
- •Занятие № 1. «Введение в курс»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 2. «Физико-химические свойства углеводов»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 3. «Физико-химические свойства липидов»
- •Занятие № 4. «Строение и физико-химические свойства аминокислот и белков»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 5. «Ферменты»
- •Вопросы к контрольной работе:
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 6. «Ферментативный катализ»
- •Экспериментальная работа. Опыт 1. Определение амилазы (диастазы) мочи по вольгемуту.
- •2. Моча.
- •Практическое задание
- •Занятие № 7. «Роль витаминов в метаболизме»
- •Вопросы к контрольной работе:
- •Экспериментальная работа.
- •Опыт 5. Открытие апофермента и кофермента в аспартат-аминотрансферазе.
- •Занятие № 8. «Гормональная регуляция обмена веществ»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 10. «Обмен веществ и энергии»
- •Экспериментальная работа. Опыт 1. Обнаружение атф в различных тканях.
- •Занятие № 11. «Цикл трикарбоновых кислот»
- •Экспериментальная работа.
- •2. Моча.
- •Занятие № 12. «Обмен углеводов (часть 1)»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 13. «Обмен углеводов (часть 2)»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 14. «Обмен липидов (часть1)»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 15. «Обмен липидов (часть 2)»
- •Экспериментальная работа.
- •2. Моча.
- •4. Молоко.
- •2. Молоко.
- •Занятие № 16. «Липиды и биологические свойства клеточных мембран»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 18. «Белковый обмен (часть 1)»
- •Экспериментальная работа.
- •4. Молоко.
- •2. Моча.
- •Расчетные методы определения биологической ценности белка.
- •Содержание незаменимых (для человека) аминокислот
- •Занятие № 19. «Белковый обмен (часть 2)»
- •Экспериментальная работа.
- •Занятие № 20. «Биохимическая детоксикация»
- •Экспериментальная работа.
- •Физиологические показатели обмена веществ у домашних и
- •Приготовление некоторых реактивов.
Занятие № 20. «Биохимическая детоксикация»
Цель занятия: изучить пути обезвреживания токсичных соединений.
ВОПРОСЫ К КОНТРОЛЬНОЙ РАБОТЕ:
Пути образования и обезвреживания аммиака. Чем отличаются уреотелические, урикотелические и аммониетелические животные? Чем объяснить возникновение разных путей выведения аммиака из организма птиц, млекопитающих и рыб?
Цикл образования мочевины. Пути образования орнитина и аспарагиновой кислоты для обеспечения орнитинового цикла.
В каких органах происходит образование мочевины? Дальнейшие пути ее транспортировки у различных животных. На чем основано кормовое использование мочевины? Ее превращение в пищеварительном тракте.
Окисление пуриновых и пиримидиновых соединений. Назовите конечные продукты пуринового обмена у разных животных.
Биохимические механизмы образования и обезвреживания скатола и индола.
Пути образования и обезвреживания желчных пигментов.
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
Экспериментальная работа.
Опыт 1. Определение мочевины в биологических жидкостях.
Мочевина образует с диацетилмонооксимом в сильнокислой среде в присутствии тиосемикарбазида и ионов трехвалентного железа красный комплекс.
В три пробирки внесите реактивы согласно следующей таблице:
Раствор |
Опытная проба, мл |
Калибровочная проба, мл |
Контрольная проба, мл |
Исследуемый образец |
0,02 |
– |
– |
Реактив 1 |
– |
0,02 |
– |
Дистиллированная вода |
– |
– |
0,02 |
Реактив 2 |
4 |
4 |
4 |
Пробирки закройте алюминиевой фольгой и поместите на кипящую водяную баню точно на 10 мин.
После этого пробирки быстро охладите проточной водой и измерьте оптическую плотность опытной пробы (D1) и калибровочной (D2) против контрольного раствора при 580-650 нм (оранжевый или красный светофильтр) в кювете толщиной слоя 10 мм. Измерение следует провести до 15 мин после охлаждения.
Рассчитайте концентрацию мочевины по формуле:
где Х концентрация мочевины в калибровочной пробе.
Сравните полученные значения с нормальными величинами. О чем свидетельствует снижение (повышение) количества мочевины в сыворотке крови у животных?
Опыт 2. Определение индикана в моче.
Количество индикана в моче является постоянной величиной у здоровых животных. Увеличение индикана моче наблюдается при воспалении мышц, обширных травмах и при избытке триптофана в рационе животных.
Определение индикана в моче базируется на гидролизе его соляной кислотой с последующим окислением хлорным железом индоксила и тимола в соединение розово-фиолетового цвета.
Приборы. 1. Штатив с пробирками.
2. Набор пипеток.
3. Стаканчик.
4. Фильтр.
5. Стеклянная воронка.
Реактивы. 1. Моча.
2. Ацетат свинца, 10%-ный раствор.
3. Хлороформ.
4. Тимол, раствор в 96о этаноле.
5. Реактив Жолеса (0,5 г хлорида железа (III) в 100 мл концентрированной
соляной кислоты).
20 мл мочи смешайте с 10 мл раствора уксуснокислого свинца. Встряхните. Фильтруйте смесь.
К 10 мл фильтрата добавьте 1 мл раствора тимола и 10 мл реактива Жолеса.
Через 15 минут в смесь внесите несколько капель хлороформа. Взболтайте и произведите оценку результатов исследования.
В норме отмечают розово-фиолетовое окрашивание хлороформа, интенсивность которого при выраженной диканурии повышается до красно-фиолетового.
Запишите Ваши результаты. Продуктом метаболизма какой аминокислоты является индикан? Напишите структурную формулу индикана.
Опыт 3. Определение концентрации мочевой кислоты в моче.
Приборы. 1. Штатив с пробирками.
2. Набор пипеток.
3. Установка для титрования.
Реактивы. 1. Моча.
2. Карбонат натрия, 20%-ный раствор.
3. Реактив Фолина.
4. Гексацианоферрат калия, 0,01 н раствор.
К 1,5 мл мочи и прибавьте 1 мл 20%-ного раствора карбоната натрия и 1 мл реактива Фолина. Перемешайте. Развивается синяя окраска.
Титруйте содержимое пробирки 0,01 н раствором К3[Fe(CN)6] до исчезновения синего окрашивания.
Рассчитайте содержание мочевой кислоты (в мг) в суточной моче по формуле:
,
где а – количество К3[Fe(CN)6] пошедшего на титрование, мл;
в – суточный диурез, мл;
1,5 – объем пробы, мл.
Коэффициент пересчета в единицы СИ 0,0059.
Напишите схему синтеза и формулу мочевой кислоты. Сравните полученные значения с нормальными величинами. О чем свидетельствует снижение (повышение) количества мочевой кислоты в моче у животных?
Опыт 4. Определение сорбционной способности эритроцитов.
Способность эритроцитов сорбировать на своей поверхности метиленовый синий зависит от функционального состояния клеточной мембраны эритроцитов и отображает ее свойство адсорбировать токсичные молекулы.
В центрифужную пробирку, содержащую 1 мл раствора цитрата натрия, поместите 4 мл крови.
Центрифугируйте 10 минут при 3000 об/мин.
Плазму удалите.
1 мл эритроцитарной массы поместите в центрифужную пробирку с 3 мл раствора метиленового синего.
Перемешайте содержимое пробирки и оставmntт на 10-12 мин при комнатной температуре.
Затем снова центрифугируйте 10 мин. при 3000 об/мин.
Надосадочную жидкость налейте в кювету шириной 10 мм и определите оптическую плотность при 630 нм против воды.
Расчет
ведите по формуле
где A1 - оптическая плотность после инкубации с эритроцитами;
А2 - оптическая плотность исходного раствора метиленового синего против воды;
X - сорбционная способность эритроцитов, в %.
В норме эритроциты способны поглощать до 37,12 % красителя. Например, при гнойно-септических состояниях показатель увеличивается до 69,9 %.
Сделайте вывод по полученным результатам.
_____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
Занятие № 22. «Контроль практических навыков биохимического анализа»
Цель занятия: закрепить приобретенные практические навыки качественного и количественного биохимического анализа.
Определите в предложенном вам биологическом образце содержание:
Глюкозы (см. занятие № 7),
Общего белка (см. занятие № 13),
Мочевины (см. занятие № 15),
Активность трансаминаз (см. занятие № 14),
Холестерина (см, занятие № 11),
-липопротеидов (см. занятие № 9),
Запишите полученные результаты в таблицу:
Исследуемый показатель |
Полученное значение |
Физиологическая норма |
Вывод |
Глюкоза |
|
|
|
Общий белок |
|
|
|
Мочевина |
|
|
|
Активность трансаминаз |
|
|
|
Холестерин |
|
|
|
-липопротеиды |
|
|
|
Сделайте вывод о клиническом состоянии животного на основании полученных результатов. Укажите предполагаемые причины, оказавшие влияние на исследуемые показатели.
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
Приложение 1