Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Михельсон. Детская анестезиология и реаниматоло...doc
Скачиваний:
0
Добавлен:
01.07.2025
Размер:
58.94 Mб
Скачать

4.4. Очистка и обеззараживание наркозно-дыхательнои аппаратуры

Факт обсеменения наркозных аппаратов и аппаратов ИВЛ патогенной микрофлорой и возможность перекрестного ин­фицирования больных очевидны. Основное или сопутствую­щее заболевание также способствует снижению сопротивляе­мости организма. Доказано отрицательное влияние продлен­ной ИВЛ на состояние слизистой оболочки дыхательных путей и активность мерцательного эпителия. Перекрестное инфицирование и различные предрасполагающие факторы увеличивают опасность возникновения инфекционного про­цесса, что определяет необходимость в очистке и обеззаражи­вании наркозно-дыхательнои аппаратуры.

При проведении предварительной очистки уменьшается количество патогенных микроорганизмов, удаляются пироген-ные вещества, кусочки тканей и органические остатки, кото­рые могут быть токсичными или препятствуют процессу дез­инфекции. Для предварительной очистки применяются самые разнообразные моющие средства. Широко используется 0,5 % раствор перекиси водорода, который является хорошим окис­лителем, в сочетании с современными синтетическими мою­щими средствами («Сульфанол» и т.п.). Перечисленные сред­ства обладают высокой очищающей способностью, не влияют на качество стекла, металла, пластмасс, резины, легко смыва­ются. При температуре 50 °С их активность значительно воз­растает.

Промытые под проточной водой детали аппаратов зама­чивают в свежеприготовленном моющем растворе в течение 15—20 мин. Затем ватно-марлевыми тампонами моют отдель­но каждую деталь. Тампоны используют однократно. Вымы­тые детали прополаскивают в проточной и ополаскивают в дистиллированной воде, затем протирают медицинским спиртом. После этого все предметы должны быть выложены на стерильную простыню и тщательно высушены. Этим ме­тодом можно снизить бактериальное обсеменение более чем в тысячу раз.

При последующей дезинфекции учитывается материал, из которого изготовлены детали аппарата. Для термостойких ма­териалов самым простым методом дезинфекции является ки­пячение в течение 30—35 мин в дистиллированной воде с до­бавлением гидрокарбоната натрия (20 г/л) или стерилизация в автоклаве водяным паром при 134 °С. Для нетермостойких ма­териалов лучше использовать химическую дезинфекцию с применением одного из следующих средств: 3 % раствор пере­киси водорода (экспозиция 80 мин), 3 % раствор формальде­гида (экспозиция 80 мин) или одного из официнальных дезин­фицирующих растворов («Аламинол», «Лизетол» и т.п.). При обсеменении микобактериями туберкулеза экспозицию увели­чивают до 2 ч, а при обсеменении возбудителем столбняка или газовой гангрены — до 4 ч. Температура дезинфицирующих растворов должна быть не ниже 18°С. После дезинфекции все детали должны быть промыты стерильной дистиллированной водой и высушены. Хранить их следует в стерильных усло­виях.

Больше всего обсеменению микроорганизмами подверже­ны те части аппаратов, через которые постоянно проходит вы­дыхаемая газовая смесь. В результате микробы оседают на всех присоединительных элементах, коннекторах, гофрированных шлангах, которые следует дезинфицировать по описанной ме­тодике после каждого использования.

Наружные поверхности аппаратов подлежат ежедневной очистке водой с моющими средствами. Особенно тщательно следует чистить места около кнопок, вентилей, кранов и ручек, окончательная обработка — протирание салфетками из марли, смоченными 1 % раствором хлорамина. Если аппарат использовался у инфицированного больного, то должен быть обработан 3 % раствором перекиси водорода с моющим сред­ством, а также двукратно 1 % раствором хлорамина с интерва­лом между протираниями в 10—15 мин.

Дезинфекция аппаратов в собранном виде осуществляется парами формальдегида. После мытья присоединительных эле­ментов и шлангов аппараты собирают и к тройнику пациента присоединяют емкость с 10 % раствором формальдегида. Ем­кость ставят на электронагревательный прибор и доводят рас­твор до кипения; при этом пары формальдегида непрерывно поступают в аппарат. Экспозиция составляет 60 мин, а при инфицировании микобактериями туберкулеза — 90 мин. Ней­трализацию паров формальдегида производят, подключая к аппарату тем же способом емкость с 10 % раствором аммиака (экспозиция — 30 мин). Затем аппарат продувают воздухом в течение 30—50 мин. Минутный объем вентиляции при обезза­раживании аппаратов в собранном виде должен быть не менее 20 л/мин.

Очистка и обеззараживание наркозно-дыхательной аппара­туры требуют достаточно много времени и специально выде­ленного персонала. Описанными методами можно обойтись в хирургических стационарах и отделениях интенсивной тера­пии малой и средней мощности. В больших многопрофильных хирургических клиниках все большее применение находят специальные дезинфицирующие камеры с большой пропуск­ной способностью. В качестве примера можно привести дез­инфицирующую камеру «Aseptor 8800» фирмы Drager (Герма­ния). Полностью автоматизированная, она применяется для дезинфекции крупных медицинских аппаратов, включая нар­козные аппараты и респираторы (дезинфицирующее средство — формальдегид). В каждой камере можно одновременно дезинфицировать 2—5 аппаратов в собранном виде. Одновре­менно происходит обеззараживание не только поверхности аппаратов, но и внутренних просветов патрубков, шлангов, мешков и т.д. Формальдегид нейтрализуется аммиаком, а затем камера «продувается» воздухом. Таким образом, всего за 40—120 мин один человек может провести обеззараживание нескольких аппаратов.

Контроль за эффективностью качества очистки комплекту­ющих изделий из органических соединений осуществляют путем постановки различных проб (бензидиновая, фенолфта­леиновая). Для контроля стерильности проводят смывы с внутренних поверхностей масок, коннекторов, шлангов, воз­духоводов и т. п. с последующим посевом на питательные среды для выявления патогенной флоры.