- •Основные практические навыки инфекциониста забор материала для бактериологического исследования
- •Взятие мазков из зева и носа, смывов из носоглотки
- •Взятие мазка из носоглотки при менингококковой инфекции
- •Исследования при малярии
- •Забор крови для серологического исследования
- •Постановка и учет реакции шика
- •Постановка внутрикожных аллергических проб
- •Определение менингеальных и эецефалитических синдромов
- •Техника поясничного прокола (спинномозговой пункции)
- •Промывание желудка
- •Сифонное промывание толстого кишечника
- •Очистительная клизма
- •Лекарственные клизмы
- •Ректороманоскопия
- •Копрологическое исследование
- •Макроскопическая оценка стула при кишечных инфекциях
- •Пункционная биопсия печени
- •Оценка показателей иммунного статуса
- •Методика обследования инфекционного больного
- •Иммуноферментный анализ (elise –метод)
- •Метод иммунного блотинга (western blot)
- •Полимеразная цепная реакция (пцр)
- •Эпиданамнез
- •Введение сыворотки дробным методом
- •Методика посева крови при тифо-паратифозных заболеваниях
- •Вирусные гепатиты. Интерпретация биохимических анализов
- •Примерная интерпретация результатов выявления маркеров гепатита в (по в.А. Ананьеву)
- •Тактика врача при подозрении на особо опасные инфекции
- •Ультразвуковые критерии стадии фиброза печени при хроническом гепатите у детей
- •Правовые и деонтологические аспекты деятельности врача-инфекциониста
- •1. Политические аспекты проблемы
- •2. Правовые основы противоэпидемической практики в России
- •3. Правовые нормы в связи с особенностями эпидемиологии различных инфекционных (паразитарных) болезней
- •4. Правовые основы профилактических мероприятий
- •4.1. Международный карантин
- •4.2. Профилактическая дезинфекция, дезинсекция, дератизация
- •4.3. Иммунопрофилактика
- •4.4. Обязательные медицинские осмотры
- •5. Правовые основы противоэпидемических мероприятий (мероприятия в очаге)
- •5.1. Карантинные меры в очаге
- •5.2. Госпитализация
- •5.3. Медицинское наблюдение и разобщение
- •5.4. Дезинфекция, дезинсекция, дератизация
- •5.5. Изъятие пищевых продуктов для исследования и запрет их производства и реализации
- •6. Право населения на информированность
- •7. Гигиеническое воспитание и обучение
- •Классификация функционального состояния больных циррозом печени (по Child-Puch, 1973)
- •Классификационные признаки стадии компенсации цирроза печени по системе Чайлда-Пью (Child-Puch)
Введение сыворотки дробным методом
Перед введением ампулу с сывороткой подогревают в теплой воде до 37оС при температуре воды (371)оС. Введение сыворотки проводят под наблюдением врача.
Перед введением сыворотки для выявления чувствительности к чужеродному белку в обязательном порядке проводит внутрикожную пробу с разведенной 1:100 сывороткой, которая находиться в коробке с препаратом. Ампулы с разведенной 1:100 сывороткой маркированы красным, а с неразведенной сывороткой - синим цветом.
Инъекцию производят в сгибательную поверхность предплечья, внутрикожно вводят 0,1 мл разведенной (1:100) сыворотки (иммуноглобулина) и наблюдают за реакцией 20 минут. Проба считается отрицательной, если диаметр папулы не больше 0,9 см и краснота вокруг нее ограничена; – положительной, если папула достигает в диаметре 1 и более см и окружена большой зоной красноты.
При отрицательной внутрикожной пробе неразведенную сыворотку вводят подкожно в количестве 0,1 мл; при отсутствии реакции на последнее введение через 30-60 минут вводят всю назначенную дозу препарата.
При положительной внутрикожной пробе или в случае появления анафилактической реакции на подкожную инъекцию, сыворотку вводят только по жизненным показаниям под наблюдением врача и с особыми предосторожностями. Рекомендуется вначале вводить под кожу разведенную лошадиную сыворотку с интервалом в 20 минут в дозах 0,5 мл; 2,0 мл; 5,0 мл (проводится так называемая гипосенсибилизация). При отсутствии реакции на эти дозы вводят 0,1 мл неразведенного препарата, при отсутствии реакции через 30 минут подкожно вводят все назначенное количество
Методика посева крови при тифо-паратифозных заболеваниях
После установления предварительного диагноза на основании клинико-эпидемиологических данных возникает необходимость в проведении специфических лабораторных исследований, особенно это касается атипичных форм заболевания. Только с помощью лабораторных методов исследования можно диагностировать бактерионосительство и дифференцировать брюшной тиф от паратифов А и В. Бактериологическому исследованию при тифопаратифозных заболеваниях подвергается кровь, содержимое розеол, пунктат костного мозга, кал, моча и желчь.
Наиболее ранним и достоверным методом лабораторной диагностики является посев крови (гемокультура). Его нужно делать всегда при подозрении на тифопаратифозное заболевание в любой день болезни, когда у больного повышена температура. Однако надо помнить, что чем раньше от начала заболевания производится посев, тем больше шансов получить положительный результат. И наоборот, чем позже берется кровь, тем меньшее количество возбудителей находится в крови и положительные результаты бывают реже, а при нормальной температуре совсем редко. Для повышения положительных результатов гемокультуры рекомендуется при отсутствии противопоказаний за 15 20 мин до взятия крови ввести подкожно 1 мл 0,1 % раствора адреналина, что способствует сокращению селезенки и выходу в кровяное русло возбудителей.
Для посева крови используются 10 % желчный бульон и среда Рапопорт. Стерильным шприцом из локтевой вены на первой неделе болезни берут 10 мл крови, а в более поздние сроки 1520 мл и засевают у постели больного на питательную среду в отношении 1 : 10 (при меньшем объеме питательной среды кровь может оказать бактерицидное действие на микроб-возбудитель). Наличие желчи в средах способствует росту тифопара-тифозных микробов, задерживает действие бактериофага, препятствует свертыванию крови. При отсутствии сред, содержащих желчь, посев крови можно произвести в мясопептонный бульон с 1 % глюкозы (соотношение крови и среды 1 : 10), по методу Клодницкого на стерильную водопроводную или дистиллированную воду с 0,1 % агара (10 мл крови на 80100 мл воды) или по способу Самсонова (510 мл крови засевают на 200 250 мл стерильной водопроводной воды). На этих средах бактерии вырастают не хуже, чем на средах с желчью.
Если посев крови у постели больного произвести нельзя, а также при обследовании большого числа лихорадящих больных рекомендуется пересылать в лабораторию цитратную кровь. Для этого в герметически укупоренные и заранее простерилизованные пенициллиновые флакончики с 1 мл 40 % стерильного раствора натрия цитрата вводят 9 мл крови путем прокола пробки, предварительно обработанной спиртом. В отдельных случаях может использоваться посев оставшегося после постановки реакции Видаля сгустка крови, измельченного стеклянной палочкой.
Предварительный результат посева обычно получают через 23 дня, а окончательный через 5 10 дней. Положительные результаты гемокультуры чаще бывают при тяжелой форме болезни. Увеличение кратности посевов крови (3 дня подряд) значительно повышает вероятность выделения из нее микробов. Применение антибиотиков (левомицетина, тетрациклина и ампициллина) для лечения больных тифопаратифозными заболеваниями уменьшает количество положительных результатов гемокультуры, поскольку через 24 дня от начала лечения из крови исчезает возбудитель. Поэтому следует как можно раньше производить посев крови, еще до назначения больным антибиотиков.
Опыт показывает, что выделение гемокультуры является главным в подтверждении диагноза тифопара-тифозного заболевания, особенно в ранние сроки лихорадочного периода. Так, исследование крови, взятой у больного из вены в первые сутки лихорадки до назначения этиотропной терапии, обеспечивает высеваемость до 95100 %, в последующие дни она снижается до 50— 60 %, а через 10—14 дней -до 5%.
