
- •1. Основные приборы и оборудование для практических работ по молекулярной биологии
- •Практическая работа № 2 анализ днк методом электрофореза в агарозном геле
- •Практическая работе № 3 выделение и фракционирование наулеиновых кислот эукариот классическими методами
- •Занятие № 1 экстракция днк из животных организмов с ддс-Na
- •2. Состав и приготовление экстрагирующего буфера ов
- •Занятие № 2 став-экстракция днк из растений
- •Занятие № 3 выделение тотальной рнк по шерреру
- •Занятие № 4 фракционирование и определение соотношений _. Рибосомальных и транспортных рнк методом электрофореза в полиакриламидном геле
- •18 А фракции рнк, %
- •Занятие № 5 определение константы седиментации рнк методом электрофореза в полиакриламидном геле
- •Практическая работа № 4 выделение нуклеиновых кислот с использованием сорбентов
- •Занятие № 1 выделение днк с использованием набора d1атом™ dna prep 100
- •Занятие № 2
- •Практическая работа № 5 выделение плазмидной днк из рекомбинантных бактериальных клеток
- •5. Раствор I для выделения плазмидной днк
- •Практическая работа № 6 определение концентрации и качества препаратов нуклеиновых кислот методом -спектрофотометрии
- •Практическая работа №7 постановка полимеразной цепной реакции
- •358 Промотор вируса мозаики цветной капусты
- •Практическая работа № 9 реакция обратной транскрипции
- •Практическая работа №10 рестрикционный анализ днк
- •7.Условия рестрикции
- •Практическая работа №11 днк—днк-гибридизация
- •8. Значения максимумов поглощения (абсорбции) и испускания света (эмиссии) некоторых флуорофоров
- •Практическая работа №12 клонирование фрагментов днк в клетках
- •Практическая работа № 13 определение первичной структуры днк
- •Практическая работа № 14 информационный поиск с использованием баз данных интернета
- •Практическая работа № 15 экстракция белков из животных и растительных тканей
- •Практическая работа № 16 осаждение белков сульфатом аммония
- •9. Последовательность фракционирования белков сульфатом аммония
- •Практическая работа № 17 диализ белков
- •Практическая работа № 18 количественное определение белка по методу лоури
- •Практическая работа № 19 количественное определение белка по методу брэдфорд
Занятие № 3 выделение тотальной рнк по шерреру
Этот классический метод применяют для выделения тотальной РНК из любых животных тканей, а также из клеток бактерий, например кишечной палочки (Еscherichia coli). Принцип метода заключается в том, что при обработке ткани водонасыщенным фенолом, содержащим 0,5%-ный раствор додецилсульфата натрия, в водную фазу при 4 °С переходят и ДНК, и РНК. Однако при нагревании до 50—60 "С ДНК остается в связанном состоянии и в водную фазу переходит только РНК.
Цель занятия. Ознакомиться с классическим методом выделения тотальной РНК по Шерреру.
Оборудование и материалы. 1. Центрифуга рефрижераторная до 4500 #. 2. Гомогенизатор. 3. Термостат (водяная баня).4.Шприц стеклянный вместимостью 50 мл. 5. Воронка Бюхнера диаметром 65 мм. 6. Ступка фарфоровая. 7. Колба коническая вместимостью 200 мл. 8. 2%-ный раствор ИаОН. 9. 0,2%-ный раствор додецилсульфата натрия. 10. 96%-ный этанол. 11. 0,5 н. хлорная кислота. 12. Фенол свежеперегнанный водонасыщенный. 13. Поливинилсульфат. 14. 0,01 М ацетатный буфер рН 5,2 (смешивают 10,5 мл 0,02 М раствора уксусной кислоты и 39,5 мл 0,02 М раствора ацетата натрия и доводят объем водой до 100 мл). 15. Хлорид магния. 16. Реактив для растворения РНК: 0,05 М N301, 0,01 М ацетат натрия, 0,0001 М МёС12. 17. Жидкий азот. 18. Лед. 19. Свежая ткань животного.
Ход работы. 1. Ткань животного предварительно промывают для инактивации поверхностных нуклеаз сначала 2%-ным водным раствором гидроксида натрия, затем 0,2%-ным раствором ДДСЖа и, наконец, дистиллированной водой. Эту операцию проводят на воронке Бюхнера; на 1 г ткани берут по 50 мл указанных растворов.
В фарфоровую ступку помещают 1 г промытой ткани, измельчают с жидким азотом в тонкий порошок, после чего растирают в ступке с 10 мл 0,01 М ацетатного буфера (рН 5,2), содержащего 0,001 М М§С12, 0,5%-ный ДДС-Ма и 2 мкг/мл поливинилсульфата (ингибитор активных РНКаз), в течение 30 мин при повторном замораживании и оттаивании. Если нет жидкого азота, то ткань предварительно измельчают в гомогенизаторе, затем переносят в фарфоровую ступку, охлажденную льдом, и проводят растирание, как описано выше.
Полученную вязкую суспензию переносят в стакан, прибавляют 10 мл свежеперегнанного водонасыщенного горячего фенол(60 °С) и взбалтывают в течение 3 мин на водяной бане при 60 "С.
Смесь охлаждают во льду и центрифугируют при 4500 # и температуре 4 °С в течение 30 мин. В результате центрифугирования образуется три слоя: верхний водный, промежуточный, нижний фенольный.
Водный слой осторожно отсасывают шприцем в колбу и дважды обрабатывают водонасыщенным фенолом, предварительно Нагретым до 60 "С, проводя каждый раз быстрое охлаждение и центрифугирование при 4500 # и температуре 4 "С в течение 30 мин. После каждого центрифугирования водный слой отбирают и обрабатывают далее, а фенольный отбрасывают.
Для осаждения РНК к водному слою добавляют два объема96%-ного этанола. Осадок РНК формируется в течение нескольких часов при 0 °С.
Осадок отделяют центрифугированием в течение 10 мин при 4500 § и температуре 0 °С, спирт отбирают, а осадок РНК растворяют в 5 мл 0,05 М раствора хлорида натрия, содержащего 0,01 М ацетата натрия и 0,0001 М хлорида магния. Из полученного раствора РНК снова осаждают двумя объемами 96%-ного этанола. Осадок РНК выпадает за 1,5—2 ч при температуре —10 "С.
Осадок РНК либо хранят под спиртом, либо отделяют центрифугированием, спирт отбрасывают, а осадок снова растворяют в 5 мл раствора, содержащего хлорид натрия, ацетат натрия и хлорид магния, и хранят в холодильнике без замораживания.
Контрольные вопросы. 1. Какой принцип лежит в основе метода выделения тотальной РНК по Шерреру? 2. Что обеспечивает инактивацию РНКаз и сохран- ность РНК при выделении ее данным методом?
Задание. Получить препарат тотальной РНК из ткани живот- ного.