
- •Часть 2. Лабораторный практикум по комплексной
- •Экспериментальная часть
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •Лабораторная работа №2 Переработка пиритных огарков с получением пигментов
- •Теоретическое обоснование
- •Экспериментальная часть Лабораторная работа № 2.1 Получение железного сурика
- •Лабораторная работа № 2.2 Получение желтой охры
- •Лабораторная работа № 2.3 Получение мумии
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •2.2. Переработка и использование техногенных отходов
- •При производстве строительных материалов
- •Лабораторная работа №3
- •Использование техногенных отходов для производства
- •Вяжущих материалов
- •Теоретическое обоснование
- •Лабораторная работа № 3.1. Производство гипсовых вяжущих
- •Лабораторная работа № 3.2. Получение воздушной извести
- •Лабораторная работа № 3.3. Получение портландцемента
- •Лабораторная работа 3.4. Получение вяжущих автоклавного твердения
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •Лабораторная работа №4 Производство керамических материалов с использованием техногенных отходов
- •Теоретическое обоснование
- •Лабораторная работа № 4.1. Производство строительной керамики
- •Лабораторная работа № 4.2. Получение шлакощелочных жаростойких бетонов
- •Лабораторная работа № 4.3. Подбор состава глазури для керамики
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •2.3. Комплексная переработка газообразных и жидких отходов Лабораторная работа №5 Обезвреживание кислых дымовых газов с получением химически осажденного мела
- •Теоретическое обоснование
- •Экспериментальная часть
- •Обработка данных
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •Теоретическое обоснование
- •Экспериментальная часть
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •Теоретическое обоснование
- •Экспериментальная часть
- •Определение влажности
- •Определение зольности
- •Получение угля-сырца и активного угля
- •Определение осветляющей способности активированного угля по метиленовому голубому
- •Определение сорбционных характеристик угля-сырца и активного угля
- •Определение общей обменной емкости
- •Определение суммарного объема микро- и мезопор
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •Лабораторная работа № 8
- •Экспериментальная часть
- •Представление результатов эксперимента
- •Характеристика процесса гидролиза
- •Контрольные вопросы
- •Теоретическое обоснование
- •Экспериментальная часть
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •Переработка бытовых и сельскохозяйственных отходов методом компостирования
- •Теоретическое обоснование
- •Выделение свободноживущих азотфиксирующих микроорганизмов
- •Экспериментальная часть
- •Колориметрическое определение общего количества азота в компосте
- •Определение содержания углерода в компосте
- •Представление результатов эксперимента
- •Изучение последовательности разложения микроорганизмами отходов органической природы
- •Экспериментальная часть
- •Теоретическое обоснование
- •Экспериментальная часть
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •Лабораторная работа № 12 Получение спирта в результате процесса дрожжевого брожения с использованием отходов пищевого производства
- •Теоретическое обоснование
- •Экспериментальная часть
- •Представление результатов эксперимента
- •Контрольные вопросы
- •Литература
- •Методика обработки результатов эксперимента при проведении контроля прочности строительных материалов
- •Оглавление
Выделение свободноживущих азотфиксирующих микроорганизмов
Свободноживущие азотфиксирующие организмы распространены повсеместно и встречаются среди бактерий самых разных таксономических групп, относящихся как к хемотрофам, так и фототрофам к аэробам и анаэробам.
Наиболее хорошо изученным среди свободноживущих аэробных азотфиксирующих бактерий являются бактерии рода Azotobacter.
Azotobacter chroococcum – это соединенные в пары одиночные кокковидные клетки размером 3-7 мкм, в старой культуре клетки обычно окружены слизистой капсулой, а колонии темнеют до темно-серого и темно-коричневого цвета. Активность азотфиксации составляет до 20 мг азота на 1 г потребленного органического вещества.
Наиболее изученными анаэробными свободноживующими азотфиксирующими организмами являются маслянокислые бактерии Clostridium pasteurianum, активность азотфиксации которых достигает до 12 мг азота на 1 г потребленного органического вещества.
Для выделения азотфиксирующих организмов из природных сред используют метод получения накопительных культур на синтетических средах, в которых отсутствуют источники азота. В частности используется среда Эшби, г/л: манит (или глюкоза, или сахароза) – 20; KH2PO4 – 0,2; MgSO4 – 0,2; NaCl – 0,2; K2SO4 – 0,1; CaCO3 -5,0; рН среды 6,0-6,5.
Питательную среду по 30 мл, не стерилизуя, разливают в колбы объемом 100-150 мл и вносят комочек почвы (1/2 чайной ложки), закрывают ватными пробками и термостатируют при 28-300 С.
На 5-6 сутки на поверхности жидкости образуется бурая пленка, при микроскопировании которой обнаруживаются клетки азотобактера в виде кокков и диплококков. Некоторые клетки покрыты слизистой капсулой.
Элективными условиями для азотобактера, способного фиксировать азот атмосферы, являются аэрация, отсутствие в питательной среде азота и присутствие в среде фосфора и кальция, к которым требователен азотобактер.
В некоторых случаях наблюдается вспенивание жидкости в колбе и появление запаха масляной кислоты, что указывает на развитие в среде на дне колбы в анаэробных условиях бактерий Clostridium pasteurianum.
Для изучения морфологии микроорганизмов готовят препараты: один из пленки с поверхности среды для выделения азотобактера (фиксированный препарат, негативно окрашенный тушью); второй из нижних слоев жидкости для выявления клостридий (препарат «раздавленная капля» с добавлением раствора Люголя).
Образование масляной кислоты в среде обнаруживают по реакции с хлорным железом. 5 мл жидкой среды из накопительной культуры переносят в пробирку, добавляют 2 мл 2% раствора хлорнокислого железа и нагревают до кипения. Пары образующегося раствора маслянокислого железа в проходящем свете имеют кроваво-красный цвет.
Экспериментальная часть
Приготовить питательные среды для целюлозоразлагающих и азотфиксирующих бактерий по методике, описанной выше, выделить накопительную культуру этих бактерий.
Затем необходимо взвесить почву и отходы, которые будут подвергаться компостированию, далее следует рассчитать количество воды, необходимой для того, чтобы процесс компостирования происходил в оптимальных условиях - 60%.
На дно 8 сосудов насыпают слой почвы высотой 2 см, следующий слой высотой 10-15 см – отходы растительные отходы (стебли растений, стружка, опилки, семенная шелуха и др.), не допуская уплотнения отходов при засыпании и дозировке. Поверхность отходов засыпают слоем почвы высотой 1,5-2 см.
Два сосуда будут контрольными, в них увлажнение производится только водой без добавки бактериальной суспензии. Увлажняют смесь до 50-60% (количество воды должно быть рассчитано предварительно). Для эксперимента используется предварительно отстоянная водопроводная вода. Воду добавлять осторожно по каплям.
В следующие два отдельных сосуда добавить суспензию целюлозоразлагающих бактерий, в другие два - суспензию азотфиксирующих бактерий, в остальные два – смесь целюлозоразлагающих и азотфиксирующих бактерий. Бактерии вносить вместе с водой, соотношение бактериальной суспензии и воды 1:10.
Через месяц провести химические анализы на содержание Собщ и Nобщ во всех рассмотренных вариантах. Каждую неделю измерять температуру компостируемой смеси.
Готовый продукт – биокомпост приобретает темный цвет, запах прелых листьев, имеет высокое содержание питательных веществ, в том числе подвижные формы.