
- •Высшая нервная деятельность. Особенности высшей нервной деятельности человека
- •Кора головного мозга, ее строение и функции
- •Спинной мозг, его строение и функции. Нейронный состав спинномозгового рефлекса
- •Первая и вторая сигнальные системы и их взаимодействие (см. 1 вопрос)
- •Нервный импульс. Особенности проведения возбуждения в нервном центре
- •1.1. Основные свойства возбудимых клеток.
- •1.2. Природа потенциала покоя (пп)
- •1.3. Потенциал действия (пд).
- •1.3.1. Механизм возникновения потенциала действия.
- •1.3.2. Ионные каналы.
- •1.4.Изменение возбудимости при возбуждении.
- •1.5 Закономерности действия электрического тока на возбудимую ткань
- •1.6. Механизм проведения возбуждения по нервным и мышечным волокнам. Лабильность
- •1.7. Особенности проведения возбуждения в нервах.
- •1.8.1. Поперечно – полосатые мышцы.
- •Глава 2
- •1) Чувтвительные (сенсорные );
- •2) Вставочные ( интернейроны );
- •3) Двигательные (моторные ).
- •2.2. Синапсы и медиаторы центральной нервной системы.
- •2.2.2 Электрические синапсы
- •2.4.Характеристика проведения возбуждения в цнс.
- •3) Фоновая активность нервных ценров (тонус).
- •4) Чувствительность к изменениям внутренней среды.
- •Физиология желез внутренней секреции
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 113
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 115
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 117
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 119
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 121
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 123
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 125
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 127
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 129
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 131
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 133
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 135
- •Глава 5. Железы внутренней секреции 137
- •Вклад Павлова и. П. В изучение физиологии пищеварения
1.2. Природа потенциала покоя (пп)
Потенциалом покоя (ПП) называют трансмембранную разность потенциалов, существующую между цитоплазмой и окружающим клетку наружным раствором в состоянии покоя. При этом внутренний потенциал отрицателен по отношению к наружному, условно принимаемому за нуль.
Для измерения ПП, а также другой электрической активности возбудимой клетки применяют технику внутриклеточных микроэлектродов. Микроэлектрод представляет собой тонкий капилляр, вытянутый из стеклянной трубки, диаметр кончика которого составляет 0,5 мкм. В микротрубочку погружают хлорированную серебряную проволоку, служащую электродом и заполняют солевым раствором (обычно 3М KCI). Микроэлектрод соединяют с электроизмерительным прибором - осциллографом, снабженным усилителем постоянного тока (Рис 1).
Рис.1. Регистрация мембранного потенциала покоя возбудимой клетки и схема опыта его регистрации.
1 — клетка; 2 — микроэлектрод; 3 — регистратор
В момент прокалывания покоящейся мембраны клетки микроэлектродом луч осциллографа скачком отклоняется вниз до уровня ПП.
Величина ПП у разных клеток варьирует от -50 мВ до -90 мВ. Ниже приведены значения ПП для некоторых возбудимых образований.
Гигантский аксон кальмара - -70 мВ
Гигантский аксон каракатицы - -60 мВ
Мышечное волокно лягушки - -88 мВ
Моторный нейрон кошки - -70 мВ
Впервые В. .Ю. Чаговец в 1896 году высказал гипотезу об ионном механизме электрических потенциалов в живых клетках и сделал попытку объяснить их с позиции теории электролитической диссоциации С. Аррениуса. В 1902 году Ю. Бернштейном была разработана мембранно–ионная теория, согласно которой потенциал покоя нервных и мышечных волокон определяется избирательной проницаемостью мембраны для ионов калия и их диффузией по концентрационному градиенту.
В 1949 – 1952 гг. мембранно-ионную теорию модифицировали и экспериментально обосновали А. Ходжкин, А. Хаксли и др. Исследователям удалось найти замечательный объект - гигантский аксон кальмара, диаметром 1 мм, иннервирующий мышцы мантии. В такой аксон можно было легко вводить микроэлектрод, заменять внутреннее содержимое волокна искусственными растворами.
Опыты на гигантских аксонах кальмара показали, что концентрационный градиент K+ , действительно, является основным фактором, определяющим величину потенциала покоя нервного волокна. Когда аксоплазму заменяли раствором K+, близкой по концентрации внутриклеточной, то на мембране устанавливалась разность потенциалов, близкая к значению нормального потенциала покоя (-50 - -80 мВ), и волокно проводило импульсы. При уменьшении внутриклеточной концентрации K+ потенциал покоя по абсолютной величине уменьшался, при увеличении концентрации K+ – увеличивался.
На основании проведенных опытов была сформулирована современная мембранная теория, основные положения которой следующие:
- Мембрана клетки любого возбудимого образования в покое поляризована. При этом ее внутренняя поверхность заряжена отрицательно, а наружная - положительно;
- Наличие электрических потенциалов в животных клетках обусловлено неравенством концентраций ионов Na+, K+, CI-, Ca++ внутри и вне клетки, а также их различной проницаемостью через мембрану.
- В состоянии покоя внутри нервных и мышечных клеток концентрация K+ в 30-40 раз выше, чем в наружном растворе. Концентрация Na+ вне клетки в 10 –12 раз больше, чем внутри. Вне клетки в больше также и ионов CI-.
- В покое мембрана нервных клеток наиболее проницаема для ионов K+, менее для CI- и очень мало проницаема для ионов Na+ (в 100 раз меньше, чем для K+).
- Для многих анионов органических кислот, присутствующих в цитоплазме, мембрана в покое не проницаема.
- Благодаря преимущественной проницаемости мембраны для ионов К+ в состоянии покоя, происходит их перемещение по концентрационному градиенту из клетки наружу.
- В силу возникающего мембранного потенциала ионы K+ по электрическому градиенту частично возвращаются обратно в клетку. Когда число выходящих из клетки ионов K+ становится равным числу входящих в клетку, то на мембране устанавливается так называемый равновесный калиевый потенциал, обозначаемый Ек *
(при температуре = 200С)
Мембранный потенциал покоя, определяемый для гигантского аксона кальмара (-70 мВ) менее отрицателен, чем рассчитанный по формуле Нернста калиевый равновесный потенциал (Ек = -90 мВ). Это связано с диффузией ионов Na+ и CI-через поверхностную мембрану по концентрационному градиенту. Перемещение ионов в клетку и из клетки осуществляются преимущественно через неспецифические каналы ионной утечки, которые в состоянии покоя больше проницаемы для ионов К
*Равновесный потенциал для любого иона можно рассчитать по формуле В. Нернста: Концентрация положительно заряженных ионов, находящихся снаружи, в формуле Нернста располагается в числителе; ионов, находящихся внутри клетки в – знаменателе. Для отрицательно заряженных ионов расположение противоположное:
где Е ion – потенциал, создаваемый данным ионом;
R - газовая постоянная (8,31 Дж/моль K);
T – абсолютная температура (273 +37 C);
Z – валентность иона;
F – постоянная Фарадея (9,65 10 в 4 степени Кл/моль);
[ion]o – концентрация иона во внешней среде клетки (outside);
[ion]i – концентрация иона внутри клетки (insde).
Равновесный натриевый потенциал (ЕNа+) гигантского аксона кальмара при соотношении Nai/Nao = 69/425 мМ составляет +46 мВ. Поэтому диффузия положительно заряженных ионов натрия внутрь клетки уменьшает абсолютную величину внутреннего отрицательного потенциала, создаваемого диффузией K+.
Влияние CI- на величину ПП противоположно влиянию Na+. В нервных волокнах проницаемость ионов C1- покоящейся мембраны относительно мала, и они не играют существенной роли в генезе ПП. В скелетных мышечных волокнах проницаемость для ионов CI- сопоставима с калиевой проницаемостью, и поэтому диффузия CI- увеличивает абсолютную величину потенциала покоя. Рассчитанный по формуле Нернста, хлорный равновесный потенциал мышечного волокна лягушки при соотношении концентрации ионов Cli/Clo равном 1/64 мМ составляет –105 мВ (Таблица 1).
Таблица № 1:
Клетки |
Отношенш ренней (i) |
концентраций внут-и внешней (о) сред, мМ |
Равновесный потенциал для разных ионов, мВ |
Измеренные потенциалы, мВ |
|||||
|
|
|
|
К+ |
Na+ |
Сl- |
покоя |
на максимуме спайка |
|
|
|
|
|
|
|
|
|||
Гигантский аксон кара- |
|
|
|
-88 |
+ 57 |
-42 |
-60 |
+50 |
|
катицы |
|
|
|
|
|
||||
Аксон кальмара |
|
|
|
-90 |
+46 |
-29 |
—60 |
+35 |
|
|
|
|
|
|
|
||||
Мышечное волокно лягушки |
|
|
|
-98 |
+49 |
— 105 |
—88 |
+34 |
|
Моторный нейрон кошки |
|
|
|
—90 |
+60 |
-70 |
—70 |
+30 |
В связи с имеющей место хлорной и натриевой проницаемостью Гольдманом-Ходжкиным-Катцом предложено уравнение для расчета мембранного потенциала покоя (Ем):
,
где величины РK; PNа; PC1 - проницаемость мембраны для соответствующих ионов.
Было рассчитано, что при Eм = -50 мв в изолированном гигантском аксоне кальмара, имеется следующее соотношение между ионными проницаемостями мембраны в покое:
РK : РNа : РC1 = 1: О,04: 0,45.
Таким образом, в целом потенциал покоя - это производное равновесных потенциалов всех ионов, находящихся внутри и вне клетки, величина которой определяется двумя основными факторами:
1) соотношением концентраций катионов и анионов, проникающих через мембрану в состоянии покоя;
2) соотношением проницаемостей мембраны для этих ионов.
1. 2. 1. Роль ионных насосов в формировании потенциала покоя.
Несмотря на малые потоки ионов Na+ и K+ через поверхностную мембрану, их концентрации, в результате постоянной диффузии, должны были бы в конечном итоге выровняться. Однако этого не происходит, поскольку на мембране работают особые механизмы активного транспорта (ионные насосы), обеспечивающие выведение из цитоплазмы Na+ и введение в цитоплазму K+ против их концентрационных градиентов. Поддержание трансмембранного градиента концентраций Na+ и K+ является важным условием для формирования ПП
Источником энергии для работы насоса является АТФ. Расщепление АТФ производится макромолекулами белка - ферментом аденозинтрифосфатазой (Na, K – АТФ – азой), локализованной в поверхностной мембране клетки.
Натрий – калиевый насос вносит вклад в величину ПП, т.е. насос электрогенен. Связано это с тем, что на каждые три иона Na+, выводимые насосом из клетки, внутрь клетки нагнетается только два иона К+, т.е. натрий – калиевый насос создает разность потенциалов, суммирующуюся с потенциалом покоя.
Вклад натриевого насоса в величину потенциала покоя у различных клеток не одинаков. В нервных волокнах кальмара он незначителен, а в гигантских нейронах моллюсков, гладких мышцах составляет около 25% от полной величины потенциала покоя.
Нарушение работы насоса при патологии, а также в эксперименте, при действии некоторых химических соединений, например, сердечного гликозида - уабаина, а также ингибиторов дыхательных ферментов – цианидов, сопровождается потерей клеткой ионов калия, и обогащением ее ионами натрия.