Токсическая характеристика микотоксинов некоторых микромицетов

Организмы-продуценты	Микотоксины	Природные субстраты	Характер токсического действия (вписать токсикодинамику)
Aspergillus flavus, Aspergillus parasiticus	Афлатоксины B1, B2, G1, G2	Арахис, кукуруза и другие зернобобовые (семена), семя хлопчатника, орехи, овощи, растительные корма
Aspergillus ochraceus, Penicillium viridicatum	Охратоксины В, В, С	Зерновые, кофе, сыры, корма
Penicillium patulum и др.	Патулин	Фрукты, овощи и продукты их переработки (соки, пюре, джемы и др.)
Fusarium graminearum и др.	Трихотеценовые микотоксины (более 40 соединений)	Зерновые, корма, сено и т.п.
Fusarium graminearum	Зеараленон	Кукуруза, ячмень, пшеница, сорго, корма
Claviceps purpurea	Эрготоксины	Зерновые

Качественный и количественный анализ микотоксинов в биологических объектах

ОРГАНОЛЕПТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ (проводят прежде всего): запах, цвет, иногда вкус, видимые признаки поражения грибами. Определяют запах целого и размолотого зерна. Для усиления запаха зерно иногда подогревают или заливают горячей водой. Грубые корма раскладывают на белой бумаге. Корма, пораженные грибами, могут иметь следующие признаки: потемнение, грибной налет (черный, зеленый), образование слежавшихся пластов.

По органолептическим показателям определяют 4 стадии поражения зерна:

Первая: солодовый запах, цвет покрова не изменен.

Вторая: плеснево-затхлый запах, внешние покровы без блеска, потемневшие, эндосперм темный.

Третья: запах плеснево-гнилостный, внешние покровы темные, зародыш поражен.

Четвертая: гнилостный запах, эндосперм коричневого цвета.

Зернофураж 3 степени поражения используют для технических целей, четвертой - не пригоден для употребления.

МИКОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ КОРМОВ.

Первичный анализ кормов проводят под бинокулярной лупой и микроскопом. Устанавливают степень поражения образца (наличие конидий, степень поражения).

Микроскопия смыва.Зерно или мелко нарезанный грубый корм (солома, сено) помещают в колбу, заливают дистиллированной водой и взбалтывают в течение 20 - 30 минут. Полученную взвесь микроскопируют. Ее можно высевать на поверхность питательных сред для выделения грибов. При этом устанавливают наличие токсинообразующих спороносящих грибов и степень поражения продукта.

Метод накопления. Метод применяется для выделения грибов из зерна, грубых кормов, силоса. Исследуемый образец помещают в чашку Петри на увлажненную фильтровальную бумагу и доращивают имеющиеся в материале грибы при обычных условиях.

Выделение грибов из зерна. Зерно может быть заражено грибами (заспорено) с поверхности, внутри (глубинное поражение). Перед посевом зерно дезинфицируют 3% раствором формалина 2 - 3 минуты. После этого зерно отмывают стерильной водой, в которую добавлено 2-3 капли аммиака для дезактивации формалина. Затем зерна раскладывают на фильтровальную бумагу в чашках Петри и помещают в термостат при температуре 24 -25°С. Чашки периодически просматривают в течение 10-15 дней. При сильной степени поражения уже через 2-3 суток наблюдают сильный рост мицелия. Под лупой (х25) мицелий и споры гриба переносят в пробирку с агаром. В дальнейшем выделенные грибы изучают в чистой культуре.

Метод накопления на фильтровальной бумаге для некоторых грибов легко позволяет выделить чистые культуры.

При работе с силосом кусочки его раскладывают на агаризированную среду в чашках Петри (аналогично обрабатывают жмых). Мучнистые корма исследуют методом непосредственного посева на питательную среду или методом разведения.

10 г мучнистого корма помещают в стерильную колбу и добавляют 90 мл стерильной воды (разведение 1:10). Колбу взбалтывают и из содержимого готовят рабочие разведения: 1:100, 1:1000, 1: 10000. По 1 мл разведенного материала вносят в 5 чашек Петри. Затем в чашку добавляют по 10 мл агаризированной среды (при 40 - 45° С). Смесь перемешивают и культивируют при 20 - 25°С Чашки просматривают регулярно в течение 10-12 суток.

Количественный учет грибов. Подсчет колоний ведут с помощью размеченной камеры через 3 суток с интервалом в 2 - 3 дня. Количество колоний грибов пересчитывают с учетом площади чашки и разведения на 1 г исследуемого корма. Учитывают не только количество грибов, но и их вид. Колонии выделяют для получения чистых культур.

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ТОКСИЧНОСТИ КОРМОВ, ПОРАЖЕННЫХ МИКРОСКОПИЧЕСКИМИ ГРИБАМИ.

Биологические методы. Биологические методы могут применяться как для определения санитарного качества пищевых продуктов, так и для определения токсигенной активности грибов. Учитывая различную чувствительность животных к микотоксинам, при биологических испытаниях чаще всего используют: цыплят, утят, кур, голубей, мышей, кроликов, некоторые виды рыб, растений, микроорганизмов, культур тканей. При этом используются различные методические приемы.

Метод скармливания. Токсичность кормов и продуктов питания можно определять методом скармливания. Для зерновых кормов используют мышей, голубей, утят 1-10 дневного возраста, цыплят 3-15дневного возраста. Для грубых и растительных кормов - морских свинок и кроликов. Для продуктов животного происхождения - кошек или собак

Суточная масса корма при биопробе заменяется исследуемым кормом на 50-100%. Испытуемые корма дают животным на протяжении 10 суток. Предварительно животных оставляют на 5-6 часов без корма, чтобы животные интенсивнее поедали испытуемые корма. Водопой не ограничивают. Ежедневно ведут учет съеденного животными корма. В зависимости от степени токсичности и количества съеденного корма признаки токсикоза могут проявиться в различное время. Корма с выраженной токсичностью вызывают гибель животных через 1 - 3 суток. Клиническая картина интоксикации, в большей или меньшей степени, характерна для каждого вида токсигенных грибов. Обычный срок наблюдении - до 15 суток.

Метод введения в желудок. Используют несколько вариантов этого способа.

При определении токсичности муки, крупы, некоторых продуктов животного происхождения делают водную взвесь (из расчета 1 : 2 или 1: 3) и вводят в желудок через зонд в количестве 0,5 мл (на мышь). Введение повторяют три дня подряд.

Более распространен метод, в котором предусмотрено экстрагирование токсинов органическим растворителем - этанолом, ацетоном, эфиром, хлороформом и др. Затем растворитель удаляется на ротационном испарителе. Маслянистый остаток растворяют в подсолнечном масле (до 5 мл). Аликвотную часть масла вводят мышам в желудок с помощью зонда (до 1 мл). Один из вариантов этого способа является арбитражным и широко используются ветеринарными лабораториями. Предусмотрен­ный срок наблюдений - 3 суток. Если в течение этого срока погибает хотя бы одна мышь, то корм считается токсичным и выбраковывается. В случае отсутствия гибели животных производится вскрытие и учет патологоанатомических изменений внутренних органов. При наличии изменений в печени, почках, легких, сердце - корм считают малотоксичным. Рекомендуемый срок наблюдений не всегда достаточен для объективной оценки токсичности кормов и его целесообразно продлить до 5-7 суток.

Один из вариантов данного метода (при исследовании на афлатоксин) предусматривает использование для биопробы утят (как наиболее чувствительных). Экстракт (в виде суспензии на воде) после отгонки растворителя вводят утятам через зонд в желудок в количестве от 0,5 до 1,5 мл нарастающими дозами 3-4 раза (1 раз в сутки). Общий срок наблюдений - 7 суток. Зятем утят убивают и исследуют состояние печени. Наличие жировой дистрофии печени, множественных геморрагии, отечных явлений свидетельствуют о токсичности корма (характерные изменения для афлатоксикоза).

Кожная проба на кролике. Этот метод используется для определения токсичности различных видов кормов и продуктов питания.

При использовании данного метода 50 г измельченного продукта экстрагируют органическим растворителем (эфиром, хлороформом, смесью спирта с эфиром, ацетоном) в течение 24 часов. Затем экстракт отфильтровывают, а растворитель отгоняют. В остаток добавляют 1 мл подсолнечного масла и смесь тщательно растирают стеклянной палочкой. Для пробы подбирают здоровых кроликов (желательно светлой масти). Участок кожи (4-5 см) выбривают, наносят на него часть экстракта, втирая его палочкой. Через 24 часа наносят оставшуюся часть экстракта. Для предупреждения слизывания на шею кролика надевают фартук. Учет реакции проводят ежедневно на протяжении 7 суток. Обычно реакция развивается на второй день и постепенно усиливается к 4 дню. Есть данные, что кожа крупного рогатого скота, лошадей, овец, кур, гусей, собак и кошек также очень чувствительна к ядам. Кожа морских свинок обладает средней чувствительностью. Кожа белых мышей наименее чувствительна.

Степень токсичности определяется по характеру воспалительного процесса. При этом выделяют 4 степени токсичности.

Первая степень токсичности - покраснение, повышенная чувствительность кожи, шелушение. Симптомы, исчезающее через 1-2 дня после нанесения экстракта. Очень слабо токсичный корм.

Вторая степень - покраснение, болезненность, незначительное утолщение кожи, мелкие желтоватые пузырьки (редко). Затем на месте пузырьков образуются тонкие корочки подсохшего экссудата, наблюдается шелушение. Слабо токсичный корм.

Третья степень - сильное утолщение и складчатость кожи, болезненность, образование пузырьков на всей обработанной поверхности. Затем на месте обработанной поверхности развивается сухой некроз, иногда язвы. Токсичный корм.

Четвертая степень - покраснение, сильный отек, выступающий над поверхностью остальной кожи, глубокий сухой некроз, долго незаживающие язвы. Резко токсичный корм.

Контролем служит партия нетоксичного корма. Некоторые токсины (например, патулин) не оказывают резко выраженной дерматоксической реакции у кролика.

Внутрикожное введение в бородку кур. Используют эфирные или спиртовые экстракты, подготовленные по описанному выше способу. Маслянистый остаток или раствор остатка в подсолнечном масле вводят в одну из бородок кур В другую бородку вводят контрольный экстракт. Реакцию учитывают по наличию воспалительного процесса, отека, кровоизлияний и некроза на месте введения. Измеряют толщину бородки как показатель отека тканей.

Определение токсичности на простейших. Эта методика используется для первичного отбора токсинообразующих культур грибов, а также экстрактов из кормов. В качестве тест-объектов используют обычно один из двух видов Parameciumcaudatum, Tetrachymenapyriformis. Эти простейшие чувствительны ко многим ядам. Для испытания на токсичность 0,2 мл экстракта(или культуральной жидкости) вносят в лунку на предметном стекле и туда же вносят каплю культуры парамеций (с определенным их количеством). Капли перемешивают и ведут наблюдение под микроскопом за их активностью. В первый час наблюдение ведут каждые 2-3 минуты. Резко токсичные экстракты вызывают гибель парамеций через 8 минут, токсичные - через 20 минут слабо токсичным - через 2 часа. Нетоксичные экстракты гибели парамеций в течение 24 часов не вызывают.

Метод определения токсичности на рыбах гуппи. Данный метод предложен для определения токсичности зернофуража, пораженного микроскопическими грибами. Пробу зернофуража массой 50 г измельчают и экстрагируют 100 мл ацетона при периодическом встряхивании - 12 часов или на качалке - 2 часа, Сухой остаток растворяют в 5 мл чистого ацетона переносят в аквариум с водой (500 мл) при температуре 17-20°С, перемешивают и помещают в него 5 рыб гуппи. Отмечают время гибели рыб в течение 24 часов

Определение токсичности на эмбрионах птиц. Куриные эмбрионы используют для определения токсических свойств продуктов питания и кормов.вводят в желточный мешок 0,5 мл испытуемого экстракта. Затем отверстие заклеиваюти лоток с яйцами помещают в инкубатор (термостат).

Введение в воздушную пугу.

Для опыта отбирают 1-дневные эмбрионы. Перед работой яйца просматривают, карандашом отмечают границы воздушной пуги, делают отверстие в скорлупе над воздушным мешком и на мембрану яйца вводят 0,04 мл испытуемого раствора. Отверстие заклеивают. Эмбрионы помещают в термостат при 37°С и 52% относительной влажности.

Введение в хориоаллантоисную оболочку. 0,2 мл испытуемой жидкости вводят в хориоаллантоисную оболочку 3 дневного эмбриона через отверстие, которое делают надвоздушной пугой. Наблюдение за подопытными эмбрионами ведут 2 раза в сутки, в течение 21 суток. Биологическое воздействие токсина определяют по времени гибели эмбрионов и патологоанато-мическим изменениям.

Токсические экстракты кормов, зараженных грибами рода Fusarium, вызывают гибель эмбрионов через 18-25 часов, слаботоксичные - через 30-90 часов. Кровеносные сосуды на хориоаллантоисной оболочке при этом спавшиеся, зародыш гиперемирован (особенно головка и крылья), печень - мраморная, почки - кровенаполнены. На сердечной сорочке кровоизлияния.

При воздействии токсинов гриба рода As-pergillus на хориоаллантоисной оболочке отмечают гиперемию, кровоизлияния, внутренние органы дряблые.

Введение афлатоксинов в желток и воздушную пугу вызывает задержку роста и развития зародыша. Гибель эмбрионов наступает на 5-10 сутки. Если эмбрионы выживают дольше, то зародыш обычно не вылупливается. На вскрытии обнаруживают отек, кровоизлияния, недоразвитие мозга, дистрофические изменения в печени. Отмечается также недоразвитие клюва, укорочение ног, перьевой покров уплотнен.

Определение токсичности на культуре тканей. Доказана чувствительность к микотоксинам культуры клеток: печени куриных эмбрионов; печени, легких и почек крысят; почек теленка и обезьяны; печени эмбрионов человека; фибробластов кожи человека, клеток Хела и др.

Монослойные трипсипизированные

культуры клеток получают обычным способом.

Токсическое действие афлатоксинов на культуры клеток разных типов проявляется характерными морфологическими изменениями: разрушением клеточных органоидов, в том числе

лизосом, изменением ядерно-плазменного соотношения, снижением интенсивности митотическо-го деления, нарушением функциональной активности клеток. Установлено, что афлатоксинВв концентра­ции 0,05 мкг/мл полностью подавляет рост клеток легкого эмбриона человека. ЛД₅₀ для клеток Хела - от 5 до 7 мкг/мл, для клеток печени человека - 14,3 мкг/л.

Культуры клеток почечного эпителия теленка и перевиваемые клетки почек поросенка проявляют высокую чувствительность к токсинам грибов рода Fusarium. Даже в разведении 1-10"⁵ токсинов и экстрактов из зараженного зерна отмечалось изменение размера ядер и снижение активности митотического деления.

К токсинам грибов рода Aspergillusчувствительны клетки Хела, фибробласты эмбрионов человека.

Пеницилловая кислота в концентрации 10 мкг/мл стимулирует митотическую активность клеток Хела.

Патулин в дозах 0,5-1 мкг/мл вызывал увеличение числа патологических митозов на клетках Хел-2.

Определение токсичности на эритроцитах крыс. Исследованиями некоторых авторов было показано, что микотоксины вызывают гемолитическое действие при контакте с эритроцитами крыс. Доказано гемолитическое действие очищенных препаратов афлатоксина, охратоксина, зеараленона, Т-2 токсина.

Определение токсичности на микро­организмах.

Микробиологический метод основан на принципе непосредственного действия экстрактов на чувствительные к данному токсину бактериальные и дрожжевые клетки. О количестве токсина судят по зоне задержки роста тест-культуры. Чувстви­тельность метода - до 0,03 мкг/мл.

Для качественного определения обычно используют метод бумажных дисков, лунок, цилиндров, штрихов. Для количественного определения - метод серийных разведений.

Определение токсичности на растениях и водорослях. Большинство изученных в настоящее время микотоксинов: афлатоксин В,, патулин, пеницилловая кислота, рубратоксин, цитринин, трихотецены обладают выраженной фитотокси- ческой активностью.

Высокую чувствительность к дендродохину, фузариотоксину, стахиботриотоксину и др. проявляют проростки кукурузы, фасоли, кресс салата, пшеницы, овса и др.

Однако более удачным тест-объектомоказались водоросли Chlorellavulgaris. Метод широко апробирован при выделении патулина, роридина А, веррукарина А, пеницилловой кислоты, цитринина и др. Хлорелла, как тест-объект, обладает широким спектром чувствительности. Предложенные биологические методы обнаружения микотоксинов в кормах и продуктах питания с помощью этого метода по своей чувствительности соответствуют, а иногда и превышают необходимую чувствительность по МДУ.

Принято считать, что биологические методы обнаружения микотоксинов в кормах и продуктах питания более трудоемкие по сравнению с физико-химическими и более длительные. Однако, они являются обязательными для подтверждения наличия микотоксинов в исследуемых образцах.

Скрининг методы отличаются относи­тельной простотой и дают возможность быстро и надежно исключать отрицательные образцы. Наиболее перспективны в этом варианте методы мультидетекиии микотоксинов, т. е определения группы микотоксинов.

Количественное определение микотоксиновосуществляется обычно путем выявления интенсивности флуоресценции на пластинках в ультрафиолетовом свете, детекции способом жидкостной хроматографии с ультрафиолетовым детектором или флуоресцентным детектором, масс-спектрометром. Для подтверждения наличия того или иного микотоксина на пластинках проводится их обработка различными химическими проявителями.

ЛЕЧЕНИЕ И ПРОФИЛАКТИКА ОТДЕЛЬНЫХ МИКОТОКСИКОЗОВ

АФЛАТОКСИКОЗ

Профилактика и лечение. Основные меры профилактики направлены на недопущение порчи кормов и предотвращения их попадания в организм животных. При первых признаках отравления из рациона исключают корм, подозреваемый в загрязнении афлатоксином. Лечение направлено на сорбцию афлатоксина в организме с помощью энтеросорбентов. Особую эффективность в этом отношении проявили алюмосиликаты, который интенсивно связывают афлатоксины. Этот комплекс достаточно устойчивый. Высокая профилактическая и детоксицирующая способность была отмечена при введении в рацион птиц 5% алюмосиликата. В США для этих целей используется гидратированный натрий-кальциевый алюмосиликат (ГНКА). При добавлении его в корм до 0,5%, при наличии 7,7 мг/кг афлатоксина у цыплят или 3,0 мг/кг у поросят признаков токсикоза не было. Можно использовать в качестве энтеросорбентов аэросил и активированный уголь.

Хорошую защитную роль при наличии афлатоксинов в корме выполняет глютатион, флаваноиды (кверцетин, рутин), тиосоединения (тиомочевина).

Б. И. Хмелевский рекомендует содержащие афлатоксин корма равномерно обрабатывать 15% раствором аммиака, с доведением влажности до 30% и прогреванием массы до 100°Св течение 60 минут.

Хорошие результаты получены при детоксикации кукурузы, содержащей афлатоксин, 5% раствором аммиака.

38,4% афлатоксина разрушалось при обработке молотого шрота 4% раствором кальция гидроокиси и 1% раствором параформальдегида.

ОХРАТОКСИКОЗ

Лечение направлено на исключение из рациона животных пораженных кормов, введение богатых белком и углеводами кормов, применение энтеросорбентов, обволакивающих средств; доказано применение симптоматических и общеукрепляющих препаратов. Профилактика и лечение. Меры профилактики базируются на недопущении поражения кормов токсигенными грибами, систематическом контроле кормов и недопущении поражения кормов для введения в рационы.

Официально установленные МДУ охратоксина А в кормах для свиней и птиц всех возрастов находятся на уровне 50 мкг/кг. Запрещается скармливать животным корм, содержащий охратоксин, в течение 10 суток, предшествующих убою.

Специфическое лечение не разработано. Применяют средства, направленные на детоксикацию организма (энтеросорбенты) и препараты симптоматического действия.

ПАТУЛИНОТОКСИКОЗ

Профилактика и лечение. С целью профилактики патулинотоксикоза проводят систематический контроль за кормами, не допускают контаминацию их токсигенными грибами в процессе хранения. Специфическое лечение не разработано. Для лечения токсикозов используют энтеросорбенты, средства симптоматической терапии, серу содержащие препараты, витамины.

СТЕРИГМАТОЦИСТИН

Профилактика и лечение. С целью профилактики проводят систематический контроль за кормами, не допускают контаминацию их токсигенными грибами в процессе хранения. Специфическое лечение не разработано. Для лечения токсикозов используют энтеросорбенты, средства симптоматической терапии, серу содержащие препараты, витамины.

МИКОТОКСИЧЕСКАЯ НЕФРОПАТИЯ СВИНЕЙ

Лечение. Исключение токсичных кормов. Применение энтеросорбентов. Симптоматическое лечение. Витаминотерапия.

РУБРАТОКСИКОЗ

Профилактика и лечение. Профилактика направлена на недопущение попадания недоброкачественных кормов в рацион животных. Лечение основано на применении энтеросорбентов и средств симптоматической терапии.

ТРИХОТЕЦЕНОВЫЕ МИКОТОКСИНЫ

Лечение. Исключение токсичных кормов. Применение энтеросорбентов. Симптоматическое лечение. Витаминотерапия.

Т-2 ТОКСИКОЗ

Лечение и профилактика. Прежде всегоисключают из рациона животных испорченные

корма. Корма заготавливают в хозяйствах с соблюдением всех технологических требований: степень влажности, измельчения, трамбовка и другие, в соответствии с требованиями для каждого конкретного вида корма.

Животных с клиническими признаками заболевания подвергают лечению. Животных, прежде всего, переводят на диетические корма. Хороший эффект дает применение энтеросорбентов. Рекомендуются содовые клизмы, внутривенное введение натрия тиосульфата. Показано применение витаминов.

ЗЕАРАЛЕНОН

Профилактика и лечение. Профилактика основана на контроле за качеством используемых кормов. Корм, содержащий зеараленон в количествах, превышающих МДУ, исключают из рациона свиней и птицы. В исключительных случаях пораженный корм смешивают с доброкачественными кормами в пропорции, обеспечивающей безопасный уровень, и используют откормочному крупному рогатому скоту. Зерно, в котором обнаружены продуценты зеараленона, но отсутствует сам токсин и остальные фузариотоксины, контролируют по биопробе, не допускают для хранения, подсушивают и используют в корм малоценным животным, при условии содержания токсина в количествах, не превышающих МДУ.

СТАХЙБОТРИОТОКСИКОЗ

Профилактика и лечение. Профилактика направлена на создание оптимальных условий заготовки и хранения кормов, недопущениипоражения их токсигенными грибами. Пораженные корма исключают из рациона животных.

При наличии заболевания всех животных клинически обследуют, берут кровь для определения количества лейкоцитов, тромбоцитов, определяют время свертывания крови. На основании проведенных исследований проводят комплекс лечебных мероприятий. Малоценных животных выбрако­вывают. Лечение направлено на сорбцию яда в организме с помощью энтеросорбентов (активированный уголь и др.). Применяют общеукрепляющие и противовоспалительные средства. Животным показано диетическое питание: болтушка из отрубей, овсяная крупа, отвары льняного семени и другие легко усваиваемые корма. Жвачным животным назначают руминаторные препараты. Применяют внутривенное введение глюкозы, подкожно кофеин. Для профилактики инфекционных заболеваний назначают сульфаниламиды или антибиотики.

Язвы обрабатывают противовоспалитель­ными растворами и мазями.

КЛАВИЦЕПСТОКСИКОЗЫ (ЭРГОТИЗМ И КЛАВИЦЕПСТОКСИКОЗ)

Лечение и меры профилактики. Специфические средства лечения не разработаны. Лечение и профилактика направлены на недопущение или исключение токсичных кормов из рациона животных. С помощью слабительных средств очищают желудок от остатков токсичного корма. Для связывания алкалоидов в желудочно-кишечном тракте можно использовать сорбенты.

При конвульсивной форме для расслабления мускулатуры используют водные растворы магнезии сернокислой и другие спазмолитики. Для

усиления сердечной деятельности применяют кофеин. Полезны внутривенные инъекции глюкозы.

При гангренозных поражениях используют средства и методы хирургического лечения. Применяют средства и мази противовоспалительного и антимикробного действия.

Для предотвращения развития спорыньи на злаковых растениях используют комплекс агротехнических приемов.

Профилактика и лечение. Регулярно проводят контроль качества сена и травы пастбищ на наличие гриба Clavicepspaspali. Внимание обращают на присутствие склероциев гриба и конидиальную стадию развития гриба - "медвяная роса". Она обнаруживается на растениях в период цветения в виде липкой, сладковатой жидкости темно-бурого цвета. Жидкость обильно покрывает колоски растений. После скашивания растений с грибом, в стадии "медвяной росы", развитие гриба прекращается, и такое сено можно использовать в корм животным без ограничений.

Для борьбы с грибом на пастбищах необходимо проводить периодическое скашивание растений, перепахивание участка. Сильно пораженную склероциями траву сжигают.

В первую очередь исключают пораженные корма из рациона. При хронических формах токсикоза, так же как и при острой, показано промывание желудка, адсорбенты (активированный уголь и др.). Применяют средства симптоматической терапии для поддержания жизненно важных функций организма:- глюкоза, кофеин, раствор соды.

ДЕНДРОДОХИОТОКСИКОЗ

Профилактика сводится к исключению пораженного корма из рациона животных. Лечение симптоматическое. Используют диетическое питание, энтеросорбенты, противовоспалительные средства.

ЛЮПИНОЗ

При проведении профилактических и лечебных мероприятий исключают из рациона испорченные корма, применяют энтеросорбенты, средства симптоматической терапии.

МУКОРТОКСИКОЗ

Лечебно-профилактические мероприятия основаны на недопущении скармливания пораженных кормов. Применяютэнтеросорбенты, средства симптоматической терапии,