- •Заходи безпеки під час виконаннЯ лабораторних робіт
- •Модуль 1. Наукові основи промислової мікробіології
- •Визначення величини популяції мікроорганізмів
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Підрахунок клітин мікроорганізмів під мікроскопом
- •1.2. Визначення кількості клітин|клітин| і біомаси нефелометричним| методом
- •1.3. Визначення концентрації клітин мікроорганізмів
- •1.4. Визначення числа клітин мікроорганізмів висівом на поживні середовища
- •Обладнання, прилади і матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Посів штрихом (рис. 5)
- •Отримання чистої культури методом розсіву в глибині середовища (по Коху)
- •Анаеростат для культивування анаеробів
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Визначення здатності дріжджів засвоювати джерела вуглецю та азоту
- •Основні завдання роботи
- •Обладнання, прилади і матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Опрацювання результатів
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Література: [].
- •Екстракція бактеріальної днк
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Опрацювання результатів
- •Аналіз результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Модуль 2. Особливості культивування мікроорганізмів із заданими властивостями
- •Контроль мікроорганізмів фізичними агентами
- •Основні завдання роботи
- •Дослідити вплив осмотичного тиску на мікроорганізми.
- •Основні теоретичні відомості
- •Фізичні фактори
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Опрацювання результатів
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Контроль мікроорганізмів за допомогою дезінфікуючих та антисептичних засобів
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Опрацювання результатів
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Контроль мікроорганізмів за допомогою антимікробної хемотерапії
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Методи визначення активності антибіотиків
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •1. Визначення активності антибіотиків методом серійних розведень в рідких середовищах|середі|
- •2. Визначення бактерійної резистентності до хіміотерапевтичних речовин: мутація
- •Опрацювання результатів
- •1. Визначення активності антибіотиків методом серійних розведень в рідких середовищах|середі|
- •2. Визначення бактерійної резистентності до хіміотерапевтичних речовин: мутація
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Біохімічні методи ідентифікації мікроорганізмів
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади і матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Опрацювання результатів
- •Додаток: Ідентифікація бактерій
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Модуль 3. Біосинтетична активність мікроорганізмів – продуцентів біологічно активних речовин
- •Вивчення мікроорганізмів ґрунту методом пластинок обростання
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Продукування амілази ґрунтовими мікроорганізмами
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •А Рис. 17. Продукування амілази ґрунтовими мікроорганізмами наліз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Виділення важливих у промисловому відношенні мікроорганізмів – продуцентів антибіотиків
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Продукування антибіотиків (пеніциліну) мікроорганізмами
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Модуль 4. Мікробна біомаса – основа виробництва біологічно активних препаратів
- •Біосинтез лимонної кислоти при культивуванні мікроскопічних грибів Aspergillus niger
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Виробництво та визначення лужних протеаз
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Методи досліджень мікроорганізмів, що беруть участь в перетвореннях сполук заліза
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Методи досліджень мікроорганізмів, що беруть участь в перетвореннях сполук азоту. Амоніфікація
- •Основні завдання роботи
- •Основні теоретичні відомості
- •Обладнання, прилади, матеріали
- •Порядок і рекомендації щодо виконання роботи
- •Аналіз одержаних результатів
- •Контрольні запитання і завдання
- •Додаток 1
- •Список літератури
Посів штрихом (рис. 5)
Існує багато методів посіву штрихом у чашки із твердим середовищем («штриховані чашки»), але лише деякі з них майже завжди дають ізольовані колонії навіть при відсутності навичок в експериментатора. При роботі з анаеробами «штриховані чашки» або чашки із внесеною в них рідкою культурою в атмосфері повітря інкубують потім в анаеростаті. Для анаеробів необхідні свіжоприготовані середовища, і посів штрихом слід проводити протягом перших 4 годин після їхнього автоклавування, щоб уникнути накопичення розчиненого кисню.
Отримання чистої культури методом розсіву в глибині середовища (по Коху)
Три пробірки, що містять по 15 мл м’ясо–пептонного агару, ставлять у водяну лазню для розплавлення агару. Розплавлене середовище охолоджують до температури 43 – 45°С. У пробірку вносять одну бактеріальну петлю досліджуваного матеріалу. Для кращого перемішування матеріалу із середовищем засіяну пробірку обертають кілька разів, затиснувши між долонями. Після цього прожареною й охолодженою петлею вміст 1–ї пробірки переносять в 2–гу й у такий же спосіб з 2–ї в 3–тю. Приготовлені розведення мікробів виливають із пробірок у стерильні чашки Петрі, позначені номерами, відповідними до номерів пробірок.
Після застигання середовища з досліджуваним матеріалом чашки поміщають у термостат. Кількість колоній у чашках з поживним середовищем зменшується по мірі розведення матеріалу.
В
В
Рис.
5.
Зручний метод посіву штрихом у чашки
для одержання окремих колоній. А. Для
маркування на звороті чашки Петрі
олівцем наносять букву Т, що розділяє
дно на 3 сектори. Б. Петлею з культурою
зиґзаґом наносять штрихи на поверхні
агару в секторі 1, як показано на малюнку.
Для цього кришку чашки спочатку
піднімають, а після нанесення штриха
відразу закривають. Петлю стерилізують
у полум'ї й дають їй охолонути (15 с). В.
Проводять петлею по поверхні середовища
в секторі 1, як показано на малюнку, і
потім наносять нею зиґзаґом штрихи на
поверхні середовища в секторі 2.
Прогрівають петлю в полум'ї й дають їй
охолонути. Г. Проводять петлею по
поверхні середовища в секторі 2, як
показано, і потім наносять нею зиґзаґом
штрихи на поверхні середовища в секторі
3. Д. Інкубують перевернуті чашки, для
того, щоб вода, що конденсується, із
кришки не потрапила на поверхню агару.
У секторі 1 виростає велика кількість
колоній, тоді як у секторах 2 і 3 з’являються
окремі добре ізольовані колонії.
Г
Д
Розплавлене поживне середовище розливають в три чашки Петрі. Застигле середовище обов’язково підсушують, тому що волога його поверхня сприяє щільному росту мікроорганізмів. У першу чашку вносять одну краплю досліджуваного матеріалу й стерильним шпателем розтирають його по поверхні поживного середовища. Далі, не пропалюючи шпатель й не набираючи нового матеріалу, шпатель переносять у другу й третю чашки, розтираючи по поверхні поживного середовища матеріал, який на ньому залишився.
Метод розсіву по поверхні, запропонований Дригальським, найчастіше використовується для одержання чистої культури мікробів. Замість шпателя можна користуватися петлею. Матеріал на поживному середовищі розподіляють паралельними штрихами по всій чашці в одному напрямку. Потім, повернувши чашку на 180, проводять штрихи в напрямку, перпендикулярному першим штрихам. При такому способі посіву матеріал, що перебуває на петлі, витрачається поступово, і по лініях сітки, нанесеним наприкінці посіву, виростають ізольовані колонії мікробів.
