят водой (можно водопроводной) до 10 л. Раствор должен быть использован в течение суток. В пяти литрах рабочего раствора могут мыть руки 10-11 человек. Сначала руки моют в течение 1 мин проточной водой с мылом (без щеток), а затем в течение 1 мин в растворе С-4 (без салфеток).

Обработка рук с помощью раствора "Стерилиум". Руки моют с мылом под проточной водой в течение 1-2 мин. Вытирают стерильным полотенцем и обрабатывают раствором "Стерилиум" дважды в течение 2 мин.

После мытья рук по одному из вышеуказанных методов их вытирают насухо стерильными салфетками, одевают халат и перчатки.

 

Для профилактики хирургической инфекции важное значение имеет регулярный контроль за стерильностью рук участников операции. С этой целью один раз в 15-20 дней, перед началом операции проводят посевы из рук хирургов и операционных сестер.

Д. Обработки операционного поля. Операционное поле - место действия хирурга, должно быть без микроорганизмов. С этой целью накануне операции больной принимает ванну или душ и меняет белье. Утром, за 30 - 40 мин перед операцией проводят бритья операционного поля одноразовыми станками, а кожу обрабатывают 70о этиловым спиртом. Заблаговременное или накануне операции бритья кожи, из-за повреждения ее верхних слоев приводит инфицирования, что может быть причиной послеоперационных гнойных осложнений.

Непосредственно перед операцией выбриты операционное поле обрабатывают по методу Гросиха-Филончикова. Суть его заключается в том, что кожу операционного поля обрабатывают 4 раза одним из антисептиков. В последнее время наиболее часто используют раствор йодоната. Его готовят перед операцией (ex tempore): концентрированный 5% раствор йодоната растворяют кипяченой или стерильной водой в соотношении 1: 5.

- Первое смазывание кожи операционного поля осуществляют после предварительного ее мытья бензином или спиртом, протирают два раза стерильными тампонами, смоченными раствором йодоната.

- Второе - перед разрезом, после накрытия больного стерильными простынями.

- Третье - перед починкой кожи

- Четвертое - после наложения швов на кожу. Кроме этих обязательных четырех обработок, кожу операционного поля следует смазывать каждый раз, когда меняют белье вокруг раны (загрязнение, расширение раны и т.д.).

- Операционное поле можно обрабатывать и 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина, надмурашиною кислотой, дегмицидом, Кутасепт, 1% раствором рокалу и др. Для изоляции кожи операционного поля применяются специальные пленки (протекторы) или прокладки, изготовленные из клеенки.

При наличии гнойничков в области операционного поля от плановых операций необходимо воздержаться.

Е. Укладка белья в биксы. Перед укладкой биксы вытирают изнутри и снаружи салфеткой, смоченной 0,5% раствором нашатырного спирта. Затем отодвигают на стенке бикса круговую пластинку, которая закрывает боковые отверстия, отвергают крышку и выстилают дно и стенки бикса пеленкой, салфеткой или простыней. При укладке белья и перевязочного материала в биксы следует соблюдать установленного порядка, позволяет быстро и легко найти необходимый предмет. Белье вкладывают в вертикальном положении, чтобы можно было извлечь из бикса любую вещь, не затрагивая остальных. Перевязочный материал также составляют с тем расчетом, чтобы каждую пачку или пакет можно было вытянуть отдельно. В центральную часть бикса помещают пробирку с серой или другим веществом для контроля стерильности.

В зависимости от мощности операционного блока и назначение операционного белья ее укладывают комплектами. Существует три основных вида укладки боксов:

1.Универсальна укладка, используется при работе в небольших операционных и перевязочной. Бикс условно разделяют на сектора, в каждый из которых заполняют соответствующим видом перевязочного материала и белья: в один сектор укладывают салфетки, во второй - тампоны, в третьей - шарики и тому подобное.

Закладывая материал и белье, при этом виде укладки нужно исходить из такого приблизительного расчета на одну операцию.

халаты, колпачки, маски - 4 шт .;

простыни - 4 шт .;

полотенца или полотняные салфетки - 6 шт .;

шарики - 50 шт .;

салфетки марлевые трех размеров - 10 шт .;

тампоны трех размеров - 10 шт .;

турунды - 1 моток;

бинты марлевые шириной 14 см - 2 шт .;

 

2. Целенаправленная укладка, предназначена для подготовки стерильного материала и инструментов, для выполнения специфических манипуляций, процедур, выполнение малых операций (укладка для трахеотомии, перидуральной анестезии, катетеризации подключичной вены и т.д.).

3. Видовая укладка, применяется в больших операционных, где есть потребность в большом количестве стерильного материала. При этом в один бокс, например, заключают халаты, во второй - простыни, в третий - салфетки и т. Д.

   Когда бокс заполнен, края простыни, который выстилает, заворачивают друг на друга поверх содержимого. В один из боксов поверх простыни закладывают халат, а на него - несколько марлевых салфеток и полотенце. Это необходимо для того, чтобы операционная сестра могла помыв руки, вытереть их и одеть стерильный халат, не открывая остальных белья и материала.

К крышке каждого бикса привязывают клеенчатую этикетку, на которой перечислено содержимое бикса, указана дата стерилизации и фамилия сестры, готовила бокс. Надписи делают простым карандашом. Крышку бикса закрывают, укрепляют крючком, на цепочке и крепко привязывают тесьмой, чтобы она случайно не открылся. В конце проверяют, открыты боковые отверстия боксов.

Использованную и загрязненное белье в операционной собирают в специальные ящики или парусиновые, клеенчатые мешки и отправляют в прачечную и на дальнейшую стерилизацию.