- •Державний вищий навчальний заклад херсонський державний аграрний університет
- •Мікробіологія
- •Спеціальність 6.040106 «Екологія онс та зп»
- •Херсон - 2014
- •Заняття № 1.
- •Зміст заняття
- •Самостійна робота студентів
- •Оснащення заняття
- •Методика виконання завдання
- •Контрольні питання
- •Методика виконання завдання
- •Контрольні питання.
- •Оснащення мікробіологічної лабораторії
- •Методи стерилізації і обладнання.
- •Контрольні питання.
- •Заняття № 4
- •Зміст заняття
- •Самостійна робота студентів.
- •Оснащення заняття
- •Методика виконання завдання
- •Контрольні питання.
- •Заняття № 5
- •Обладнання заняття
- •Методика виконання завдання.
- •Техніка посіву
- •Самостійна робота студентів
- •Поживні середовища і характер росту мікроорганізмів
- •Контрольні питання
- •Заняття № 6
- •Самостійна робота студентів
- •Методика проведення заняття.
- •Контрольні питання:
- •Заняття № 7
- •Самостійна робота студентів
- •Оснащення заняття
- •Зміст заняття
- •Бактерії групи кишкових паличок.
- •Визначення бактерій групи кишкової палички
- •Бактерії рода Proteus.
- •Казеїн-коагулюючі стафілококи.
- •Контрольні питання.
- •Заняття 8 - 9
- •Оснащення заняття
- •Зміст заняття
- •Методика виконання завдання
- •Дослідження грунту
- •Контрольні питання:
- •Заняття № 10.
- •Зміст заняття
- •Самостійна робота студентів.
- •Методика виконання завдання.
- •Заняття № 11 Тема: Перетворення мікроорганізмами сполук азоту.
- •Зміст заняття
- •Оснащення заняття
- •Рекомендована література
Методика виконання завдання
Виготовлення бактеріального препарату — мазка. Бактерійний препарат — мазок готують на чистому знежиреному предметному склі. Знежирення здійснюється такими способами:
а) зануренням скла в розчин спирт — ефір 1:1;
б) над полум'ям спиртівки (проводячи над полум'ям поверхню скла);
в) протиранням скла серветкою обробленою господарським милом.
Для рівномірного розподілу культури мікроорганізмів взятих з щільного поживного середовища, використовують краплину дистильованої води.
Культуру мікробів розподіляють бактеріологічною петлею по склу рівномірним тонким шаром на площі 1-2 см2.
Під час взяття культури мікроорганізмів з рідкого середовища використовують пастерівську піпетку або бактеріологічну петлю.
Відбір всього матеріалу для дослідження проводять над полум'ям спиртівки, бактеріологічну петлю до і після використання пропалюють. Потім препарат висушують на повітрі при кімнатній температурі.
Наступний етап - фіксація препарату-мазка, який виконується фізичним або хімічним методом.
Хімічний метод заснований на здатності деяких речовин віднімати воду (гідрофільні властивості) - спирти, ацетон, ефіри або їх суміші.
Фізичний метод - термічна обробка препарату (60оС), який використовується шляхом прогрівання зворотної сторони препарату 3-5 разів над полум'ям спиртівки.
Контроль за температурою здійснюється шляхом доторкування предметного скла до тильної сторони долоні.
Фіксація препарату переслідує мету: закріпити мікроби на склі, вбити бактерії для запобігання зараження і забруднення мікрофлорою оточуюче середовище, розруйнувати оболонку клітини для кращого проникнення фарби.
Фарбування.
Розрізняють прості, складні і спеціальні способи фарбування мікроорганізмів.
Просте фарбування дозволяє побачити форму і розмір бактерій, взаємне розміщення, дати родову назву мікроорганізмам.
Простий спосіб фарбування передбачає використання однієї фарби: карболового фуксину (експозиція 1-2 хвилини) або метиленової сині (експозиція 3-4 хвилини).
Після закінчення зазначеного терміну фарбу змивають, препарат висушують фільтрованим папером і проводять мікроскопію. Роблять малюнки у зошиті.
Контрольні питання
1· Основні правила роботи і техніки безпеки в мікробіологічній лабораторії;
2· Механічні частини світлового мікроскопу;
3· Оптичні частини світлового мікроскопу;
4· Як підготувати мікроскоп до роботи?
5· Принцип роботи електронного мікроскопу;
6· Будова люмінесцентного мікроскопу;
7· Одиниці вимірювання розмірів бактерій, дріжджів, рикетсій, мікоплазм та вірусів;
8· Визначення загального збільшення світлового мікроскопу;
9· Техніка мікроскопії бактерійних препаратів з імерсійною системою;
10· Основні форми бактерій (кулясті, паличкоподібні, звивисті);
11· Що дає імерсійна система під час мікроскопії бактерійних препаратів?
12· Хто вперше виготовив мікроскоп?
13· Вклад в розвиток ґрунтової мікробіології в Росії С.Н. Виноградського, В.Л. Омелянського, С.П. Костичева, В.С. Буткевича;
14· Значення мікробіології у природі та сільському господарстві;
15· Місце мікробіології у системі звичайних та спеціальних наук;
16· Значення робіт Л. Пастера, Р. Коха, І.Мечнікова, Ценковського в розвитку мікробіології.
17 Які матеріали необхідні для виготовлення бактерійних препаратів — мазків?
18 Які розчини використовують для фарбування бактерій?
19 Методи фіксації бактерійних препаратів і їх призначення;
20 Способи обробки предметного скла;
21 Техніка фарбування бактерій простим методом;
22 Правила сушки препаратів;
23 Вимоги щодо відбору бактеріальної культури для виготовлення мазку;
24 Методика нанесення бактеріальної культури на предметне скло, взятої з щільного і рідкого поживного середовища.
Заняття № 2
Тема: Складні і спеціальні методи фарбування мікроорганізмів.
Мета заняття: Навчити студентів фарбуванню мікробів складним способом за методом Грама та спеціальним методам фарбування спор і капсул мікроорганізмів.
ЛІТЕРАТУРА: I. 41-46; IV. 46-47; VІ. 32-33;VІІ.36-39
Зміст заняття
Викладач:
1. проводить опитування студентів з пройденого та наступного матеріалу;
2. демонструє фарбування бактерій за методом Грама, спор і капсул за методом Пєшкова і Буррі, пояснює сутність цих методів.
Самостійна робота студентів
Кожен студент:
1. готує мазки з чистих культур і проводить їх фарбування за методом Грама, Пєшкова, Буррі;
2. проводить мікроскопію препаратів, замальовує в зошиті, підписує під малюнками латинські назви бактерій.
Оснащення заняття
Забезпечити кожного студента:
- мікроскопом, предметним склом, спиртівкою, бактеріологічною петлею, практикумом з мікробіології.
Забезпечити кожні дві людини:
- фільтрованим папером, імерсійною олією, промивалкою з ванночкою, олівцем по склу, фарбуючими розчинами, реактивами (генціанвіолет у вигляді смужок фільтрувального паперу, розчин Люголя, 96% спирт, карболовий фуксин, метиленовою синню, 0,5% водний розчин нейтральроту, склянка з дезинфікуючим розчином );
Забезпечити підгрупу студентів:
- трьома, пробірками з грамнегативною (Асеtоbаctег асеti) і грампозитивною культурою (Вас. subtilis, Вас. mycoides), спороутворюючою (Вас. mesentericus), капсуло утворюючою (Вас. mucylaginosus, або Аzоtоbасtег).
Студенти повинні мати кольорову пасту або олівці (синього і червоного кольору).
