- •Таксономия боррелий, лептоспир и трепонем, и названия заболеваний, вызываемых ими.
- •Микроскопическая диагностика сифилиса.
- •Реакции, используемые в серодиагностике сифилиса. Общая характеристика каждой из них.
- •Серодиагностика сифилиса с использованием рпга.
- •Серодиагностика сифилиса с использованием ифа.
- •Серодиагностика сифилиса с использованием рск.
- •Методы микробиологической диагностики лептоспироза.
- •Методы микробиологической диагностики боррелиозов
- •Ультраозвученный трепонемный антиген
- •Кардиолипиновый антиген.
- •Инактивированная лептоспирозная вакцина.
- •Эритроцитарный трепонемный диагностикум.
- •Гемолитическая кроличья сыворотка к эритроцитам барана.
- •Единый бруцеллезный диагностикум.
- •Бруцеллезные вакцины.
- •Проба Бюрне, компоненты, постановка, учет результатов.
- •Серодиагностика бруцеллеза.
- •Методы микробиологической диагностики туляремии. Характеристика перечисленных методов.
- •30. Виды трепонем, вызывающих невенерические трепонематозы, название этих болезней.
- •40. Иммунотерапия столбняка.
- •41. Иммунотерапия ботулизма.
- •42. Иммунотерапия дифтерии.
- •43. Иммунотерапия газовой анаэробной инфекции.
- •44. Специфическая профилактика столбняка.
- •45. Специфическая профилактика ботулизма.
- •46. Специфическая профилактика дифтерии.
- •47. Специфическая профилактика газовой анаэробной инфекции.
- •48. Возможные осложнения при иммунотерапии антитоксическими сыворотками. Метод Безредка.
- •49. Характеристика стафилококков.
- •50. Токсины и ферменты «агресии» стафилококков.
- •51. Методы микробиологической диагностики стафилококковой инфекции.
- •52. Специфическая иммунопрофилактика стафилококковой инфекции.
- •53. Определение критериев патогенности стафилококков.
- •54. Бактериологический метод исследования при стафилококковом сепсисе.
- •55. Характеристика стрептококков.
- •56. Факторы патогенности стрептококков. Перечислить болезни, вызываемые стрептококками.
- •57. Методы микробиологической диагностики стрептококковой инфекции.
- •58. Характеристика менингококков. Заболевания, вызываемые ими. Факторы патогенности.
- •59. Принцип патогенеза эпидемического цереброспинального менингита.
- •60. Методы микробиологической диагностики эпидемического цереброспинального менингита.
- •61.Специфическая профилактика менингококковой инфекции.
- •62.Характеристика гонококков.
- •63.Бактериологический метод исследования гонореи.
- •66.Гонококковая вакцина.
- •70.Характеристика возбудителей туберкулеза.
30. Виды трепонем, вызывающих невенерические трепонематозы, название этих болезней.
T. pertenue – фрамбезия, T. endemicus – беджель, T. carateum – пинта
Фрамбезия – хронический рецидивирующий генерализованный трепонематоз с поражением кожи, слизистых, лимфоузлов, костей и суставов, внутренний органы не поражаются. Беджель – хронический генерализованный трепонематоз, характеризующийся поражением кожи и слизистой ротоглотки, лимфоузлов, костей и суставов, внутренние органы не поражаются. Пинта – хронический трепонематоз, характеризующийся поражением кожи в виде нарушения пигментации и гиперкератоза. Путь заражения – контакт с кожей.
Вопрос №31. Характеристика возбудителя столбняка.
Морфология: грамположительные палочки с закругленными концами, располагаются цепочками или одиночно. Подвижны за счет перетрихий. Образует споры. Овальные или круглые, расположены терминально, их диаметр больше в 2-3 раза толщины клетки, за счет чего имеет форму барабанной палочки.
Культуральные св-ва:
Строгие анаэробы
Т = 37°С
рН = 6,8– 7,4
Питательная среда: а)МПА, желатин: колонии S – формы, прозрачные гладкие; R – формы шероховатые серовато желтые
б)высокий столбик сахарного агара: в виде чечевичек и пушинок с плотным центром
Питательная среда: бульоны Китт – Тороцци: Медленный рост с равномерным помутнением и неприятным запахом
Б/х св-ва:
Некоторые штаммы ферментируют глюкозу
Медленно расщепляют белки до а.к., а затем до кислоты, водорода, аммиака, индола.
Образует желатиназу
Нет пероксидазы, каталазы, цитохромоксидазы
Антигенные св-ва:
О- антиген
Н-антиген
Экзотоксин
Вопрос №32. Характеристика возбудителя ботулизма.
Морфология: Имеет вид прямой палочки с закругленными концами. Грамположительно окрашиваются молодые культуры, а грамотрицательно – 4-5 суточные культуры. Подвижны за счет перетрихий. При неблагоприятных условиях образуют споры – приобретают вид теннисных ракеток.
Культуральные св-ва:
Строгие анаэробы
Т = 28 – 35 °С
рН = 7,2 – 7,4
Питательная среда: а) Кровяной агар: колонии серовато – желтоватые, линзообразные с зоной гемолиза вокруг б)Печеночный агар: колонии звёздооьразные полиморфные в)Агар столбиком: колонии ввиде пушинок с плотным центром.
Г) бульоны Китт – Тороцци, из гидролизатов казеина, мясо или рыбы: Помутнение с газооброзованием
Б/х св-ва:
1 группа - выраженные протеолитические св-ва, гидролизуют желатин и эксулин, ферментируют глюкозу, мальтозу, проявляют липазную активность на яичном агаре.
2 группа – выраженная сахаролитическая активность, лишены протеолитической активности.
3 группа – гидролизует желатин, липазная активность.
4 группа - гидролизует желатин, не проявляют сахаролитических св-в и липазной активности.
Антигенные св-ва:
Н- антиген
О-антиген
Экзотоксин ( A, B, C1,C2, D, E, F,G)
Вопрос №33. Характеристика возбудителя дифтерии.
Морфология:
Прямая или слегка изогнутая тонкая грам + палочка, неподвижная, обладает полиморфизмом, концы заостренные или булавовидные. Спор и капсул нет. Утолщены на концах за счет наличия зерен волютина ( выявляют при окраске по Леффлеру и Нейссеру) В мазках располагаются под углом , напоминают букву V.
Культуральные св-ва:
Факультативный анаэроб. Температура 37. На простых пит. средах не растет. Используют дифференциально – диагностические среды, содержащих гемолизированную кровь и теллурит Na или K, которые подавляют рост сопутствующей микрофлоры. На этих средах обр. колонии черного или серого цвета. Элективные среды накопления – агар+ нормальная лошадиная сыворотка ( среда Ру) или свернутую кровяную сыворотку + сахарный бульон ( среда Ру – Леффлера). Образуются точечные, выпуклые желто-кремовые колонии с гладкой или слегка зернистой поверхностью.
Gravis обр. плоские, крупные, серо-черные колонии с волнообразными краями. На жидкой – пленка и крупнозернистый осадок.
Mitis обр. мелкие, гладкие, блестящие, черные, полупрозрачные колонии с ровными краями. На жидкой – помутнение + порошкообразный осадок.
Б/х св-ва:
Ферментация глюкозы и мальтозы с обр. кислоты,
не разлагает сахарозу,
не продуцирует уреазу и не обр. индол,
продуцирует цистиназу,которая расщепляет цистеин, в следствие чего наблюдается почернение столбика агара.
Антигенные св-ва:
к-антигены
Вопрос №34. Характеристика возбудителей газовой анаэробной инфекции.
С. perfringens, С. novyi и С. Septicum.
С. peifringens — длинная грамположительная папочка .Имеет серовары А, В, С, D и F. В жидких питательных средах, приготовленных из гидролизатов мяса или казеина (pH 7,4). при 37—43 °С растет быстро (3—8 ч) с бурным газообразованием и изменением pH в кислую сторонуСуществует три устойчивых варианта колоний С. perfringens\ гладкий (S). слизистый (М) и шероховатый (R). Колонии, выросшие на поверхности кровяного агара, часто окружены одной или двумя зонами гемолиза и при выдерживании на воздухе приобретают зеленоватую окра ску. Многие штаммы вырабатывают ферменты, расплавляющие желатин. Все штаммы сбраживают с образованием кислоты и газа глюкозу, галактозу, мальтозу, лактозу, левулезу, сахарозу и не ферментируют маннит и дульцит. Некоторые штаммы разлагают глицерин и инулин.
С. septicum — полиморфная грамлоложительная палочка с суб- терминальными спорами. Строгий анаэроб. На поверхности плотных питательных сред только через 48 ч образует блестящие полупрозрачные колонии диаметром до 4 мм с неровными бахромчатыми краями, имеет тенденцию к ползучему росту. Чаще образует R-форму колоний. В глубине 1% агара образует колонии диаметром 1—2 мм с уплотненным центром и радиально отходящими перепутанными нитями. В 2% агаре колонии имеют вид чечевиц, сердца и т.п., иногда с протуберанцами. На кровяном агаре узкая зона гемолиза появляется вокруг колонии только на 2-е сутки. Ферментирует с образованием кислоты глюкозу, мальтозу, лактозу, галактозу, фруктозу, салицин и не разлагает глицерин и маннит, разжижает желатин и свертывает лакмусовое молоко с образованием кислоты и газа. Очень редко разлагает сахарозу. Не образует индол, не восстанавливает нитраты в нитриты и не вырабатывает большого количества сероводорода.
Вопрос №35. Бактериологический метод исследования при дифтерии.
Исследуемый материал: дифтеритические пленку или отделяемое пораженной слизистой оболочки зева, носа, смывы с различных предметов, продукты питания ( молоко, мороженное)
1 день: Питательные среды: кровяно-теллуритовый агар, сывороточно-теллуритовая среда, Среда Бучина.
Материал втирают на поверхность среды тампотом. Термостат, Т= 37, 24 ч.
2 день: На средах с теллуритом: Gravis обр. плоские, крупные, серо-черные колонии с волнообразными краями.
Mitis обр. мелкие, гладкие, блестящие, черные, полупрозрачные колонии с ровными краями.
Среда Бучина: колонии синего цвета.
Окраска по Граму, Нейссеру.
ВЧК. Пересев на сывороточную среду в чашку с фосфатно-пептонным агаром. Термостат.
3 день: Учет результатов. ВЧК сеют на пестрый ряд, среду с цистеином.
4 день:Учет результатов.
Вопрос №36. Бактериологический метод исследования при газовой анаэробной инфекции.
Исследуемый материал: кусочки пораженных и некротизированных тканей. экссудат, гной, кровь, отделяемое ран.
1 день: исследуемый материал гомогенируют, посев на среду Китта- Тароцци ( или на др. среды с анаэробными условиями). В термостат.
2 день: учет результатов. Микроскопия. Мазок. Пересев на питательные среды.( возможно применение трубки Вейон - Виньяля. )Т=37, 24ч. Для ВЧК.
3 день: учет результатов. Микроскопия. Мазок.
На кровяных средах образуют зоны гемолиза. Колонии имеют тенденцию к сливному росту.
Пересев на среду Китта- Тароцци.
4 день: Учет результатов. Проверяют подвижность, устойчивость к кислороду, на отсутствие каталазной и оксидазной активности, способность ферментировать углеводы и разжижать желатин. Проводят реакцию нейтрализации.
Вопрос № 37. Бактериологический метод исследования при ботулизме.
Исследуемый материал: Рвотные массы, промывные воды желудка, кал, моча, остатки пищевых продуктов. Материал растирают в ступке.
1 день: посев на среду Китта- Тароцци ( или на др. среды с анаэробными условиями). Посев делается в 4 флакона. 2 подогревают:
1- до Т=60, 15 мин,
2- до Т= 80, 20мин. В термостат. Т=28 или 35. 24,48 ч.
2 день: Помутнение и газообразование в среде накопления. Мазок. Окраска по Граму. .Пересев на питательные среды( возможно применение трубки Вейон - Виньяля. ) для ВЧК.
3 день: учет результатов. Микроскопия. Мазок.
На кровяном сахарном агаре образуют колонии неправильной формы с гладкой или шероховатой поверхностью, вокруг зоны гемолиза. В глубине столбика агара эти колонии имеют вид пушинок или чечевичек.
Пересев на пестрый ряд. РА с типовыми сыворотками. Проверяют на подвижность. На способность обр. индол, разжижать желатин.
4 день: Учет результатов.
Вопрос №38. Определение токсигенности методом Оухтерлони.
В чашку Петри наливают расплавленный и охлажденный агар. После застывания пит. среды на середину чашки помещают полоску стерильной фильтровальной бумаги, смоченной антитоксической сывороткой. Подсушивают. Посев исследуемой культуры штрихами перпендикулярно к фильтровальной бумаге. Делают контроль с заведомо токсигенной культурой. В термостат. Если культура токсигенна, то на некотором расстоянии от полоски бумаги возникают линии преципитации, совпадающие с линиями преципитата контроля.
Вопрос №39. Реакция нейтрализации токсина антитоксином. Компоненты, постановка, учет результатов.
Компоненты: экзотоксин ( ВЧК из исследуемого материала), антитоксическая сыворотка, ИХН.
В основе РН лежит способность специальной антитоксической сыворотки нейтрализовать экзотоксин. Для проведения реакции исследуемый материал смешивают с антитоксической сывороткой, выдерживают в термостате и вводят животным (морским свинкам,мышам). Контрольным животным вводят фильтрат исследуемого материала, не обработанный сывороткой. В том случае, если произойдёт нейтрализация экзотоксина антитоксический сывороткой, животные опытной группы останутся живыми. Контрольные животные погибнут в результате действия экзотоксина.
