
- •Гомель 2010 г.
- •Глава 1 Обзор литературы
- •1.1Helicobacter pylori-что это такое?
- •1.2Факторы вирулентности:
- •Глава 2 Методы диагностики Helicobacter pylori
- •2.1 Методы диагностики Helicobacter pylori :
- •Глава 3 Материалы и методы исследования
- •Глава 4 Результаты собственных исследований
- •Глава 1
- •1.1 Helicobacter pylori что это такое?
- •1.2 Факторы вирулентности:
- •Глава 2
- •2.1 Методы диагностики Helicobacter pylori :
- •Глава 3
- •3.1 Материалы исследования:
- •3.2 Методы исследования:
- •3.2.2 Необходимое оборудование и расходные материалы:
- •1 Этап - выделение днк из биопроб:
- •2 Этап - проведение пцр (амплификация):
- •3 Этап - детекция продуктов амплификации:
- •1. Комплект для пробоподготовки (выделения днк)
- •2. Комплекты для проведения пцр (амплификации)
- •3. Комплект для детекции продуктов амплификации
- •3.3 Проведение исследования
- •3.3.1 Взятие,доставка и хранение материала:
- •3.3.2 Выделение днк из биопроб:
- •3.3.3 Проведение пцр(амплификация):
- •3.4 Детекция продуктов амплификации:
- •3.5 Анализ результатов:
- •3.6 Выявление гена CagA h. Pylori
- •Глава 4
- •4.1Таблица.6 Эндоскопические и гистологические проявления инфекции h. Pylori у носителей:
- •4.2 Анализ полученных материалов эндоскопического исследования
- •4.3 Анализ полученных материалов эндоскопического исследования
3.3 Проведение исследования
3.3.1 Взятие,доставка и хранение материала:
Исследуемый биопсийный материал опускается в стерильную сухую пробирку типа Эппендорф вместимостью 1,5 мл.
Пробу доставить в лабораторию в течение 2-х часов (в термосе со льдом) для выделения ДНК или заморозить и хранить при температуре – 20°C не более 2 недель.
3.3.2 Выделение днк из биопроб:
1. В 1.5 мл пробирку с биоптатом добавить 100 мкл лизирующего раствора и инкубировать, периодически встряхивая, при 55оС до полного растворения ткани (это процесс занимает от 2 до 4 часов , при необходимости инкубацию можно проводить в течение ночи при 37оС).
2. Осадить сконденсированные на внутренней поверхности пробирки капли жидкости центрифугированием в течение 5 сек при 8-12 тыс. об/мин. К полученному лизату добавить 20 мкл суспензии сорбента (перед добавлением суспензию тщательно перемешать) и 500 мкл раствора I . (Раствор I перед использованием прогреть на водяной бане 10 мин. при температуре 50-60оС и тщательно перемешать). Полученный раствор перемешать и инкубировать при комнатной температуре в течение 10 мин., периодически встряхивая на вортексе.
3. Осадить сорбент центрифугированием на микроцентрифуге в течение 15 сек при 8-12 тыс. об/мин. Удалить супернатант.
На всех стадиях обработки клинического материала удаление супернатанта производят одноразовыми пластиковыми наконечниками при помощи вакуумного насоса в колбу-ловушку, содержащую дезинфицирующий раствор (3% хлорамин или 5% перекись водорода и т.п.)
4. К осадку добавить 200 мкл раствора II, перемешать смесь, осадить сорбент центрифугированием в течение 15 сек на микроцентрифуге при 8-12 тыс. об/мин., удалить супернатант.
5. Промыть сорбент 2 раза 1 мл раствора III , как описано в п.2.4
6. Пробирки поместить в твердотельный термостат и подсушить сорбент 5-10 мин при температуре 55-60оС, оставляя пробирки открытыми.
7. В пробирки с сорбентом добавить 50 мкл ТЕ буфера, закрыть их, тщательно перемешать на вортексе и инкубировать в течение 5 минут при 55-60оС.
8. Пробирки центрифугировать 15 сек при 8-12 тыс.об/мин..
Водную фазу (супернатант) использовать в качестве исследуемого образца ДНК для постановки реакции амплификации.
Водную фазу снятую с сорбента можно хранить при температуре -20оС в течение 6 месяцев.
3.3.3 Проведение пцр(амплификация):
1. Приготовить и пронумеровать пробирки для проведения амплификации
вместимостью 0,5 мл (или 0,2 мл), включая пробирки для положительных и
отрицательного контрольных образцов
2. За 20-30 минут до приготовления амплификационной смеси извлечь комплект
реагентов для амплификации из морозильника, разморозить содержимое (желательно поместить пробирку с Taq-полимеразой в ледяную баню). Размороженные пробирки тщательно встряхнуть для перемешивания содержимого.
3. Из компонентов набора приготовить смесь реагентов для амплификации из расчета на 1 пробу:
ХЕЛИКОПОЛ:
Разбавитель 17,5 мкл,
Реакционная смесь 32,5 мкл,
Taq-полимераза 0,2мкл
Рекомендуется готовить смесь реагентов не менее чем на 5 реакций для достоверной дозировки объема фермента
Для каждой смеси праймеров готовится отдельная амплификационная смесь. Все компоненты добавлять отдельными наконечниками.
4. После добавления Taq-полимеразы, которое производится в последнюю очередь, необходимо тщательно перемешать смесь пипетированием.
5. Добавить по 20 мкл амплификационной смеси во все пробирки, подготовленные для амплификации (для ХЕДИКОПОЛ СА, VA, BA и IA—по 25 мкл).
6. Добавить во все пробирки по 1 капле (около 25 мкл) минерального масла.
7. Внести 5 мкл образца из обработанной анализируемой пробы (см п. выделение ДНК) в соответствующую пробирку с амплификационной смесью для проведения амплификации под слой масла.
8. Внести в пробирки для положительных контрольных образцов по 5 мкл соответствующего положительного контрольного образца ДНК из состава набора, а в пробирку для отрицательного контрольного образца – 5 мкл разбавителя или деионизованной воды из состава набора.
9. Пробирки закрыть и центрифугировать в течение 3-5 секунд при 2250 – 4000g (1,5 –3000 об/мин) при комнатной температуре (+18 – 25оС) на микроцентрифуге-вортексе.
10. Перенести пробирки в прогретый до температуры +93оС программируемый термостат (амплификатор) и провести амплификацию по следующим программам:
Таблица 2. Программа амплификации для выявления H. pylori
Хеликопол |
||
Т, оС
|
время |
Циклов(кол-во) |
94 о |
Pause |
|
94 о |
60 сек |
1 |
94 о |
30 сек |
5 |
50 о |
30 сек |
|
72 о |
30 сек |
|
92 о |
5 сек |
40
|
50 о |
10сек |
|
72 о |
15 сек |
|
10 о |
Storage |
|
