Проведение занятия

Задание

1.Произвести посев из смешанной культуры на агар Хоттингера штрихом для выделения чистой культуры

2. Записать в тетради методики посевов петлей, шпателем

3. Записать в тетради виды питательных сред и их характеристику

Контрольные вопросы

1. Что такое “посев” микроорганизмов и методы посевов?

2. Что такое накопительная культура?

3. Что называется чистой культурой?

4. Способы получения чистых культур (истощающий посев штрихом, газоном, уколом, истощающий посев разливкой или метод пластинчатых разводок Коха)

Лабораторные занятия по общей микробиологии

Дезинфекция, асептика, антисептика

Лабораторное занятие №6

Цель: ознакомиться с методами дезинфекции, стерилизации, соответствующим оборудованием, антисептическими препаратами.

Действие физических факторов

Температурный фактор. Температура имеет важнейшее зна­чение для регуляции интенсивности метаболических реакций в мик­робных клетках. В зависимости от температурных предпочтений вы­деляют три группы микроорганизмов — термофилы, психрофилы и мезофилы.

Для термофилов оптимальная температурная зона роста равна 50-60°С, верхняя зона задержки роста - 75°С, нижняя - 45°С. Термо­филы не размножаются в организме теплокровных животных, поэто­му медицинского значения не имеют.

Психрофилы имеют оптимальную температурную зону роста в пределах 10-15°С, максимальную зону задержки роста 25-30 ^оС, минимальную 0-5 °С. Психрофилы являются свободно живущими организмами или паразитами холоднокровных животных, но некоторые факультативные психрофилы, например иерсинии, клебсиеллы, псев­домонады вызывают заболевания у человека. Размножаясь в пище­вых продуктах при температуре бытового холодильника, эти бакте­рии нередко повышают вирулентность.

Большинство патогенных бактерий - мезофилы. Они обитают главным образом в организме теплокровных животных. Оптималь­ная температура их роста колеблется в пределах 35-37°С, максималь­ная 43-45°С, минимальная 15-20°С. В окружающей среде могут пе­реживать, но обычно не размножаются. При пониженной температу­ре подавляется образование факторов адгезии (пилей), капсул, антигенов вирулентности и других структурных элементов, отвечаю­щих за патогенные свойства. Эти изменения обратимы, восстановле­ние признаков происходит через 2-3 ч культивирования бактерий при оптимальной температуре.

Критические температурные параметры неодинаковы для разных микробов. Повреждающее действие высокой температуры связано с необратимой денатурацией ферментов и других белков, низкой - с разрывом клеточной мембраны кристаллами льда и приостановкой метаболических процессов. Вегетативные формы погибают при тем­пературе 60-80°С в течение часа, при 100°С - мгновенно. Споры устойчивы к температуре 100°С, гибнут при 130°С. Нижняя темпера­турная граница гибели некоторых патогенных агентов варьирует от -20°С до абсолютного нуля (вирус кори, бактериальные возбудители коклюша, сифилиса, менингококковой и гонококковой инфекции).

Реакция среды. Большинство симбионтов человеческого организ­ма и возбудителей заболеваний хорошо растут при слабощелочной, нейтральной или слабокислой реакции. Для вибрионов, в том числе для возбудителя холеры, оптимальная величина рН 9-10, для боль­шинства грибов - 5-6. При культивировании микроорганизмов на питательных средах специально поддерживается оптимальная для конкретного вида величина рН. В процессе размножения обычно про­исходит сдвиг рН в сторону кислой среды (реже наоборот), затем рост приостанавливается, при дальнейшем однонаправленном изменении реакции среды наступает гибель микроорганизмов.

Влажность и сухость. Рост и размножение микроорганизмов происходят во влажных средах. Вода необходима для пассивного и активного транспорта питательных веществ в клетку. Чувствитель­ность микроорганизмов к высушиванию и сроки переживания на объектах внешней среды в этих условиях зависят от вида и формы возбудителя — с одной стороны, и свойств объекта — с другой.

Споры бактерий сохраняются длительное время, иногда многие годы. Микобактерии туберкулеза, вирус натуральной оспы, сальмо­неллы, актиномицеты, грибы устойчивы к быстрому высушиванию во внешней среде; менингококки, гонококки, трепонемы, бактерии кок­люша, ортомиксовирусы, парамиксовирусы, герпесвирусы — чув­ствительны к нему.

Вместе с тем для длительного хранения бактерий, грибов и виру­сов применяют технологию лиофильного высушивания. Суть ее зак­лючается в замораживании культуральной биомассы в специальных средах при температуре от -50°С и ниже с последующим медленным удалением кристаллизованной воды в специальных вакуумных аппа­ратах. Высушенные в ампулах микробы хранятся в низкотемператур­ных холодильниках в течение нескольких лет и даже десятилетий. После добавления жидкости к сухой таблетке происходит регидратация бактериальных и грибковых клеток с восстановлением их росто­вых и иных биологических свойств.

Ионизирующая радиация. Повреждающее действие радиации зависит прежде всего от ее характера, в меньшей степени от вида микроорганизма. Ионизирующая радиация может вызывать повреж­дения генома бактерий различной глубины — от несовместимых с жизнью дефектов до точечных мутаций. Для микробных клеток ле­тальные дозы в сотни и тысячи раз выше, чем для животных и рас­тений.

Повреждающее действие УФ-излучения, наоборот, в большей мере выражено в отношении микроорганизмов, чем животных и ра­стений. УФ-лучи в относительно небольших дозах вызывают повреж­дения ДНК микробных клеток, которые приводят к мутациям или их гибели. Световое и инфракрасное излучение при интенсивном и дли­тельном воздействии способно оказать повреждающее влияние лишь на некоторые микроорганизмы.

Ультразвук. Определенные частоты ультразвука способны вызы­вать деполимеризацию органелл микробных клеток, а также денату­рацию входящих в их состав молекул в результате локального нагре­вания или повышения давления. Этот феномен используется для по­лучения антигенов путем дезинтеграции микробной клетки.

Давление. Атмосферное давление даже в сотни атмосфер не ока­зывает существенного влияния на бактерии. Однако к осмотическому давлению, как повышенному, так и сниженному, они высокочувстви­тельны. При этом происходит разрыв клеточной мембраны и гибель микробных клеток (осмотический шок).

Действие химических факторов

Противомикробным действием обладают галогены и их со­единения, окислители, кислоты и их соли, щелочи, спирты, альдеги­ды, соли тяжелых металлов, фенол и его производные, поверхностно-активные вещества, красители и многие другие химические вещества. Они разрушают важнейшие структурные элементы — клеточ­ную стенку, цитоплазматическую мембрану, нуклеиновые кислоты и инактивируют ферменты. В основе методов профилактики и борьбы с инфекционны­ми болезнями лежат разнообразные методы уничтожения или подав­ления жизнедеятельности патогенных и условно-патогенных микро­организмов. Главная цель проводимых мероприятий — прерывание возможной передачи возбудителей от источников их выделения (боль­ных или практически здоровых носителей) к восприимчивым инди­видуумам.

Помимо прямого контакта или внутриутробного заражения плода от матери передача патогенных агентов может происходить через воздух, почву, воду, предметы обихода, пищевые продукты, изделия медицинского назначения. Как факторы передачи наиболее опасны изделия медицинского назначения, так как после использования на их поверхностях могут находиться большие концентрации патоген­ных агентов. Не менее заразительны выделения больных и инфици­рованных людей и животных.

Пренебрежение правилами обеззараживания в лечебных стациона­рах и поликлиниках является основной причиной возникновения так называемых ВБИ (внутрибольничных инфекций) — вирусных гепати­тов В и С, постинъекционных гнойных осложнений, урогенитальных воспалительных инфекций, хирургической раневой инфекции.

Строгое соблюдение правил дезинфекции помещений и инвента­ря, стерилизации инструментария и изделий медицинского назначе­ния играют первостепенную роль в предупреждении ВБИ. Не менее важно бесперебойное обеспечение лечебно-профилактических учреж­дений одноразовым и многоразовым инструментарием. В настоящее время технические возможности позволяют снабжать аптеки, боль­ницы и лаборатории одноразовыми стерильными шприцами с игла­ми, системами переливания крови, чашками Петри и другой лабора­торной посудой из полимеров и металлов. Особенно необходимы эти изделия в военно-полевых условиях, в экстремальных ситуациях мирного времени, в экспедиционных работах.

Прямые антимикробные методы обозначают термином микроб­ная деконтаминация, под которой понимают полное или частичное удаление микроорганизмов с объектов внешней среды и биотопов человека с помощью факторов прямого повреждающего действия. Может быть выделено два принципиально различных типа деконтаминации: микробная деконтаминация неживых объектов (стерили­зация и дезинфекция) и микробная деконтаминация живых организ­мов (антисептика и химиотерапия).

Стерилизация и пастеризация

Стерилизация — освобождение объекта от всех микро­организмов с помощью физических и/или химических способов.

Основными целями стерилизации являются:

1. предупреждение заноса микробных клеток в организм челове­ка при медицинских вмешательствах;

2. исключение контаминации питательных сред и культур клеток при диагностических и научных исследованиях, в процессе биотех­нологического производства;

3. предупреждение микробной биодеградации материалов, в том числе диагностических и лекарственных средств.

В медицинской практике стерилизации подвергают инструмен­тарий, перевязочный, шовный материал, операционное белье, лекар­ственные препараты, питательные среды, лабораторную посуду, а при создании безмикробной среды — воздух операционных. Должны быть стерилизованы все изделия, которые соприкасались с раневой повер­хностью, кожными покровами или слизистыми, контактировали с кро­вью или инъекционными препаратами.

После использования большинство медицинских инструментов до стерилизации обязательно подвергают дезинфекции и предстерилизационной очистке. Дезинфекцию при этом чаще всего проводят химическим методом с последующим отмыванием водой от дезин­фицирующих веществ. Назначение предстерилизационной очистки — удаление белковых, жировых и иных загрязнений, а также примеси лекарственных препаратов. Применяют ручные или механизирован­ные способы очистки с применением разрешенных для конкретного изделия моечных средств — перекись водорода со средствами типа «Лотос», «Прогресс» или «Биолот». После этого можно приступать к стерилизации медицинских инструментов.

Различают следующие методы стерилизации:

1. Физические — термический, радиационный и механический.

2. Химические — растворами и газами.

Выбор метода стерилизации зависит от свойств материалов, из которых состоят стерилизуемые изделия, их размера и других конст­руктивных особенностей, от обязательности или необязательности длительного сохранения стерильности и от других факторов.

Наиболее надежной и хорошо контролируемой является терми­ческая стерилизация предметов.

К методам термической стерилизации относят: прокаливание и обжигание в пламени спиртовки; кипячение; сухожаровую (горячим воздухом) стерилизацию; стерилизацию насыщенным паром под давле­нием (автоклавирование); дробную стерилизацию (тиндализацию), пастеризацию.

1. Фламбирование (от немец. flamme — пламя) — стерилизация путем прокаливания в пламени мелких металлических или стеклянных предметов. Наиболее быстрые и доступные методы стерилизации. Однако их использование ограни­чивается только термоустойчивыми материалами. Таким способом стерилизуют бактериологические петли, ме­таллические пинцеты, стеклянные шпатели, палочки, пред­метные стекла, фарфоровые ступки и другие ин­струменты. При прокаливании сгорают все микро­организмы (вегетативные и споровые формы). Это быстрый и надежный способ стерилизации.

Кипячение. Является одним из самых простых способов стерилизации. Проводится в стерилизаторе — металлической прямоугольной коробке с крышкой и сеткой на дне для укладывания стерилизуемых предметов. В него наливают воду и нагревают до кипения (нагрев электрический или на огне). Кипячение длится от 15-30 мин до 2 ч при температуре около 100°С. Стерилизуют мелкие металлические или стек­лянные предметы — шприцы, иглы, стеклянные трубки и др. При этом погибают вегетативные формы микроорганизмов и часть спор. Кипячением в дис­тиллированной воде стерилизуют мембранные фильтры. Режим сте­рилизации для мембранных фильтров - 30 - 60 мин с момента энер­гичного закипания воды. В микробиологической практике таким способом стерилизации пользуются редко в связи с тем, что продолжительное кипячение мо­жет повредить обрабатываемый материал, а сокращение времени ки­пячения может не обеспечить стерильности. Кипячение, даже с содой, не освобождает объект от всех микроор­ганизмов.

Стерилизатор

2. Стерилизация сухим жаром. При ней принято использовать следующие температурные режимы (кон­тролируется по термометру) и время выдержки стерилизуемого материала:

160°С в течение 150 мин,

180°С в течение 60 мин

Производится горячим воз­духом в воздушном стерилизаторе (по-старому в суховоздушном стерилизаторе) или печи Пастера. Печь Пастера представляет собой шкаф с двойными стенками, покрытый снаружи асбестом для теплоизоляции. Внутри шкафа устро­ены металлические полки с отверстиями, на которые поме­щают стерилизуемый материал. Нагрев печи электрический. Стерилизуют сухим жаром глав­ным образом стеклянную посуду - чашки Петри, пипетки, шпатели (обернутые в бумагу), а также пробирки, колбы изделия из металла, сили­коновой резины. Этот прием надежный - погибают споровые и неспоровые формы микроорганизмов. Обернутый в бумагу простерилизованный материал можно хранить.

Печь Пастера

Поток воздуха в воздушном стерилизаторе

2. Стерилизация паром под давлением (автоклавирование). Проводится насыщенным водяным паром в паровых стерилизаторах (автоклавах).

Устройство автоклава. Автоклавы бывают различной конст­рукции, но принципиальное устройство любого автоклава одно и то же. Это металлический двустенный котел, способный выдержи­вать высокое давление. Внутренняя часть котла является стерилизационной камерой (/), в которую помещают стерилизуемый ма­териал. Стерилизационная камера снабжена краном (2) для выхо­да воздуха, манометром (3) для определения давления пара и предохранительным клапаном (4) для выхода пара при повыше­нии давления сверх необходимого и для предотвращения разрыва автоклава. Пространство между стенками (5), называемое «ру­башкой», или водопаровой каме­рой, заполняется через воронку (6) водой (лучше дистиллиро­ванной, чтобы не образовалась накипь) до определенного уровня, который отмечен на специальной водомерной трубке. Выше это­го уровня воду наливать не следует, так как при бурном ки­пении вода может попасть в трубку, ведущую к манометру, и исказить его показания. В верх­ней части внутренней стенки «ру­башки» имеются отверстия (7), через которые пар поступает в стерилизационную камеру. Для создания герметичности автоклав плотно закрывается массивной крышкой (8) с резиновой про­кладкой.

Автоклавирование. В водопаровую камеру наливают воду. В стерилизационную камеру на специальную решетку (9) помещают стерилизуемый материал. Предметы следует размещать не слиш­ком плотно, так как пар должен свободно проходить между ними иначе они не нагреются до необходимой температуры и могут остаться нестерильными. Загрузив стерилизационную камеру, плотно закрывают и завинчивают крышку автоклава. Затем откры­вают кран (2), соединяющий камеру с наружным воздухом, и вклю­чают нагревающее устройство. Автоклавы нагреваются электриче­ством или газом. Отмечают время, когда из автоклава через кран (2) начнет выходить пар. Пар вытесняет воздух, находящийся в автоклаве. Необходимо, чтобы из автоклава был удален весь воз­дух, так как при одном и том же давлении температура чистого па­ра выше температуры смеси пара и воздуха и, следовательно, губи­тельное действие чистого пара на клетки микроорганизмов значи­тельно сильнее. Пар выпускают в течение 15—20 мин, но не более, иначе в автоклаве останется мало воды, и он может испортиться.

В крупногабаритных производственных автоклавах пар отво­дится в канализацию. У лабораторных автоклавов пар отводят в сосуд с водой через резиновый шланг, надетый на кран (2). После вытеснения воздуха закрывают кран (2) и по манометру следят за повышением давления пара. На манометре обозначается допол­нительное давление, которое создается в автоклаве сверх атмос­ферного. Когда стрелка дойдет до указателя необходимого давле­ния и, следовательно, температура пара достигнет соответствующе­го значения, поддерживают давление на этом уровне необходимое время, регулируя нагрев. Имеются автоклавы с автоматическим ре­гулированием режима.

Схема автоклава: 1 — стерилизационная камера; — кран для выхода воздуха; 2— манометр; 4 — предохрани­ тельный клапан; 5 — водопаровая камера; 6 — воронка для запол­нения автоклава водой; 7—от­ верстия для поступления пара в стерилизационную камеру; 8 — крышка автоклава; 9 — подста­вка для размещения стерилизуе­мых материалов

Паровой стерилизации подвергают изделия из текстиля (белье, вату, бинты, шовный материал перевязочный материал), из резины, стекла, некоторых полимерных материалов, питательные среды, лекарственные препараты, хирургические инструменты и др. Обычно используют следующие температурные режимы и экспозицию:

• 110°С (давление 0,5 кгс/см²) в течение 180 мин.,

• 120°С (давление 1,1 кгс/см²) в течение 45 мин.,

• 132°С (давление 2,0 кгс/см²) в течение 20 мин.

Автоклавирование является быстрым и надежным спо­собом стерилизации, при котором погибают все формы мик­роорганизмов, даже самые устойчивые споры.

На практике проводят и контроль стерилизации, при котором о ра­боте стерилизующих агентов и аппаратов судят по: 1) эффективности гибели спор в процессе стерилизации; 2) прямым измерением темпе­ратуры и 3) с помощью химических индикаторов.

Автоклав горизонтальный АГ-1 (А) и вертикальный (Б)

В настоящее время в медицинские учреждения поступают новые, техни­чески более совершенные марки аппаратов для паровой и воздушной стери­лизации. В них имеются системы индикации режима стерилизации, аварий­ной сигнализации, автоматические устройства блокировки дверей, в отличие от обычных аппаратов отклонения от заданной температуры минимальны. Это позволяет уменьшить время паровой стерилизации до 3—10 мин., воздушной — до 30-120 мин.

Дробная (многоразовая стерилизация текучим паром в автоклаве при 100°С или нагревание в водяной бане при 60-80°С.) допустима по отношению к термолабильным предметам. В частности, такой ре­жим применяют при стерилизации сывороток и углеводов, некото­рых лекарственных препаратов.

Физические методы стерилизации: стерилизация ультрафиолетовыми лучами, радиоактивными излучениями, ультразвуком, током ультравысокой частоты и др. Эти приемы широко используют в медицине. Стерилизация с использованием облучения пригодна для термо­лабильных материалов.

Ультрафиолетовые лучи (250 - 270 нм) используются для стерилизации центрифужных пробирок, наконечников для пипеток, материалов из термолабильной пластмассы. Время облу­чения определяется мощностью лампы, временем воздействия, степе­нью и видовым составом микроорганизмов загрязненного материала. Вегетативные формы более чувствительны к облучению, чем споры, которые в 3 - 10 раз более устойчивы. От УФ-облучения микроорга­низмы могут быть защищены органическими веществами, пылью или другими защитными оболочками. Ограничением при использовании данного метода стерилизации является низкая проникающая способ­ность УФ-лучей и высокая поглощающая способность воды и стекла. Для частичного обеспложивания воздуха в микробиологических лабораториях, боксах и операционных применяют обработку поме­щения ультрафиолетовыми лучами с помощью бактерицидных ламп различной мощности. Поскольку при этом нет полного освобожде­ния от микробов, стерилизации воздуха не происходит. Однако УФЛ широко используются в комплексе мер асептики.

Рентгеновское и γ-облучение также эффективно для стерилизации пластмасс, пищевых продуктов, но требует строгого соблюдения пра­вил безопасности. Наиболее чувствительны к γ-облучению вегетатив­ные клетки бактерий, затем идут плесневые грибы, дрожжи, бактери­альные споры и вирусы. В большинстве случаев для надежного унич­тожения микроорганизмов достаточно дозы облучения 2,5 Мрад. γ-облучение при­меняют обычно на специальных установках при промышленной сте­рилизации изделий однократного применения, для стерилизации больничных принадлежно­стей, антибиотиков, витаминов, гормонов, стероидов, пластмассового разового оборудования, шовного и перевязочного материала, полимерных шпри­цев, систем для переливания крови, полимерных чашек Петри, пипе­ток и других термолабильных и хрупких средств.

Стерилизация фильтрованием. Механическое освобож­дение от микроорганизмов путем фильтрации различных жидких сред через фильтры, задерживающие микробы. Стерилизация фильтрованием используется для веществ, которые не выдерживают термической обработки (растворов белков, углево­дов, витаминов, углеводородов, антибиотиков, сыворотки). Способ заключается в пропускании жидкостей и газов через специальные мелкопористые фильтры (бактериальные), диаметр пор которых не превышает 0,45 - 0,2 мкм. Фильтры задерживают микроорганизмы благодаря поровой структуре их матрикса. Для пропускания раствора через фильтр требуется вакуум или давление. Существуют два основ­ных типа фильтров - глубинные и мембранные. Глубинные состоят из волокнистых или гранулированных материалов, которые спрессо­ваны, свиты или связаны в лабиринт проточных каналов. Частицы за­держиваются в них в результате адсорбции и механического захвата в матриксе фильтра. Мембранные фильтры имеют непрерывную струк­туру и захват ими частиц определяется размером пор. Фильтры со­держат различные природные (коалин, асбест, целлюлоза) или синте­тические (производные целлюлозы) материалы. К таким мелкопористым фильтрам, у которых размеры пор мень­ше размеров бактерий, относятся фильтры Шамберлана из каолина, пластинчатые асбестовые фильтры Зейтца, мембран­ные фильтры из нитроцеллюлозы. Их используют для обра­ботки легко портящихся от нагревания жидкостей. Фильтры Шамберлана называют фильтровальными све­чами, потому что они представляют собой высокие полые цилиндры из высококачественной мелкопористой глины — каолина. В горлышко колбы с носиком вставляют резиновую пробку с отверстием, куда устанавливают свечу. Стерилизуют аппарат в автоклаве. Место соприкосновения свечи и пробки заливают парафином. На носик колбы надевают ре­зиновую трубку и подсоединяют к насосу. Фильтруемую жид­кость наливают в свечу. Из колбы насосом выкачивают воз­дух, поэтому жидкость под давлением фильтруется в колбу. В фильтрате могут быть только вирусы и фаги — ультра­микроорганизмы, поэтому этим приемом пользуются в виру­сологии для отделения вирусов от более крупных микроор­ганизмов. Свечу после обработки можно использовать мно­гократно. Фильтро­вание ведется под давлением или в вакууме. Для реге­нерации свечей их кипятят в водопроводной воде, а за­тем прокаливают в муфельной печи. Пластинчатые фильтры Зейтца — это круглые асбес­товые пластины, вставленные в металлические держа­тели, состоящие из полого цилиндра (верхняя часть) и опорной части, заканчивающейся воронкообразным тубусом для стока фильтрата. Асбестовую пластинку помещают на сетку воронки и части держателя соединяют винтами. Собранный аппарат монтируют в колбу Бунзена с отводной трубкой и стерилизуют в автоклаве. Фильтруемую жидкость наливают в стеклянный со­суд и по резиновому шлангу подают в аппарат. Фильт­рат собирают в колбу Бунзена, из которой откачивают воздух. Под влиянием разности давлений жидкость просасывается через фильтр и скапливается в колбе — при­емнике. Асбестовые пластинки используются для фильт­рования однократно.

Для некоторых работ вместо асбестовых фильтров Зейтца используют мембранные фильтры, изготовлен­ные из нитроцеллюлозы. Они обозначены номерами в зависимости от диаметра пор (от 350 до 1200 нм). Стерилизуют их кипячением в дистиллированной воде в течение 20 мин.

Фильтровальный прибор со свечой Шамберлана

Химическую стерилизацию используют при обработке крупно­габаритных изделий, приборов, а также аппаратов и термолабильных изделий, которые можно повредить высокой температурой — эндос­копы, изделия из резин, полимерных, титановых сплавов.

Для газовой («холодной») стерилизации обычно используют гер­метичные контейнеры, которые заполняют парами летучих веществ: формальдегида, смесью паров формальдегида и этилового спирта, оки­сью этилена, смесью окиси этилена и бромистого метила.

Для химической стерилизации растворами применяют отечествен­ные (первомур — смесь пергидроля и муравьиной кислоты, перекись водорода, бианол, анолит) и импортные препараты (гигасепт, глутаровый альдегид, дюльбак).

Пастеризация — это щадящий способ температурной обработ­ки, при котором инактивируется большинство вегетативных форм бактерий, однако споры бактерий сохраняются. Используют для обез­вреживания некоторых жидких продуктов (молока, вина, пива, соков) с целью сохранить их вкусовые качества и ценные компоненты (ви­тамины, ферменты), а также для продления срока их хранения.

В зависимости от вида продукта пастеризуют при 60-70°С в тече­ние 20-30 мин. (низкая пастеризация), при 72°С от 15 до 60 с (высо­кая пастеризация), или в течение нескольких секунд при 90°С (мгно­венная пастеризация). Всегда после окончания режима пастеризации жидкость быстро охлаждают, предупреждая пророст споровых форм. Очень редко, с помощью специальных аппаратов применяют ультра­пастеризацию, моментально повышая за 0,75 с температуру жидко­сти до 150°С.