
- •План реферата
- •Введение
- •Сохранение in vitro генофонда. Коллекции и банки
- •Получение безвирусного посадочного материала
- •Каллусогенез как основа создания клеточных культур
- •Длительно выращиваемые культуры
- •Культивирование отдельных клеток
- •Биотехнологии на основе изолированных протопластов
- •Обзор литературы
Каллусогенез как основа создания клеточных культур
Важные для сельского хозяйства технологии in vitro разработаны с использованием объектов разной сложности организации, начиная с изолированных протопластов, и кончая изолированными завязями или зародышами. Однако культивируемые клетки играют при этом центральную роль, выступая либо не посредственным объектом генетических манипуляций, либо обязательным этапом создаваемых на основе других объектов технологий.
Основным типом культивируемой растительной клетки является каллусная. Реже культивируют клетки опухолей растений разного происхождения. Культуры опухолевых клеток как при поверхностном, так и при глубинном выращивании, мало отличаются внешне от культур каллусных клеток, даже на уровне морфологии клеток. Значительным физиологическим различием между ними служит гормононезависимость опухолевых клеток, позволяющая им делиться и расти на питательных средах без добавок стимуляторов роста. Опухолевые клетки лишены также способности давать начало нормальным организованным структурам - корням или побегам в процессе органогенеза и эмбриоидам в процессе соматического эмбриогенеза. В некоторых случаях они образуют тератомы (уродливые органоподобные структуры), которые дальше не могут развиваться нормально. Каллусные клетки в пересадочной культуре могут спонтанно приобрести способность к росту на среде без стимуляторов роста. Природа такой независимости к одному или обоим стимуляторам (ауксину и цитокинину), обычно применяемым при получении и выращивании клеточных культур растений, может быть генетической (результат мутации) или эпигенетической (результат экспрессии генов, определяющих независимость клетки от экзогенных стимуляторов).
При генетической независимости каллусные клетки ведут себя так же, как опухолевые, при эпигенетической они теряют признак зависимости в ряду превращений клетка—> растение—> клетка, что и является доказательством негенетической природы такой приобретенной независимости от присутствия в среде стимуляторов роста.
Каллусная клетка, в результате деления которой возникает каллусная ткань или каллус, представляет собой один из типов клеточной дифференцировки, присущей высшему растению. Для растения каллус является тканью, возникающей в исключительных обстоятельствах (обычно при травмах) и функционирующей непродолжительное время. Эта ткань защищает место поранения, накапливает питательные вещества для регенерации анатомических структур или утраченного органа.
Для получения культивируемых каллусных клеток фрагменты тканей разных органов высших растений (экспланты) помещают на искусственную питательную среду в пробирки, колбы, чашки Петри. Процесс получения первичного каллуса и поддержания пересадочной культуры требуют абсолютной асептики. Для этого с помощью различных стерилизующих растворов, содержащих чаще всего активный хлор или ртуть (гипохлориты, сулема, диацид), к которым для лучшего смачивания добавлены детергенты, стерилизуют экспланты.
После инкубации в стерилизующем растворе материал промывают в трех порциях стерилизованной воды, по 10 минут в каждой. Прописи стерилизации разных объектов даны в таблице 1. Стерилизуют в автоклаве или фильтрованием через ультрафильтры питательную среду. В автоклаве при давлении 0,15 мм рт. ст. в течение 60 мин или сухим паром в шкафах при температуре 160°С стерилизуют посуду, инструменты, материалы, необходимые для работы. Манипуляции с культурами проводят в боксах микробиологического типа, облучаемых перед работой ультрафиолетом или в ламинар-боксах, где асептика достигается постоянной подачей стерильного воздуха в рабочий объем.
Таблица 1
Стерилизация исходного растительного материала
Объекты |
Время стерилизации, в минутах | |||
|
Диацид 0,1 % |
Сулема 0,1 % |
Гипохлориты Na, Ca, 5-9 % |
Перекись водорода 10-12 % |
Семена сухие |
15-20 |
10-15 |
15-20 |
12-15 |
Семена набухшие |
6-10 |
6-8 |
10-15 |
6-8 |
Ткани мясистого корня, клубни |
20-30 |
15-25 |
15-20 |
- |
Ткани стебля |
20-40 |
20-25 |
20-25 |
- |
Листья |
1-3 |
0,5-3 |
3-6 |
3-5 |
Апексы |
1-10 |
0,5-7 |
3-15 |
2-7 |
Особенности дедифференцировки клеток экспланта и каллусогенеза зависят от эпигенетических характеристик составляющих его тканей. Клетки тканей запасающей паренхимы, корня и стебля, мезофилла листа и других специализированных тканей, эксплантированных в питательную среду, содержащие минеральные соли, источники углерода, витамины и стимуляторы роста, должны дедифференцироваться, т.е. потерять структуры, характерные для их специфических функций в растении, и вернуться к состоянию делящейся клетки.
Часто эксплант используемый для получения каллуса, является фрагментом органа и включает ткани, клетки которых различно дифференцированы. Например, взятый целиком фрагмент стебля имеет в своем составе клетки эпидермальные, первичной коровой паренхимы, камбия и сосудистой системы, сердцевинной паренхимы. В разных условиях культивирования и в зависимости от различий в физиологическом состоянии исходного растения можно наблюдать преимущественную пролиферацию клеток либо камбия и его молодых дериватов, либо коры, либо сердцевинной паренхимы.
Различное тканевое происхождение первичных каллусных клеток является одной из причин гетерогенности культуры каллусной ткани, т.к. некоторые функциональные особенности исходных дифференцированных клеток передаются в ряду клеточных поколений как стойкие, эпигенетически наследуемые признаки. В клетках экспланта в самом начале культивирования могут наблюдаться изменения в метаболизме, связанные с травматическими синтезами, с дедифференцировкой и подготовкой к процессу деления. Между этими процессами может существовать причинно-следственная связь, механизм которой точно не известен.
Можно предположить, что травма приводит к высвобождению из клеток биологически активных веществ - индукторов или элиситоров клеточных делений, отличающихся по своей природе от стимуляторов роста растений (ауксинов, цитокининов, гиббереллинов). В роли элиситоров могут выступать продукты разрушения полисахаридов клеточной стенки. Их действием можно объяснить и быструю дедифференцировку специализированной клетки, приводящую к метаболизации веществ запаса, перестройке пластидного аппарата, увеличению структур, связанных с синтезом белков.
В готовящейся к делению клетке стимулируется синтез всех форм РНК, начинается репликация ядерной ДНК, исчезают тканеспецифичные белки антигены и появляются белки, специфичные для делящихся клеток и для каллусной ткани. Эти наблюдения свидетельствуют об изменениях в активности генов и белкового аппарата клеток при дедифференцировке.
Образование каллуса не во всех случаях связано с поверхностью экспланта. Каллус может образоваться в результате пролиферации внутренних тканей без связи с поверхностью среза. Развивающийся каллус разрывает слой ткани и обычно выходит на поверхность. Ярким примером образования каллуса, не связанного с травмой, служит каллусогенез, наблюдающийся в культуре изолированного пыльника. Каллусогенез при эксплантировании фрагмента ткани в условиях in vitro свойственен не только покрытосеменным, но и голосеменным растениям, папоротникам, мхам, печеночникам.
Первичный каллус, образовавшийся на эксплантах, через 4-6 недель (в зависимости от темпов роста) переносится на свежую питательную среду (субкультивируется). Масса трансплантанта (переносимого кусочка) при культивировании на агаризованной питательной среде обычно колеблется от 60 до 100 мг ткани на 20-40 мл питательной среды.
Техника культивирования тканей растений позволяет в настоящее время получить длительную пересадочную каллусную культуру из любых живых тканевых клеток интактного растения. Различно дифференцированные клетки (в том числе и меристематические) переходят in vitro к сложному процессу де дифференциации, теряют присущую им структурную организацию и специфические функции и индуцируются к делению, образуя первичный каллус. В процессе субкультивирования формируется штамм, характеризующийся индивидуальными генетическими и физиологическими особенностями.