- •IV. Ферменты – регуляторы биологических процессов
- •§4.1. Классификация ферментов
- •§4.2. Структура ферментов
- •4.2.1. Первичная, вторичная и третичная структуры
- •4.2.2. Активный центр
- •4.2.3. Кофакторы
- •§4.3. Ферментативный катализ
- •4.3.1. Общая схема механизма химических реакций.
- •4.3.2. Скорость некаталитических реакций
- •4.3.3. Химический катализ. Катализаторы
- •4.3.4. Основные особенности ферментативного катализа
- •4.3.5. Пример простейшей реакции
- •4.3.6. Принцип индуцированного соответствия
- •4.3.7. Комплекс Михаэлиса
- •4.3.8. Уравнение Михаэлиса–Ментен
- •Зависимость от температуры
- •§4.4. Многостадийная модель ферментативных реакций
- •4.4.1.Реакция превращение l-аланина в d-аланин
- •Реакция с участием кофермента
- •Ферментативная реакция
- •4.4.2. Расщепление пептидной связи
- •Неферментативный процесс
- •Ферментативная реакция
- •Активный центр гидролитического фермента
- •Модель ферментативного гидролиза
- •§4.5. Ферменты с несколькими активными центрами Двухцентровые ферменты
- •§4.6. Каскады ферментативных реакций
Модель ферментативного гидролиза
Ферментативный гидролиз происходит по следующему модельному сценарию.
1. Под действием электрического поля, создаваемого полярными группами субглобул, полипептидная цепочка субстрата втягивается в область активного центра (на рис. 4–14, кружком показана атакуемая пептидная связь). Неизменяемая часть субстрата комплементарно связывается с узнающими ее центрами фермента и ориентируется оптимальным образом относительно атакующих пептидную связь групп активного центра. В этом положении белок субстрата фиксируется (рис. 4–15 а).
2. Под действием субстрата изменяется профиль потенциального рельефа вдоль водородной связи N – – – HO, изображенной на рис. 4–14: в центральной части потенциального барьера появляется дополнительный минимум; глубина левой потенциальной ямы увеличивается; потенциальный барьер, разделяющий левый и правый минимумы уменьшается.
3. Перестройка потенциального рельефа резко увеличивает вероятность переноса протона из правого минимума в левый. В переносе протона от Ser195 участвуют His57, принимающий Н+, и играющий вспомогательную роль Asp102 , в результате чего атом кислорода в субглобуле А, приобретая заряд –е, активируется О– (рис. 4–15 а), а His57 приобретает заряд +е.
4. Активированный атом О– атакует С-атом расщепляемой пептидной группы, завязывая с ним временную ковалентную связь, переводя тем самым связи С-атома в тетраэдрическую форму, соответствующую sp3-гибридизации. Образуется активированный комплекс. Отрицательный заряд атома кислорода перетекает на пептидную связь, которая так же как при обычном катализе в водной среде, становится одинарной. Активированный комплекс – это переходное состояние. При образовании четвертой связи С–О– с активированным атомом О–, отрицательный заряд, перетекая на пептидную связь, втягивается в оксианионовую дыру, где имеются два протона (рис. 4–15 а). Электростатическая и водородная связь О– с положительно заряженными протонами оксианионовой дыры понижают энергию переходного состояния тетраэдрического комплекса. Переходное состояние – это самое нестабильное состояние в ходе всего процесса. Снижение энергии переходного состояния (энергетического барьера) приводит к увеличению скорости реакции. Полипептидная связь N–С разрывается (рис. 4–15 б).
При разрыве связи N–C к атому N присоединяется протон Н+ от His57, заполняя свободную орбиталь у N и образуя правую концевую группу –NН2, отрезанного верхнего участка цепи (рис. 4–15 б). Свободную орбиталь у атома азота нейтрального остатка His57 (б) заполняет ион Н+ из раствора (в), что приводит к образованию неустойчивого положительного иона His57+ (г). Затем ион H+ His57+ переходит в правую (ближнюю к О Ser195) потенциальную яму, в результате чего His57 становится нейтральным, как в исходном состоянии (рис. 4–14). Гидроксильная группа ОН– из раствора присоединяется к атому С (в, г) у нижней части разрезанной полипептидной цепи с образованием тетраэдрического переходного состояния (г).
5. При разрыве полипептидной связи нарушается комплементарность ее неизменяемого участка и ориентирующего участка на субглобуле А, в результате чего разорванные части цепи освобождаются и выходят из области активного центра фермента.
Таким образом, ферментативная реакция
идет в две стадии: сначала
образуется комплекс N-концевого
пептида с О атомом серина и отщепляется
С-концевой пептид. На второй стадии
N-концевой пептид заменяет
связь с О атомом серина на связь с О
атомом воды. Без фермента реакция идет
в одну стадию, в которой сразу образуется
комплекс N-концевого
пептида с О атомом воды, а С-концевой
пептид отщепляется. Обе реакции идут
через тетраэдрический активированный
комплекс, причем рядом с комплексом
находится донор протона (His+57
в ферменте, в воде Н+ или
).
Скорость ферментативной реакции примерно
в ~1010 раз выше, чем обычной,
не ферментативной. Увеличение скорости
реакции является след-ствием снижения
энергетического барьера
(рис. 4–16). Снижение энергетического
барьера связано с понижением свободной
энергии переходного (самого нестабильного
по ходу реакции) состояния на
.
Это понижение достигается, во-первых,
за счет сбора на ферменте всех
необходимых компонентов реакции, то
есть увеличения энтропии системы.
Во-вторых, энергия понижается за
счет образования химических связей
фермент – субстрат (с протонами
оксианионовой дыры) в переходном
состоянии.
Рис. 4–16. Схема
преодоления энергетического барьера
при не ферментативном
гидролизе пептидной цепи (пунктирные
стрелки) и
при ферментативном гидролизе (сплошные
стрелки), когда свободная энергия
переходного состояния снижается на
за счет образования
ковалентных связей субстрата/продукта
с каталитическим центром фермента.
Свободные энергии начального и конечного
состояния субстрата и продукта положены
одинаковыми
Существуют протеазы, не похожие на
сериновые, например, металлопротеазы.
У них ключевую роль в катализе играет
ион цинка Zn++,
удерживаемый в белке (металлопротеазе)
координационными связями. Благодаря
сильному электрическому полю ион Zn++
активирует молекулу воды:
,
находящуюся рядом с атакуемой пептидной
связью. Далее разрыв пептидной связи
происходит как в обычной, не ферментативной
реакции. Кроме того, Zn++
стабилизирует отрицательный заряд в
тетраэдрическом переходном состоянии,
аналогично действию оксианионовой дыры
в сериновых протеазах.
Таким образом, ферментативные реакции характеризуются чрезвычайно высокой эффективностью и чрезвычайно высокой специфичностью по типу реакции. Это означает, что каждый фермент катализирует только ту реакцию, для которой он предназначен. Кроме того, ферменты обладают чрезвычайно высокой специфичностью по отношению к выбору соединений, реакции которых он катализирует, то есть очень высокой субстратной специфичностью.
