
- •Введение
- •Порядок работы
- •1.1.2. Явление адсорбции
- •Порядок работы
- •1.1.3. Явление коагуляции
- •Порядок работы
- •Физиология растительной клетки
- •1.2.1. Проницаемость живой материи и мертвой цитоплазмы.
- •Порядок работы
- •1.2.2. Явление плазмолиза и деплазмолиза
- •Порядок работы
- •1.2.3. Определение осмотического давления клеточного сока плазмолитическим методом
- •Порядок работы
- •1.2.4. Определение величины сосущей силы клеток упрощенным методом (по Уршпрунгу)
- •Порядок работы
- •2. Водный режим растений
- •2.1. Водообмен побега
- •Порядок работы
- •2.2. Водопроводимость древесины
- •Порядок работы
- •2.3. Изучение состояния устьиц при различных внешних условиях методом инфильтрации
- •Порядок работы
- •2.4 Определение интенсивности транспирации методом быстрого взвешивания
- •3. Усвоение растениями углерода
- •3.1. Изучение физико-химических и оптических свойств пигментов
- •3.1.1. Разделение пигментов(по методу Крауса)
- •Порядок работы
- •3.1.2. Отщепление магния и его замещение в хлорофилле
- •Порядок работы
- •3.1.3. Изучение оптических свойств пигментов
- •Порядок работы
- •3.1.4. Влияние на хлорофилл света и кислорода
- •Порядок работы
- •3.2. Изучение фотосинтеза (образование крахмала на свету)
- •Порядок работы
- •3.3 Определение интенсивности фотосинтеза методом половинок
- •4. Дыхание растений
- •4.1. Определение интенсивности дыхания разных частей растений
- •Порядок работы
- •4.2. Определение дыхательного коэффициента
- •Порядок работы
- •5. Минеральное питание растений
- •5.1. Определение содержания золы в разных частях растений
- •Порядок работы
- •5.2. Микрохимический анализ золы
- •Порядок работы
- •5.3. Знакомство с расчетом и методикой закладки вегетационных опытов
- •Порядок работы
- •5.4. Определение степени микоризности древесных растений с эктомикоризами
- •Порядок работы
- •6. Роль микроорганизмов в питании растений
- •6.1 Изучение жизни микробов под микроскопом
- •Порядок работы
- •6.2 Влияние внешних условий на жизнедеятельность микробов
- •Порядок работы
- •6.3. Изучение аммонификации белковых веществ
- •Порядок работы
- •6.4. Изучение нитрификации
- •Порядок работы
- •7.Превращение веществ
- •7.1. Анализ запасных веществ
- •Порядок работы
- •Определение вторичных метаболитов
- •Порядок работы
- •7. 3. Обнаружение фермента амилазы в прорастающих семенах
- •Порядок работы
- •7.4. Влияние температуры на скорость ферментных реакций
- •Порядок работы
- •8. Рост растений
- •Изучение периодичности роста
- •8.1.1.Изучение роста побега
- •Порядок работы
- •8.1.2. Изучение периодичности роста растений по толщине
- •Порядок работы
- •9. Устойчивость растений
- •Превращение запасных веществ в побегах растений в зимний период
- •Порядок работы
- •Определение жаростойкости растений (по ф.Ф. Мацкову)
- •Порядок работы.
- •Список рекомендуемой литературы
- •241037, Г. Брянск, пр. Ст. Димитрова, 3,
6.3. Изучение аммонификации белковых веществ
Микроорганизмы осуществляют минерализацию органических веществ, переводят недоступные для растения соединения в доступные, усвояемые.
Одним из таких процессов является аммонификация – микробиологический процесс превращения органического азота (азота, входящего в состав органических соединений) в аммиачный азот. Процесс осуществляют различные гетеротрофные организмы как в аэробных, так и в анаэробных условиях.
Цель работы. Ознакомиться с методикой изучения процесса.
Материалы и оборудование: 1. Плоскодонные колбы на 100 мл. 2. Мясо-пептоновый бульон (готовится заранее и хранится в холодильнике). 3. Электроплитки. 4. Влажная почва для посева. 5. Красные лакмусовые бумажки. 6. Фильтровая бумага, смоченная раствором уксуснокислого свинца. 7. Термостат. 8. Мерные цилиндры. 9. Ватные пробки.
Метод основан на том, что в процессе аммонификации выделяется аммиак и сероводород, наличие которых можно обнаружить цветными реакциями.
Порядок работы
1. Налить мясо-пептоновый бульон в колбочки по 50 мл. Стерилизовать и охладить.
2. Внести небольшое количество влажной почвы. Колбы закрыть ватными пробками, к которым подвесить полоски влажной лакмусовой и фильтровальной бумаги, смоченной уксуснокислым свинцом (при наличии сероводорода белая бумага чернеет).
3. Поставить колбы в термостат при температуре +25 – 30 на 4 – 5 дней.
4. Через 4 – 5 дней осмотреть колбы. Записать результаты. Дать объяснения. Сделать выводы.
5. Ответить на следующие вопросы:
а) какое значение имеет аммонификация в жизни растений?
б) От чего зависит скорость аммонификации?
в) В каких условиях происходит аммонификация?
г) какие микроорганизмы вызывают аммонификацию?
6.4. Изучение нитрификации
Нитрификация – микробиологический процесс окисления аммиака в азотную кислоту с последующим преобразованием в нитриты и нитраты.
Цель работы. Ознакомиться с методикой изучения процесса.
Материалы и оборудование: 1. Плоскодонные колбы на 100 мл. 2. Питательная смесь на 1 л воды сернокислого аммония – 2,0 г , двухзамещенного фосфорнокислого калия – 1,0 г, сернокислого магния – 0,05 г, хлористого натрия – 2,0 г , сернокислого закисного железа – 0,4 г. 3. Углекислый магний. 4. Почва богатая гумусом. 5. Электроплитки. 6. Реактив Грисса (состоит из двух растворов: 0,5 г сульфаниловой кислоты в 150 мл разбавленной уксусной кислоты и 0,1 г нафтиламина в 20 мл воды с добавкой 150 мл разбавленной уксусной кислоты). 7. Дифениламин в концентрированной серной кислоте. 8. Пробирки. 9. Стеклянные палочки. 10. Слабые растворы азотнокислого калия и азотистого натрия. 11. Термостат. 12. Белые фарфоровые пластинки.
Метод основан на получении розовой окраски при нагревании раствора, содержащего нитриты с реактивом Грисса и синей окраски при взаимодействии растворов, содержащих нитраты с дифениламином в серной кислоте.
Порядок работы
1. Налить 50мл питательной смеси в колбу и добавить около 0,5г углекислого магния (для большего выделения СО2). Закрыть колбу ватой пробкой и прокипятить 2-3 минуты.
2. Охладить и добавить к смеси комочек земли, взболтать.
3. Ознакомиться с реакцией на нитриты. Взять на пластинку или предметное стекло небольшое количество слабого раствора азотнокислого натрия и добавить каплю реактива дифениламина в серной кислоте.
4. Ознакомиться с реакцией на нитраты, взять 0,5-1,0 мл раствора азотнокислого калия, добавить такое же количество реактива Грисса, взболтать и нагреть до кипения.
5. Проделать такие же реакции с питательной смесью и убедиться в отсутствии нитритов и нитратов.
6. Поместить в термостат.
7. Через неделю определить наличие их в питательной смеси (реакции рекомендуется проводить ежедневно).
8. Записать результаты. Сделать выводы.
Ответить на следующие вопросы:
а) Под действием каких организмов (автотрофов или гетеротрофов) осуществляется прцесс?
б) Из каких стадий состоит этот процесс?
в) Какое значение имеет нитрификация для растений?