1. Виявлення молочної кислоти в шлунковому соку (якісна реакція) за методом Уффельмана.
Принцип методу. Метод грунтується на взаємодії комплексної сполуки феноляту заліза фіолетового кольору з молочною кислотою з утворенням лактату заліза жотувато-зеленого кольору.
Хід роботи. 1. Приготування феноляту заліза: в колбу, що містить 10мл 1 % розчину фенолу, по краплях додають 1 % розчин хлориду заліза (III) до появи інтенсивного фіолетового забарвлення.
2. Виявлення молочної кислоти. У три пробірки, вносять по 2 мл приготованого розчину феноляту заліза і додають: в першу пробірку – 1 мл 0,5 % розчину молочної кислоти; в другу пробірку – 1 мл шлункового соку; в третю пробірку – 1 мл води. Вміст пробірок добре перемішують і спостерігають за зміною забарвлення.
3. Експрес метод. В пробірку вносять 1 мл реактиву Уффельмана (комплексна сполука феноляту заліза) і додають 10 крапель слини. Розвивається жовто-зелене забарвлення (лактат заліза).
Клініко-діагностичне значення. Молочна кислота у вмісті шлунка здорової людини не виявляється, але при ахлоргідрії, коли має місце бродіння, її можна визначити звичайними якісними пробами. Наявність молочної кислоти і збільшення органічних кислот у вмісті шлунка свідчить про бродіння вуглеводів у ньому.
2. Виявлення наявності крові у шлунковому соку бензидиновою пробою.
Принцип методу. Кров виявляється за допомогою бензидинової проби, яка ґрунтується на здатності гемоглобіну каталізувати окислення бензидину пероксидом водню з утворенням продуктів окислення синього або зеленого кольору.
Хід роботи.
До 1 мл досліджуваного (патологічного) шлункового соку додають 5 крапель 10%-го розчину бензидину в оцтовій кислоті та 3 краплі 3%-го розчину пероксиду водню. За присутності крові розвивається синє або зелене забарвлення внаслідок окислення бензидину.
За результатами проведених експериментів зробити висновки.
Завдання 3. Дослідження активності ліпази підшлункової залози.
Принцип методу: Про активність панкреатичної ліпази сулять по кількості звільнених під дією ферментів жирних кислот, які відтитровують лугом.
Хід роботи: Три пробірки заповнюють за схемою. вміст пробірок інкубують на водяній бані при 37ºС протягом 15 хв. Після інкубації проводять титрування 0,1 М розчином гідроксиду натрію в присутності фенолфталеїну. Кількість лугу в мл, що пішла на титрування (нейтралізацію) звільнених жирних кислот, є показником активності ліпази.
Компоненти суміші |
№№ пробірки |
||
1 |
2 |
3 |
|
1. Рослинна олія |
0,5 |
0,5 |
0,5 |
2. Витяжка з підшлункової залози |
1,0 |
1,0 |
- |
3. Жовч |
- |
2,0 |
2,0 |
4. Буфер рН 7,8 |
3,0 |
1,0 |
2,0 |
Кількість NaOH, що пішла на титрування |
|
|
|
Завдання 4. Кількісне визначення активності амілази слини за методом Вольгемута.
Принцип методу. Метод Вольгемута грунтується на здатності амілази розщеплювати (гідролізувати) крохмаль. В ході роботи виявляють мінімальну кількість фермента, здатного повністю розщеплювати 1 мл 0,1 %-го розчину крохмалю. Цю кількість фермента приймають за одиницю амілазної активності.
Амілазна активність виражається в кількості 0,1 %-го розчину крохмалю в мілілітрах, яку може розщепити (гідролізувати) 1 мл слини при температурі 37оС протягом 30 хв. В нормі амілазна активність слини А = 160 – 320.
Хід роботи: У сім пронумерованих пробірок вносять з бюретки по 1мл води. У 1-у пробірку додають 1мл розведеної у 10 разів слини. Вміст добре перемішують і 1мл отриманого розчину переносять з першої пробірки до другої, з неї – до третьої і т.д. Таким чином у кожній наступній пробірці вміст ферменту буде у два рази меншим, ніж у попередній. Потім в усі пробірки наливають по 2 мл 0,1% розчину крохмалю, перемішують та ставлять пробірки на водяну баню (чи у термостат) при 37С на 30 хв. Після цього пробірки виймають та охолоджують для завершення дії ферменту. В кожну пробірку додають по 2 краплі розчину йоду, добре перемішують та спостерігають за змінами кольору. Рідина у пробірках може забарвлюватися у жовтий, червоний та синій колір. Жовтий колір свідчить про повне розщеплення крохмалю. Результати спостережень вносять в таблицю, позначають синє, червоне та жовте забарвлення буквами “С”, “Ч”, “Ж”. Відмічають останню пробірку з розчином жовтого кольору та розраховують активність амілази слини:
Показник |
Пробірки |
||||||
1 |
2 |
3 |
4 |
5 |
6 |
7 |
|
Розведення слини (чи сечі) Кількість 0,1% розчину крохмалю, мл Забарвлення з йодом |
1:20
2 |
1:40
2 |
1:80
2 |
1:160
2 |
1:320
2 |
1:640
2 |
1:1280
2 |
Висновки: |
|
||||||
Розрахунок. Для обчислення активності амілази необхідно знати розведення слини в останній пробірці, де відбувся повний гідроліз крохмалю.
Наприклад, остання пробірка з розчином жовтого кольору виявляється четвертою, в якій слина розведена у 160 разів. Складають пропорцію та обчисляють активність амілази:
X=
=
=
320 мл
1/160мл слини розщеплює 2мл 0,1 %-го розчину крохмалю;
1мл слини розщеплює х мл 0,1 %-го розчина крохмалю,
звідки X= = = 320 мл
Клініко-діагностичне значення. Метод Вольгемута широко використовується в клінічній практиці для визначення амілазної активності крові та сечі. Зростання активності амілази (внаслідок збільшення кількості) в сироватці крові буде мати діагностичне значення для підтвердження наявності запалення підшлункової залози - панкреатиту. Внаслідок розвитку панкреатиту, при пошкодженні панкреацитів підвищується секреція панкреатичного соку, передчасне виділення та активація ферментів безпосередньо в протоках і клітинах залози. Внаслідок цього в кров попадають ферменти підшлункової залози, такі як трипсин і амілаза, активність якої в сироватці крові значно зростає.
Завдання 5. Виявлення індикану в сечі (проба Обермейєра).
Принцип методу. Перетворення індикану в індоксил після гідролізу ефірного зв’язку сильною мінеральною кислотою (сірчаною) та наступне окислення індоксилу трихлороцтовим залізом з утворенням забарвленої сполуки.
Хід роботи. До 4 мл сечі додають 0,4 мл ацетату свинця ([CH3COOH]2Pb) для осадження жовчних пігментів, солей та інших речовин, які заважають реакції. Фільтрують, 1-2 мл фільтрату змішують з рівним об’ємом реактиву Обермейєра, додають 1-2 мл хлороформу й обережно перемішують. Після того, як нижній шар хлороформу забарвлюється в синій або червоний колір, його відбирають та переносять в іншу пробірку і додають декілька крапель тіосульфату натрію.
В нормі, за відсутності індикану, реакція негативна (тобто після додавання тіосульфату натрію забарвлення зникає).
У випадку позитивної реакції після додавання тіосульфату забарвлення не зникає.
Клініко-діагностичне значення. Індикан – калієва або натрієва сіль індоксилсірчаної кислоти. міститься в нормальній сечі у вигляді слідів, які неможуть бути виявлені звичайними методами дослідження. Велика кільксть індикану з’являється в сечі при посиленні процесів гниття білків у кишечнику внаслідок великої кількості бактерій, що спричиняють гниття у кишечнику, при запорах та заворотах кишечника, при поганому перетравленні білків у кишечнику.
